고기 인증에 펩티드 응용의 MRM 질량 분석을 사용하여 혼합물에서 종 결정 및 정량

요약

우리는 유사한 단백질을 가진 종의 혼합물에서 성분을 식별하고 정량화하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 질량분석법은 식별을 위해 펩타이드를 검출하고 피크 면적의 비율에 따라 상대적인 정량화를 제공합니다. 사기 탐지를 위한 도구 식품으로서 이 방법은 쇠고기에서 1% 말을 감지할 수 있습니다.

초록

우리는 하나 이상의 유사한 단백질을 가진 종의 이진 혼합물에서 두 가지 구성 요소를 식별하고 정량화하기 위한 간단한 프로토콜을 설명합니다. 이 방법의 핵심은 관심 종에서 '해당 단백질', 즉 명목상으로는 동일하지만 종 특이적 염기서열 차이를 가진 단백질을 식별하는 것입니다. 단백질 분해의 대상이 될 때, 해당 단백질은 마찬가지로 유사하지만 종 특이적 변이체가 있는 일부 펩타이드를 발생시킵니다. 이들은 '해당 펩타이드'입니다. 종 특이적 펩타이드는 종 측정을 위한 마커로 사용할 수 있으며, 해당 펩타이드 쌍은 혼합물에서 두 종의 상대적 정량을 허용합니다. 펩타이드는 복잡한 시스템에서도 펩타이드 기반 종 측정을 가능하게 하는 매우 특이적인 기술인 MRM(Multiple Reaction Monitoring) 질량 분석법을 사용하여 검출됩니다. 또한, 해당 펩타이드에서 파생된 MRM 피크 면적의 비율은 상대 정량화를 지원합니다. 해당 단백질과 펩타이드는 주로 가공과 실험 추출 및 시료 전처리 모두에서 유사하게 작용하기 때문에 상대적 정량화는 비교적 견고하게 유지되어야 합니다. 또한 이 접근법에는 절대 정량 분석법에 필요한 표준물질 및 보정이 필요하지 않습니다. 이 프로토콜은 각각의 미오글로빈 형태로 편리한 해당 단백질을 가지고 있는 붉은 고기의 맥락에서 설명됩니다. 이 응용 프로그램은 식품 사기 탐지와 관련이 있습니다 :이 방법은 쇠고기의 말고기 무게에 대해 1 % 무게를 감지 할 수 있습니다. MRM 피크 면적 비율을 사용한 해당 단백질, 해당 펩타이드(CPCP) 상대 정량화는 말과 소고기 혼합물의 중량 구성에 대한 중량 구성의 우수한 추정치를 제공합니다.

서론

2013년 유럽의 말고기 스캔들은, 여러 슈퍼마켓 소고기 제품에서 신고되지 않은 말고기가 발견되었으며,¹은 육류의 식품 사기를 탐지하고 측정할 수 있는 테스트 방법의 필요성을 강조합니다. 여러 기술, 특히 효소 결합 면역흡착 분석법(ELISA)과 DNA 기반 방법²이 연구되었습니다. 질량 분석법을 기반으로 하는 대체 경로는 종 특이적 펩타이드를 표적으로 하며, 이는 다시 종 특이적 단백질에서 발생합니다. 여기에서는 육류 혼합물에서 불순물 종의 식별 및 상대적 정량화를 모두 제공하는 이러한 펩타이드 기반 접근 방식 중 하나를 간략하게 설명합니다³.

이 프로토콜은 붉은 고기의 맥락에서 짜여져 있으며, 일부 사람들은 오염⁴이 아닌 사기성 식품 변조를 나타내는 것으로 간주하는 수준인 중량 기준 1% 수준에서 붉은 고기의 존재 여부를 결정하고자 합니다. 이 방법은 첫 번째 경우에 모든 표적 육류에서 명목상 '동일한' 단백질을 식별하는 데 의존합니다. 고기의 붉은 색을 담당하는 단백질인 미오글로빈은 풍부하고 상대적으로 열에 강하며 수용성이 높기 때문에 좋은 후보이며 이전에는 육류의 종 측정에 사용되었습니다^5,6. 예를 들어, 쇠고기(Bos taurus), 돼지고기(Sus scrofa), 말(Equus caballus) 및 양(Ovis aries)³의 미오글로빈은 필요에 따라 명목상으로는 동일하지만, 그 순서는 동일하지 않습니다. 이 4개의 미오글로빈과 같은 '유사하지만 다른' 단백질 그룹은 편리하게 '해당 단백질'로 설명될 수 있습니다. 이 4가지 미오글로빈의 서열 차이는 종 특이적입니다: 예를 들어, 쇠고기와 말의 전체 미오글로빈 단백질인 P02192 및 P68082는 각각 154개의 아미노산으로 구성되며 둘 사이에 18개의 서열 차이가 있습니다. 트립신을 사용하여 단백질 분해를 조건으로 이 단백질은 두 세트의 펩티드를 생성하며, 그 중 일부는 동일하고 일부는 하나 이상의 종 특이적 아미노산 차이를 나타냅니다. 해당 단백질은 따라서 해당 펩티드를 생성합니다.

따라서 CPCP 접근법은 먼저 두 개 이상의 종에서 이러한 단백질이 제한된 종 특이적 염기서열 변이를 나타내는 단백질을 식별하려고 합니다. 이들은 해당 단백질입니다. 단백질 분해 후, 해당 단백질은 펩타이드를 발생시키며, 그 중 일부는 마찬가지로 모 단백질에서 유전된 종 특이적 서열 변이를 표시합니다. 이들은 해당 펩타이드입니다. CPCP 접근법은 해당 펩타이드의 수준을 모니터링하여 혼합 종 샘플에서 두 개의 해당 단백질의 수준을 비교하는 데 사용할 수 있습니다.

알려진 펩타이드를 검출하기 위한 천연 기술은 다중 반응 모니터링 질량 분석법 또는 MRM-MS⁷입니다. 종 특이적 펩타이드는 전구체 이온을 생성하며, 이는 질량 분석 단편 이온과 함께 소프트웨어 도구에 의해 사전에 쉽게 항목화됩니다. 그런 다음 이러한 목록을 사용하여 질량 분석기에 특정 전구체와 단편 이온 쌍만 기록하도록 지시하는 데 사용되며, 이를 전이라고 합니다. 따라서 특정 표적 펩타이드는 질량 분석기에 선행하는 크로마토그래피에서의 머무름 시간뿐만 아니라 공통 전구체 이온을 공유하는 일련의 전이에 의해서도 식별됩니다. 이는 질량분석기 자원을 효율적으로 사용하는 알려진 펩타이드를 검출하는 매우 선택적인 수단입니다.

다른 저자들은 펩타이드 마커를 통해 육류 불순물을 테스트하기 위해 질량 분석법을 사용했지만 이질적인 단백질^8-14에서 테스트했습니다. 그러나 해당 단백질, 해당 펩타이드(CPCP) 체계를 사용하면 실험 조건을 최적화할 수 있어 알려진 종 특이적 전이에서 혼합물에 있는 종을 식별하는 데 도움이 될 수 있습니다. 또한, 해당 단백질과 펩타이드는 일반적으로 추출, 단백질 분해 및 검출 단계에서 유사하게 작용합니다. 전이 피크 면적은 정량적이고 재현 가능하기 때문에 서로 다른 종의 해당 펩타이드 쌍에서 발생하는 피크 면적의 비율은 혼합물에서 두 육류의 상대적인 양을 직접 추정할 수 있습니다. 대조적으로, 보다 전통적인 정량 분석 경로는 절대 정량 분석을 설정하기 위해 참조 물질을 기반으로 하는 보정을 활용합니다^14,15.

프로토콜은 미오글로빈과 육류의 맥락에서 설명되지만, 미오글로빈 이외의 단백질은 잠재적으로 프로토콜에 대한 수정이 있을 수 있지만 육류 혼합물에서 CPCP 전략을 통해 식별 및 상대적 정량화에 사용될 수 있습니다. 또한 이 전략은 하나 이상의 해당 단백질을 공유하는 다른 종의 이진 혼합물에도 적용할 수 있습니다.

프로토콜의 시작점은 정제된 '참조' 미오글로빈이며, 일부 종의 경우 구매할 수 있지만 다른 종의 경우 기존의 크기 배제 크로마토그래피로 준비해야 합니다. 참조 미오글로빈을 제조하는 절차는 프로토콜에 포함되어 있지 않지만 다른 곳에 설명되어^{있습니다 3}. 소프트웨어 도구⁽¹⁶)는 관심의 미오글로빈으로부터 발생하는 후보 펩티드 및 전이를 나열하는 데 사용된다. 각 참조 미오글로빈은 단백질 분해 및 결과 펩타이드를 액체 크로마토그래피, 전기 분무 이온화, 탠덤 질량 분석법(LC-ESI-MS/MS)으로 분석하여 후보 전구체 이온 및 전이 중 어느 것이 가장 유용한지 확인하고 일치하는 펩타이드 머무름 시간을 결정합니다. 이 단계의 결과는 종 결정에 적합한 전이가 있는 표적 펩타이드의 수정된 목록과 상대 정량화에 적합한 CPCP 쌍 목록입니다. 실제 육류를 테스트하기 위해 샘플 추출을 준비한 다음 단백질 분해를 거쳐 미오글로빈과 기타 외부 단백질에서 펩타이드를 생성합니다. 그런 다음 미오글로빈 기반 펩타이드는 나열된 전이를 기반으로 LC-ESI-MS/MS에 의해 모니터링됩니다. 혼합물에 존재하는 종은 마커 펩타이드와 관련된 전이 피크에 의해 식별됩니다. 이진 혼합물에서 두 고기의 상대적인 양의 추정치는 전이 피크 면적의 비율을 사용하여 계산됩니다. 고기 쌍의 테스트 혼합물 세트를 사용하면 주어진 전이 쌍에 대한 피크 면적의 비율을 실제 혼합물에 대해 확인하고 보정할 수 있습니다.

프로토콜

1. 단백질 분해 및 참조 Myoglobins 분석

1. 참조 myoglobins의 단백질 분해
   1. (- 25 MM의 중탄산 암모늄 0.5 ㎎ / ㎖ 범위 0.2) ³ 정제 된 기준 myoglobins의 솔루션을 준비합니다.
   2. 전송 한 2 mL의 원심 분리 튜브에 각 시료 용액의 분취.
   3. 열적으로 30 분 동안 95 ° C에서 핫 블록 내의 샘플을 가열함으로써 상기 추출 된 단백질을 변성시킨다. 실온에 도달 할 때까지 약 15 분 동안 샘플을 냉각. 다음, 소화를 향상 혼합 요소 (최종 농도 0.5 M) 30 mg을 추가합니다.
2. 트립신 단백질 분해
   1. 25 mM의 중탄산 암모늄의 트립신의 1 ㎎ / ㎖ 용액을 제조하고 필요에 따라 얼음에 저장합니다. 트립신의 충분한 볼륨을 추가 최종 효소 활성이 420 BAEE입니다 (N- 벤조일-L 아르기닌 에틸 에스테르 염산염) 단위 / 추출 된 단백질의 ㎎을 한 후 부드러운 텍싱하여 혼합 3에서 하룻밤 proteolyze 수 등7 ° C.
   2. 단백질 분해의 완전성을 입증 소듐 도데 실 설페이트 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (SDS-PAGE) ^(17)를 수행한다.
3. 후 단백질 분해 시료의 탈염
   1. 2 V : 물 V 샘플 1을 희석.
   2. 중합체 역상 활성화 (RP) 카트리지를 메탄올 1 ㎖를 첨가하여 30 mg을 RP 물질로 채워진 후, 1 ml의 1 % 포름산을 첨가하여 카트리지 평형.
   3. 중력에서 카트리지에 샘플을로드합니다.
   4. 중력에서 5 % 메탄올 / 1 % 포름산 1 ㎖로 세척.
   5. 중력에서 5 μL의 디메틸 설폭 사이드 (DMSO)로 채워져 2 ml의의 microcentrifuge 튜브에; : 아세토 니트릴 / 물 1 ㎖ (0.1 % 포름산 V 90:10 V)로 펩티드를 용출.
   6. 그런 다음 250 ㎕의 아세토 니트릴 / 물에 재용 해 잔사를 120 분 동안 원심 증발기를 사용하여 50 ℃에서 진공하에 용매를 제거한다 (3:97 V : V, 0.1 % 포름산).
   7. 이전낮은 볼륨 오토 샘플러 바이알에 대한 해결책.
      참고 : 시료는 액체 크로마토 그래피 질량 분석법 (LC / MS) 분석을 위해 준비 될 때까지 4 ℃에서 저장 될 수있다.
4. MRM에 대한 전환 목록의 생성
   1. UniProt 데이터베이스에서 다른 고기에 대한 미오글로빈 시퀀스를 찾습니다.
   2. (예 스카이) 펩티드 및 전이 예측 소프트웨어 '타겟'박스로 미오글로빈 서열을 입력한다. 필요한 경우, 그 조각 목록을 표시 할 수있는 펩타이드를 위로 마우스.
   3. '설정'을 클릭하고 '펩타이드 설정'을 선택합니다. 입력 소화를위한 환경 설정 (즉, 트립신) 및 놓친 분열의 수 (0). 특히, 추가 매개 변수에 필요한 선택 입력 펩타이드 길이 (6-25)는 N 말단 제외 (0) 및 (없음) 아미노산 수정을지지 않습니다.
   4. '전환 설정'을 '설정'을 클릭하여 선택합니다. 에 대한 환경 설정을 선택합니다LC / MS 분석을 위해 사용되는 기기 종류.
   5. '내보내기'를 클릭하고 생성 된 MRM 전환 및 매개 변수를 포함하는 스프레드 시트를 작성하는 '전환 목록'을 선택합니다.
5. LC / MS 분석으로
   1. 고성능 액체 크로마토 그래피 (HPLC) 오토 샘플러 C18 코어 쉘 HPLC 컬럼 (10cm X 2.1 mm 바이너리 구배 시스템 (V 물 (A) 및 아세토 니트릴 (B) 0.1 % 포름산 V 각각)를 설정 , MRM 검출 긍정적 인 전기 분무 모드에서 작동 삼중 사중 극자 질량 분석기에 연결된 2.6 μm의 입자 크기).
   2. 데이터 수집 소프트웨어 (예를 들어, 애널리스트)에서 '파일'과 '새'를 선택하고 팝업 상자에서 '취득 방법'을 클릭 한 후 '확인'을 클릭합니다.
      참고 :이 새로운 LC / MS 방식의 설정을 가능하게 연결된 장치의 목록이 들어있는 계기 방법 편집기를 엽니 다.
   3. '바이너리 펌프'그리고 난을 클릭nput 5 분, 23 분에서 100 % B까지 증가 유량 값 (300 μL / 분), 22 분에 걸쳐 30 % B로 3 % B의 바이너리 구배 프로파일을 설정 테이블의 구배 시간, 세척 또 6 분 동안 초기 조건 및 재 평형에 반환하기 전에.
   4. '오토 샘플러'를 클릭하고 주입량 (5 μl를) 삽입합니다. '바늘 세척주기를'사용하고 '세척 시간'(30 초)를 입력하고 '세척 포트'를 선택합니다.
   5. '온도 조절 열 컨트롤러'와 '열 오븐 등록 정보'설정 '왼쪽 온도'와 '마우스 오른쪽 버튼으로 온도'(40 ° C)을 클릭합니다.
   6. '질량 분석기'를 클릭 한 다음 소스 가스 조건을 입력하는 '매개 변수 편집'을 클릭합니다. '긍정적'으로 'MRM (MRM)'와 '극성'와 '스캔 유형'를 선택합니다. 액정 분석를 들어, 총 시간을 '기간 요약'으로 이동하고 '지속 시간'을 입력D 평형 (35 분).
   7. 표에서 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하고 테이블에 이러한 열을 추가하는 '디 클러스터링 잠재력 (DP)'와 '충돌 에너지 (CP)를'를 선택합니다. 전환 목록 (단계 1.4.5 참조)에서 만든 하나의 고기 종에 대한, 모든 전환에 대한 Q1, Q3, 시간 (밀리 초), ID, DP 및 CE 값을 입력합니다.
      주 : 시간 ​​(밀리 초)을, 드웰 시간 질량 분석기 각 전이 스캔 소요 시간을 의미 합은 3 초를 초과하지 않아야한다.
   8. 획득 방법 파일 (파일 확장자 .dam)를 저장합니다.
      참고 : - 1.5.8 각 고기 종에 대해 반복 할 필요가 1.5.2이 단계를 반복합니다. 이 아래 분석을위한 준비 화면 모드에서 각각의 고기 종에 대해 하나의 방법 파일을 생성합니다.
   9. 데이터 수집 소프트웨어에서 '획득'을 클릭하고 '평형'를 선택합니다. 상자가 열리면, 악기 평형을 시작하기 위해 필요한 취득 방법을 선택합니다.
   10. 아칸소에서 샘플 튜브를 넣어자동 샘플러에 ACK.
   11. '파일'을 클릭하고 '새'다음 '취득 배치'를 선택합니다. '샘플'탭에서 '샘플 추가'후 '설정 추가'를 선택합니다. 샘플의 수를 분석 할 삽입하고 '확인'을 클릭합니다. '취득'상자에서 드롭 다운 메뉴에서 분석을 위해 사용되는 방법 파일을 선택합니다.
   12. 표에서 '플레이트 코드'를 선택하고 드롭 다운 메뉴에서 해당 용지함 구성을 선택합니다. 그 후에 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭을 열 머리글 '코드 플레이트'를하고 '아래로 채우기'에 왼쪽을 클릭합니다. '유리 병 위치'에서 행 오토 샘플러의 각 샘플의 위치를​​ 입력합니다.
   13. '데이터 파일'에서 인수에 대한 파일 이름을 입력 열 머리글에서 다음 왼쪽 버튼을 클릭 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭 한 다음 및 '아래로 채우기'를 선택합니다. '샘플 이름'에서 각각의 시료의 식별이 분석 될 삽입한다. 획득 배치 파일로 저장 (파일 전자xtension .dab).
   14. 다음 LC / MS에서 분석 할 필요가 샘플을 선택한 후 '제출'탭을 클릭합니다. '제출'을 클릭합니다. 분석을 시작하기 위해 '샘플 시작' '취득'을 클릭합니다.
       참고 : 각 취득 방법은 하나의 고기 종에 대한 크로마토 그래프의 전체 길이에 걸쳐 MRM 전이를 검색합니다. MRM 획득을위한 질량 분석기 설정은 기기 종류와 펩타이드에 따라 다릅니다.
   15. 데이터 열람 소프트웨어를 사용하여 생성 된 데이터 파일을보기. XIC (추출 이온)과 하나의 전구체 (Q1)에 대한 모든 조각 (Q3 값)을 강조 드롭 다운 목록을 클릭합니다. 새 창은 만 선택한 전환을 보여줍니다 열립니다.
   16. 이러한 단일 펩티드에 상응 때문에 동시 천이 그룹의 유지 시간 _(t R _용)을 기록한다.
   17. 각각에 대한 각각의 펩티드에 피크를 할당하기 위해 전환의 각 세트에 대해 이전 두 단계를 반복합니다고기 종의.
   18. 종의 식별을 제공하기위한 적합한 표식 펩티드를 기록 (예를 들면, 펩티드 HPGDFGADAQGAMTK 전구체 m / z = 752, R의 _t = 말 12.0 분) 상대 정량에 적합한 대응하는 쌍 형성되는 동시에 그 체류 시간을 갖는, 한주의 .
       참고 : 예를 들어, 말 마커 펩타이드 (전구체 m / z = 752)는 해당 쇠고기 펩타이드, HPSDFGADAQAAMSK (전구체 m / z = 767, R의 _t = 13.2 분)가 있습니다.
   19. 차례로 각 고기 종 데이터 열람 소프트웨어 고기 종을 모두 수용하는 단일 동적 메소드를 생성 (1.5.8의 특정 펩타이드에 지정된) 각각의 전구체에 대한 XIC 전이 데이터를 열기 위해.
   20. 왼쪽 버튼으로 클릭하여 선택한 유지 시간에 피크 클러스터 확대 및 클러스터 아래에 커서를 드래그. (피크 레이블을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭) 가장 강렬한 전환을 확인합니다.
   21. 수동으로 전환을 기록스프레드 시트 및 체류 시간.
   22. 액정 / MS 소프트웨어에 대한 새로운 동적 방법으로 매개 변수를 입력하려면 '질량 분석기'를 클릭 한 다음 소스 가스 조건을 입력하려면 '매개 변수 편집'을 클릭합니다. '긍정적'으로 'MRM (MRM)'와 '극성'와 '스캔 유형'를 선택합니다.
   23. '기간 요약'로 이동합니다 (LC 분석 및 평형의 총 시간으로 설정) 지속 시간을 입력합니다. 표에서 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하고 테이블에 이러한 열을 추가하는 '디 클러스터링 잠재력 (DP)'와 '충돌 에너지 (CP)를'를 선택합니다.
       참고 : '시간'열은 이제 각각의 전환에 대한 예상 체류 시간 (분)을 의미한다.
   24. 액정 / MS 데이터 수집 소프트웨어의 '매개 변수 편집'섹션에서 '예약 MRM'확인란을 선택합니다. Q1, Q3, 시간 (분), ID, 스프레드 시트 (1.5.21)에서 만든 전환에 대한 DP 및 CE 값과 취득 방법을 저장 (FIL 입력전자 확장 .dam).
       주 :이 방법은 일반적 MRM 수가 각 펩티드에 대해 4 개의 가장 강한로 천이 향상된 감도 데이터의 품질을주는 각 펩티드 피크 유지 시간 창에 걸쳐 스캔 줄인다. A '동적'방법은 '유도 보유 시간 윈도우'방법이라고도 일정입니다.

교정 샘플 2. 준비 및 분석

1. 고기 혼합물의 추출
   1. 이전 다음 분말로 분쇄 냉동 고기를 사용하여, 15 ml의 플라스틱 원심 분리 튜브에 고기 각각 양 (약 300 mg의 총 중량)을 칭량하여 고기 혼합물의 범위를 준비한다.
   2. 추출 완충액 (pH 6.5에서 + 0.15 M 인산 완충액 0.15 M 염화칼륨)의 4 ML을 추가합니다. 30 초 동안 소용돌이. 250 회 / 분으로 실온에서 2 시간 동안 실험실 진탕 추출 하였다.
      참고 : 사이클 / 분은 진동 운동을 의미한다.
   3. 의 2 ml의 이동2 ML의 microcentrifuge 관에 압축을 풉니 다. 17,000 X g에서 4 ° C에서 5 분 동안 원심 분리기.
   4. 전송 200 μL를 2 mL의 원심 분리 튜브로 상청액의 분취 액 (단백질 분석 용 소량 비축 2.2 참조), 원심 증발기를 이용한 드라이 (미리 설정된 프로그램 : 50 ° C, 아니 배기 120 분의 지속 시간).
2. 단백질 분석
   1. 이전 96 웰 플레이트의 각 웰에 삼중으로 예약 상청 7 μL 씩 (2.1.4 참조).
   2. 전송 중으로 단백질 표준 시리즈 7 μL 씩 범위 0-1.0 ㎎ / ㎖ 소 혈청 알부민 (BSA), 동일한 96 웰 플레이트.
   3. 각 웰에 쿠마 플러스 단백질 분석 시약 200 μl를 추가합니다.
   4. 육안으로 샘플을 검정 표준의 범위에 체크 단백질 표준 시료 웰의 색을 비교한다. 필요한 경우이 범위가되도록 희석 샘플을 반복합니다.
   5. 일에 접시를 남겨주세요3 분.
   6. 피하 주사 바늘을 형성 한 모든 거품을 버스트.
   7. 595 nm의 파장에서 종료점 표준 프로토콜을 이용하여 플레이트 판독기에서 플레이트를 분석한다.
   8. 단백질 수준에서 캘리브레이션 데이터를 사용하여 샘​​플의 단백질 농도를 결정한다.
      주 :이 트립신 다이제스트에 사용 트립신의 양의 계산에 필요하다.
3. 고기 혼합물의 단백질 분해
   1. 25 mM의 중탄산 암모늄 용액 1 ㎖의 단계 2.1.4에서 건조 잔류 재용. rotamixer 잘 섞는다.
   2. 1.3.7에 단계 1.1.3에서 프로토콜을 따르십시오.
4. LC / MS 분석으로
   1. 이전에 (단계 1.5.1)로 LC / MS를 설정합니다.
   2. 고기 종을 모두 결합 동적 LC / MS 방법을 사용 1.5.24에서 단계에서 생성 된 수집 방법을 선택, 그리고에 대한 데이터를 수집 - 이전에 설명 된대로 새 획득 배치 만들기 (1.5.14 1.5.9 단계) diges테드 고기 샘플.
   3. 데이터보기 소프트웨어의 전체 크로마토 그램을 표시합니다. 다시 설정 한 각 전환에 대한 XIC을 표시합니다. 시각 각 클러스터함으로써 선택된 펩티드의 존재를 확인하고, 예상되는 유지 시간 종형 피크의 필요한 수를 포함 확인.
   4. 탐색 줄에 '정량 방법을 구축'을 두 번 클릭하여 관심의 전환의 각 피크 면적을 통합 할 수있는 소프트웨어를보고있는 데이터를 사용하여 정량을 수행합니다.
   5. '선택 샘플'창에서 '데이터 파일'및 '샘플'을 선택하는에 '분석 물'테이블을 생성하기 위해 분석된다.
   6. 통합 할 수있는 전환 (분석 물)의 첫 번째 표시하는 '통합'탭을 클릭합니다.
   7. 전환의 드롭 다운 목록을 표시하는 '분석 대상'상자를 클릭합니다. 를 표시하고 시각적으로 정확한 피크 통합을위한 선택 확인 차례로 각 전환을 선택합니다. m에odify 또는 통합, 왼쪽 클릭을 강제로 대상 피​​크 위에 커서를 (이 녹색으로 강조 표시됩니다) 드래그합니다. '선택 피크'버튼을 클릭하고 '적용'을 클릭합니다.
   8. 방법 파일 (.qmf)로 작업 영역을 저장합니다.
      참고 :이 샘플 피크 면적의 후속 계산에 대한 정량 방법 파일을 만듭니다.
   9. 탐색 줄에 더블 클릭 '정량 마법사'. '선택 샘플'창에서 다음, 하나 또는 그 이상의 '사용 가능한 샘플'하나의 '데이터 파일'을 선택하여 '정량 설정'을 만들 수 있습니다. 선택 '다음' '설정을 선택하고 검색어'상자를 표시합니다. '다음'을 '선택 방법'을 표시하도록 선택, 기본값으로 둡니다. '방법'상자 단계 2.4.8에서 만든 '통합 방법'파일을 선택 드롭 다운에서 다음 '마침'을 선택합니다.
      참고 :이 고기 혼합물에서 발생하는 전이 피크 면적을 포함하는 '결과 표'를 작성합니다.
   <리>는 '결과 테이블'(파일 확장자 .rdb), 텍스트 파일로 내보내기 (이 .txt)를 저장하고 데이터를 검토 할 스프레드 시트에서 엽니 다.
   10. , 펩티드를 대응하는 두 개의 조각이 포함되어 이러한 경우에 초점을 맞추고에서 선택한 전환을위한 선택 MRM의 두 고기의 측정 비율에 비해 또 다른 하나의 고기 (전이 피크 면적) 비율의 플롯 그래프 (w / w) C- 말단 단부로부터 계산으로 아미노산 동일한 번호.
       참고 : 동일한 분열 사이트와 동일한 조각이 최적의 결과를 제공합니다.
   11. 위의 2.4.11에서 플롯을 검사합니다. 육안 또는 플로팅 패키지 추세선 도구를 이용하여 선형 구배 유사한 두 플롯이다들의 그룹을 식별한다. 실제 육류 시료 교정이 CPCP 플러스 단편의 조합 중 어느 하나 이상을 사용한다.
       참고 : 이상한 그라데이션을 보여주는 그래프는 신호 헤어 구조 강화의 결과의 감소와 펩타이드 또는 단편 억제를 표시 할 수있다ngth. 비선형 플롯 불량 피크 검출이나 다른 문제를 나타낼 수있다.

3. 고기 샘플

1. 대상 고기 시료에서 단백질을 추출
   1. 어디 주걱을 사용하여 샘​​플에서 적용 소비세 외부가 아닌 고기 재료. 예를 들어, 냉장 라자냐에서 소스와 파스타를 멀리 쳤어요.
   2. 금속 비커에 고기 20g의 무게.
   3. pH가 6.5에서 0.15 M 염화칼륨 / 0.15 M 칼륨 모노 포스페이트 버퍼 100 ㎖를 추가합니다.
   4. 1 분 동안 고속 균질에서 고기를 혼합하여 단백질을 추출합니다.
   5. 2.3.2 - 2.1.4 단계에서 프로토콜을 따르십시오.
2. LC / MS에 의한 분석 샘플
   1. 반복 단계 2.4.2 동적 LC / MS 방법을 사용하여 데이터를 획득한다.
   2. 단계 2.4.3에서 수행 각 고기 미오글로빈에서 펩티드를 확인합니다.
   3. 정량을 위해, 관심있는 각각의 전환에 대한 피크 면적을 정량 통합 소프트웨어를 사용하여,로 단계 2.4.9에 설명.
   4. 혼합물에서 종의 식별을 위해, 전환의 숫자 합의 된 기준을 만족하는 마커 펩티드를 기록하고 그 전환에 대한 잡음 신호.
   5. 정량 전이 피크 면적 비율을 이용하여, 단계 2.4.12의 합의 통합 전이 피크 면적을 사용하고, 혼합물에서 두 종 마이오글로빈의 비율을 계산한다.
   6. 샘플에 존재하는 두 개의 고기의 상대적인 w / w 금액을 추정하기 위해 고기의 가능성이 미오글로빈 수준의 문학 ^(18)의 사전 지식을 사용합니다.

결과

단일 동적 모드 MRM 실험에서, 각 프로그램의 전환 별도로 기록 지정된 체류 시간 윈도우 위에 (초당 검출기 카운트 CPS 등). 모든 데이터는 하나의 실험에서 수집 따라서, 각각의 전이에 대한 피크 세기를 개별적으로 추출 할 수있다. 이어서 오직 제한된 신호는 전이 설정된 유지 시간 윈도우에 대한 것이다. 윈도우의 외부 신호는 정의에 의해 제로이다. 예를 들어 어느 한 전환의 신호, 말에서 752 → 1269 (질량 1,501.66 달톤은, 전구체 이온 m / z 751.84 달톤이 상태 = 2, 조각 이온 Y ^(13)를 충전 모노 이소 토픽 펩타이드)는 일반적으로 측정 노이즈가 아닌에서만 경쟁 할 수있다 아마도 다른 종에서 할 수있는 다른 전이 피크에서. 출력은 따라서 일반적인 이온 전구체를 공유 이러한 전환을위한 공통 유지 시간 깨끗한 피크 전이마다 하나의 세트이다.

그림 1 w / w 1 %의 혼합물 네 전환 (752) → (1269, 706, 248, 1366)의 세트에 대한 출력을 보여줍니다 쇠고기의 말. 표시되는 네 개의 전환이 말과 관련된, 순수 쇠고기, 양고기 또는 돼지 고기의 샘플에 결석하고 있기 때문에,이 피크는 말의 존재를 의미. 잡음 레벨이 식별을 확립 강건성 기준 둘 이상의 천이의 세트에 따라 각 일부 특정 신호를 초과. 이 그림은 따라서 쇠고기의 말 w / w는 1 %의 혼합물에 말의 존재를 설정합니다.

때때로, 단일 절연 전환이 검출된다. 이 질량 분석기로 시스템에서 예상 프로그램시켜 사람들과, 아마도 외부 단백질에서, 전구체 이온 및 단일 조각의 기회 일치를 나타냅니다. 단수 피크의 본질 및 예기치 유지 시간의 발생은 SI 인무시 될 수있는 사고의 전환 gnature.

각 전이 피크 아래의 면적을 개별적으로 산출 할 수있다. 767가 → 1,299 (쇠고기). 혼합물의 실제 고기의 비율에 비례도 2 할이를 보여줍니다에 예 → 1,269 752 (말)에 적합한 조각, 쇠고기 전이 피크 면적에 말의 비율에 기초하여 쇠고기와 말의 혼합물에서 말의 무게 비율 무게에 비해 두 전환에 대한 피크 면적 비율의 줄거리. 백분율 전이 피크 면적 고기의 중량에 대한 퍼센트 중량 일치한다면 경사면이 곡선에서 기울기가 이러한 전환 및 CPCP 쌍에 대해, 상기 전이 피크 면적은 상대적인 양의 안정적인 측정을주고 있음을 나타내는, 1.03 1. 인 혼합물에서 두 고기. 의 기울기, 다른 요인 변화와 샘플의 말 고기 후, 쇠고기 등 미오글로빈의 두 배 풍부한 경우 라인 1보다 클 것이다.

그림 쇠고기의 말 w / w 1 %를위한 체류 시간 대 1. MRM 전이 강도. 트랜지션은 → (1269, 706, 248, 1366) 752입니다, 오렌지, 각각 검정, 파랑과 녹색으로 표시. 표식 펩티드 HPGDFGADAQGAMTK이다. 네 개의 전이 단편의 ^{Y, n은} 상기 펩티드의 C 말단으로부터 N 개의 아미노산 카운트 각각 나타내고, Y ^13, Y ^7, Y ^2, Y ^(14)을, 표시 할 수있다. 잡음 신호는 23에서 4 개의 전환을 통해 53 다릅니다. 추가 빨간색 선은 0 % 말, 비교를 위해 100 % 쇠고기에 대한 752 → 1269 전환을 의미한다. 체류 시간 만 비제 영역이 표시된다. 이 수치는 왓슨 등. ^3에서 수정되었습니다.에스 / ftp_upload / 54420 / 54420fig1large.jpg "대상 ="_ 빈 ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림. 줄거리는 펩타이드 쇠고기 (767)와 말 (752) 모두에 대한 Y ⁽¹³⁾ 조각 이온의 쌍을 사용 %의 전이 피크 면적으로 쇠고기의 말에 비해 무게 %의 무게로 쇠고기의 말 2. 플롯,. A는 피크 면적을 나타낸다 경우 종축 (100) _H / (A + _H A _B)이다. 가장 적합한 선 (R ² = 0.99)의 기울기는 1.03이다. 이 그림은 왓슨 등. ^3에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

토론

적당한 표적 단백질의 선택은 중요하다. 좋은 표적 단백질 관심 종에 대응하는 형태로, 충분한 종에 의존하는 순서 변화, 종 특이성을 가지고 생물체 내에서 액세스 할 수있는 수량에 존재해야합니다. 처리를 거친 혼합물 (예를 들면, 열 처리)을 평가하기 위해, 그 처리에 비교적 면역 서열을 갖는 단백질이 바람직하다. 미오글로빈 조리 붉은 육류 포함 붉은 육류, 좋은 후보이지만, 유일한 가능성이 아니다. 표적 단백질이 결정되면, 프로토콜의 가장 중요한 부분은 단백질 분해 단백질이다. 미오글로빈 상이한 단백질은 또한 다른 단백질 분해 프로토콜을 요구할 수있다.

기술 된 바와 같이 프로토콜을 참조하여 정제 된 단백질에 기초하여 세그먼트를 포함한다. 이것은 고정 된 시간 윈도우 적합한 전구체 및 단편 이온을 발견하는 것이다. 이 세그먼트는 매우 유용하지만 필수적인 것은 아니다.

때로는 순서 차이 분해 프로파일에 극적인 영향을 갖는 경우이다. 예를 들어, 펩티드 쌍 VLGFHG (소) 및 ELGFQG (말) (구배도 2 미만 매니페스트) 변칙적 정량 결과를 제공한다. 후자의 펩티드 혼합물 중 말의 레벨의 과소 추정을 일으키는 비교적 억제 KE 절단에서 발생하기 때문이다. 다른 아미노산으로 시작하는 해당 펩티드 때문에 피해야한다. 종종 두 대응 펩타이드의 단편은 동일한 아미노산 서열을 가지고 잘 작동되지만, 항상 그런 것은 아니다 및 방법 개발 과정에서 체크 될 필요가있다. 종 식별이 훨씬 덜 민감 상대 정량보다이 문제입니다.

이 프로토콜은 4 개의 빨간 고기 입증되었다의 ^3. 너무 많은 마커 펩티드 공동 용출 경우 전이 피크 형상의 품질을 효과적으로 유지 시간을 감소시키고, 궁극적으로 상대적 정량 평가를 저하 떨어질 수 있지만 추가 고기 종을 포함 할 수있다. 이미 개선 된 계측은이 향상됩니다. 이와 관련된 문제는 모든 고기는 다른 myoglobins을 가지고있다. 예를 들어, 말, 당나귀 얼룩말 myoglobins는 동일하므로 엄격하게하는 방법을 아는 것은 쇠고기 또는 말, 당나귀 또는 얼룩말를 단지 검출 할 수있다. 어떤 경우 myoglobins 동일하지 않더라도, 일부 키 펩타이드 일 수있다. 예를 들어, 일부 양고기 미오글로빈 유래 마커 펩티드는 염소에 나타납니다.

이것과 다른 단백질 기반 정량 방법에 대향 합병증 단백질 또는 펩티드 수준은 혼합물의 고기 수준 사소 동등 할 경우, 단백질 수준은 모든 종에 걸쳐 일정한 것으로 가정되어야한다는 것이다. 미오글로빈과 4 개의 빨간색 m에 대한이 보편적으로 사실이 아니다 먹는다. 일반적으로 레벨은 네 가지의 가장 낮은 수준을 보이는 돼지 고기 의존하는 종이다. 또한, 미오글로빈 수준은 고기 컷과 동물의 연령에 따라 달라집니다. 전이 피크 면적의 비율이 미오글로빈의 비율에 안정적으로 매핑하지만 그래서, 실제 고기의 비율에 매핑 혼합물에서 고기의 가능성이 소스에 관한 가정에 추정 도면이다.

이 연구에서 제시된 방법은 다른 번역 기부에서 다수의 방식으로 다르​​다. 더 일반적인 경로는 다른 종을위한 마커가 서로 ^{8-12,14,19과} 특별한 관계를 보유하지 않는 경우에 다양한 다른 종 - 의존성 표식 펩티드를 식별하기 위해 프로테오믹스 방법을 사용하는 것이다. 대조적으로, 우리는 종에 의존하는 순서가 ^{3 변종까지} 관심의 모든 종에 공통 단백질을 선택했습니다. 상대 정량 외에도 우리 전략의 핵심되는이 그 샘플 이점을 갖는다제조 전략이 최적화 될 수있다. 또, 해당 단백질을 추출 또는 이러한 조리 또는 통조림 등의 상업용 샘플의 처리, 예를 들면, 유사하게 동작 할 것으로 예상 될 수있다. 종 식별은 일반적으로 통상적으로 하나 또는 두 서열의 차이를 갖는 밀접하게 관련 펩티드의 검출을 통해 CPCP 접근 종 식별에서 진행하는 반면, 다른 표식 펩티드의 검출로 진행한다. 마지막으로, 단백질의 정량은 통상적으로 별도 알려진 표준 ^7,14,15에 따라 각 단백질의 절대 정량을 통해 진행 수도 다른 한 종의 중량 비율을 추정합니다. 그러나 교정 방법에 대한 필요가없고 CPCP 방법을 사용. 대신, 상대 수준은 모두 절대 측정 단계를 거치지 않고 두 종에서 두 대응하는 펩타이드의 신호 강도를 비교하여 추정된다. 궁극적 인 목표는 항문에 한 종의 중량 비율이기 때문에THER 상대적인 정량은 다음 CPCP 모두 직접적인 두 절대 정량 측정들을 비교하는 것보다 간단하다. 이러한 기능 식품 사기 탐지의 영역에서 빠른 감시 도구와 기술이 유용하게 정제 된 프로토콜을 사용하여 약 2 시간이 될 것으로 예상 짧은 실험 시간으로 변환합니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록

이름	회사	카탈로그 번호	댓글
Uniprot 데이터베이스	www.uniprot.org		자유롭게 액세스할 수 있는 단백질 염기서열 데이터베이스
Skyline 소프트웨어	www.skyline.gs.washington.edu		체학 연구, 펩타이드 및 단편을 위한 표적 분석법을 생성할 수 있는 무료 소프트웨어 다운로드 예측
암모늄 중탄산염	Sigma-Aldrich Co Ltd, Gillingham, UK www.sigmaaldrich.com	O9830
메탄올, HPLC 등급	Fisher Scientific, Loughoborough, UK www. fisher.co.uk	10674922
Acetonitrile, HPLC 등급	Fisher Scientific, Loughoborough, UK www. fisher.co.uk	10010010
Urea	Sigma-Aldrich Co Ltd, Gillingham, UK www.sigmaaldrich.com	U5378
트립신(TPCK로 처리된 소 췌장에서)	Sigma-Aldrich Co Ltd, Gillingham, UK www.sigmaaldrich.com	T1426
포름산	Sigma-Aldrich Co Ltd, Gillingham, UK www.sigmaaldrich.com	F0507
Coomassie Plus 단백질 분석 시약	Thermo Fisher Scientific www.thermofisher.com 1856210
단백질 표준	Sigma-Aldrich Co Ltd, Gillingham, UK	www.sigmaaldrich.com P0914
Ultra Turrax homogeniser T25	Fisher Scientific, Loughoborough, UK www. fisher.co.uk	13190693
Edmund and Buhler KS10 lab shaker
Heraeus Fresco 17 원심분리기	Thermo Fisher Scientific www.thermoscientific.com	75002420
진공 원심분리기 RC 1022	Jouan
Plate Reader
Strata-X 33u 고분자 역상 카트리지 60 mg/3 ml 튜브	Phenomenex, Macclesfield, UK	8B-S100-UBJ
4000 QTrap 삼중 사중극자 질량 분석기	AB Sciex, Warrington, UK www.sciex.com
1200 고속 분해능 LC 시스템	Agilent, Stockport, UK
XB C18 역상 모세관 컬럼 (100 mm x 2.1 mm, 2.6 µ m 입자 크기)	Phenomenex, Macclesfield, UK www.phenomenex.com
Analyst 1.6.2 software	AB Sciex, Warrington, UK www.sciex.com		피크 면적 통합을 포함한 QTrap 데이터 수집 및 분석
Autosampler 바이알