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방법 논문

마우스 파골 세포 전구체의 노치 신호 전달의 자극

8K 조회수

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DOI:

10.3791/55234

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2017년 2월 28일

 ,  ,  , 
1Department of Orthopaedic Surgery, Perelman School of Medicine, University of Pennsylvania, 2Department of Biological Sciences, University of the Sciences, 3The Department of Small Animal Clinical Sciences, College of Veterinary Medicine, Michigan State University, 4Department of Biology, College of Science, Technology, Engineering, & Mathematics, Eastern Washington University

이 논문에서

요약

노치 신호는 세포 간의 직접 접촉에 의존하는 셀룰러 통신의 한 형태입니다. 체외에서 Notch 신호를 적절하게 유도하려면 Notch 리간드를 고정된 상태의 세포에 제공해야 합니다. 이 프로토콜은 마우스 파골세포 전구체에서 Notch 신호의 체외 자극 방법을 설명합니다.

초록

노치 신호전달은 여러 생리학적, 병리학적 과정의 핵심 구성 요소입니다. 그러나 Notch 신호의 특성으로 인해 다양하고 때로는 모순되는 역할에 대한 체외 조사가 어렵습니다. 원형질막에 결합된 수용체와 리간드가 모두 있는 직접 세포-세포 통신의 구성 요소로서, Notch 신호전달은 다른 많은 신호 경로에서 가능한 것처럼 배양 배지에 리간드를 단순히 추가하는 것만으로는 체외에서 활성화될 수 없습니다. 대신, 노치 리간드는 고정된 상태의 세포에 제공되어야 합니다.

Notch 신호 활성화 방법의 변화는 배양된 세포에서 다른 결과를 초래할 수 있습니다. 특히 파골세포 전구체의 경우, Notch 자극 방법과 파골세포 전구체 배양 및 분화 방법의 차이로 인해 Notch 신호전달이 파골세포 분화의 긍정적 또는 부정적 조절자인지에 대한 의견 불일치가 발생했습니다. 체외 및 유전자 모델과 같은 다양한 Notch 자극 조건 하에서 파골세포 분화에 대한 면밀한 비교를 통해 Notch 신호전달 및 파골세포에 관한 논란이 크게 해결되었지만, 배양된 세포에서 Notch 신호전달의 지속적이고 일시적인 자극을 하는 표준화된 방법은 향후 이러한 불일치를 방지할 수 있습니다.

이 프로토콜은 배양된 마우스 파골세포 전구체에서 Notch 신호를 자극하는 두 가지 방법을 설명하지만, 이러한 방법은 약간의 조정이 있는 모든 부착 세포 유형에 적용할 수 있어야 합니다. 첫 번째 방법은 Notch 신호의 지속적인 자극을 생성하고 세포를 파종하기 전에 Notch 리간드를 조직 배양 표면에 고정시키는 것입니다. 두 번째는 아가로스 비드에 결합된 Notch 리간드를 사용하여 배양 표면에 이미 부착된 세포에서 Notch 신호전달을 일시적으로 자극할 수 있습니다. 이 프로토콜에는 파골세포 전구체에서 Notch 활성화를 검출하는 방법과 Notch 신호 활성화의 대표적인 전사 마커도 포함됩니다.

서론

포유류 노치 신호 전달 경로는, 초파리 melanogaster의에서 동일한 경로에 상동이며, 네 횡단 노치 수용체 (Notch1-4) 및 가변 (JAG1 및 JAG2) 및 델타처럼 (DLL1, 3의 다섯 막 결합 리간드로 구성 및 4) 가족 (1). 수신 셀에 노치 수용체가 투과 셀이 리간드에 의해 결합 될 때 노치 신호 전달이 개시된다. 이 트랜스 활성화 중에 막 결합 노치 리간드는 막 결합 수용체의 노치 (3, 4)에 인장력을 생성한다. 리간드 결합의 인장력은 프레 함유 감마 - 세 크레타 제 복합체 (γ 세 크레타 제)에 의해 매개되는 세포 내 절단 이벤트 뒤에 효소 (TACE)에 변환 TNF- 알파에 의해 수용체의 세포 분열을 촉진 노치 수용체의 구조적 변화를 유도한다. γ 세 크레타 자료 노치 INT이 CBF -1- 쓰 (H) - lag 여기서 -1- (CSL), 배후 형상 (MAML)과 전사 활성 복합체를 형성하는 핵으로 전위 시키며, 세포 유형 특이 적 인자 발현을 구동 racellular 도메인 (NICD) 유전자 5를 대상으로.

시험관 내에서 노치 경로의 활성화 방법의 고유 한 필요성 노치 신호 전달 활성 결과의 기계적 요소. 가용성 노치 리간드는 수용체를 노치에 결합하지만, 동시에 경쟁적으로 세포 관련 노치 리간드의 결합을 억제하면서 NICD 해제에 필요한 힘을 스트레칭 생산하기 위해 실패 할 수 있습니다. 따라서, 배양 배지에 용해 노치 리간드 첨가 6,7 시그널링 정상 노치를 감쇄 할 수있다. 이들이 적절 리지드 기판 (5), (8, 9)에 고정되는 경우 다행히도 노치 리간드 NICD 방출을 유도 할 수있다,10. 리간드 피복 된 배양 세포를 기판 상에 시드 또는 세포 리간드 피복 된 비드를 적용 모두 노치 신호를 활성화하고, 그들 사이의 선택은 노치 자극 원하는 타이밍에 주로 의존 할 수있다. 기능 분석 또는 분화의 중간 동안 소망되는 바와 같이 즉각적인 임시 노치 신호의 활성화를 들어, 노치 리간드는 배양 된 세포에 적용 비드를 아가 로스에 바인딩 될 수 있고 언제든지 세척. 배양 기간의 시작 부분에서 더 지속 노치 시그널링, 조직 배양 플레이트를 세포 시딩 이전 리간드로 코팅 될 수있다.

이 프로토콜의 목적을 위해, 방법은 마우스 파골 세포 전구체를 사용하여 수행되지만, 여기에 기술 된 방법에 대한 방법과 유사 세포 타입 6, 11, 12, 13의 다양한 적용하고, 14. 파골 세포는 말단 골 조직의 재 흡수에 대한 책임 분화 조혈 세포 계보이며, 그들은 골 소실 (15)의 여러 질환에 연루되어있다. 따라서, 자신의 단핵구 / 대 식세포 계통의 전구 물질로부터 파골 세포와 그 기능이 파골 세포와 새로운 뼈 재생 치료의 개발의 더 나은 이해에 필수적인 제어하는 분자 메커니즘의 분화의 생체 외 연구한다. 지금 일반적 해당 노치 시그널링은 파골 세포의 분화와 기능에 긍정적 인 역할을 허용하는 동안, 모두 노치 신호 자극 및 파골 세포 전구체의 배양과 분화의 변화는 초기 상반된 결과 16, 17, 18, 19되었다. 가까이 방법의 차이 검사와 유전자의 사용모델은 크게 파골 노치 신호 전달의 역할을 명확히했지만, 표준화 노치 자극 배양 방법의 적용은 다른 세포 유형 20, 21, 22, 23 노치 신호의 향후 연구에서 이러한 논쟁을 방지 할 수있다.

노치 신호 전달을 자극위한 다양한 방법과 같이, 가장 좋은 방법은 실험 문제에 달려있다 배양 마우스 파골 세포 전구체의 분화를위한 여러 방법이 있으며. 여기서, 마우스 긴 뼈에서 플러시 골수 세포의 부착 및 비 부착 분수를 배양하는 우리의 선호하는 방법이 표시됩니다. 이 방법은 분화 된 다양한 방법에 적용 할 수있는 세포를 본질적으로 특별한 장비가 필요없고, 제조의 이점을 갖는다.

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프로토콜

척추 동물과 관련된 모든 연구는 펜실베니아 기관 동물 관리 및 사용위원회의 대학 (IACUC)에 의해 승인 된 프로토콜에 따라 수행 하였다.

1. 문화 미디어 준비

  1. 100 ml의 열, 900 ML의 H 2 O의 최소 필수 배지 (MEM) 분말 1.9 g의 탄산 수소 나트륨을 용해하여 α-MEM을 준비하고 2 mM L- 글루타민, 100 단위 / ㎖ 페니실린, 100 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신과 보완 불 활성화 된 소 태아 혈청. 0.22 ㎛의 폴리 에테르 설폰 (PES) 필터를 이용하여 멸균.
  2. 35 NG로 α-MEM을 보충하여 식세포 매체를 준비 / ml의 재조합 마우스 대 식세포 콜로니 자극 인자 (M-CSF)
  3. 100 NG / ㎖ RANKL과 식세포 매체를 보충하여 파골 세포 배지를 준비

2. 골수 세포 분리

  1. 10 ㎖의 α-MEM와 마우스 당 25⅝ 게이지 바늘 한 10 ML의 주사기를 입력합니다.
  2. 1.3 L / min의 유량으로 CO 2 10 분간 노출을 통해 마우스 안락사. 해부를 진행하기 전에 자궁 경부 전위와 CO 2 노출에 따라 동물의 죽음을 확인합니다.
  3. 깨끗한 기술을 사용하여, 해부 및 경골과 대퇴골을 분리합니다. 경골과 대퇴골을 노출 각 뒷다리의 앞쪽 표면을 따라 절개를하기 전에 70 % 에탄올로 마우스 피부를 소독.
    1. 대퇴골의 말단을 무료로 무릎 관절을 잘라, 가능한 한 골반에 가까운 대퇴골을 잘라. 대퇴골를 제거하고 최대한 부드러운 조직을 청소합니다. 발목을 절단 경골을 제거하고 가능한 한 많은 연부 조직을 제거합니다.
  4. 2.5 ml의 실내 온도 α-MEM은 하나의 튜브에 하나의 마우스에서 골수 플러시 조합과 15 ML 원뿔 관에 집게와 플러시 골수와 뼈를 잡습니다.
    참고 : 성공적인 골수 플러시 t의 착색이 변경됩니다그는 빨간색에서 뼈 베이지합니다.
  5. 파편은 튜브의 바닥에 정착 이물질 전송을 방지하기 위해 깨끗한 15 ML 원뿔 튜브 돌보는에 뜨는을 전송 할 수 있습니다.
    참고 : 일부 세포는 골수 파편으로 정착 할 수 있습니다. 셀들의 많은 수는 필요한 경우 골 플러시 깨끗한 15ml를 튜브에 70 μm의 세포 여과기를 통해 여과 될 수있다.
  6. 실온에서 5 분 300 XG에 원심 분리기 튜브 (들) 세포 펠렛합니다.
  7. 진공 용균 완충액 0.5 ml의 암모늄 염화 칼륨 (ACK)에 재현 탁하고 상등액 세포 펠렛을 대기음 적혈구를 용해시키기 위해 3 분 동안 37 ℃에서 배양한다.
  8. 5 분 동안 300 XG에 솔루션 및 원심 분리기 세포 ACK로 직접 10 ml의 PBS를 추가합니다.
    주 : 이전에 붉은 세포 펠렛은 이제 베이지 색이어야한다.
  9. 100 밀리미터 조직 문화 처리 접시에 진공 흡인 상층 액과에 resuspend 펠렛을 10 ml의 α-MEM, 그리고 판. 가습에 37 ° C에서 하룻밤 세포를 품어조직 문화 인큐베이터.
    참고 : 세포를 계산하면이 단계에서 필요하지 않습니다. 이 시간 동안 골수 부착 세포 배양 표면에 부착한다; 비 부착 골수 세포 인구는 현탁액에 남아 있습니다. MCSF이 초기 배양시 배양액에 존재하지 않는다.

파골 세포 전구체 3. 심화

  1. 골수 플러시 한 50㎖에 비 부착 세포를 함유하는 원뿔형 튜브 전사 배양 상등액의 하룻밤 배양 후.
    참고 : 골수 중간 엽 전구 세포를 포함 부착 세포와 문화 요리, 폐기 될 수있다 또는 다른 실험을 위해 필요한 경우, 신선한 α-MEM으로 공급.
    주 : 파골 세포가 5 일 동안 격일 파골 매체 상쾌한 배지에서 4 × 105 세포 / ㎠의 밀도로 조직 배양 처리 된 요리로 도금하여이 비 부착 골수 세포에서 직접 분화 될 수있다.
  2. 18 ㎖의 최종 부피 비 - 부착 세포 용액 α-MEM을 첨가하고 35 NG / ml의 최종 농도로 M-CSF를 추가한다.
  3. 6 60mm 현탁 배양 접시에 세포 현탁액 각 3 ㎖를 추가합니다.
  4. 가습 조직 문화 인큐베이터에서 37 ° C에서 하룻밤 번호판을 품어. 이 시간 동안, M-CSF도 아닌 조직 배양 처리 된 표면에 부착 할 수 대식 세포의 분화를 자극 할 것이다.
  5. 밤새 3 ㎖ 식세포 신선한 배지로 재 공급 파골 세포 전구체를 배양 후. 이 대 식세포로 분화하지 않은 비 부착 세포를 제거합니다.
  6. 2 일 또는 문화가 약 70 %의 합류에 도달 할 때까지 CO 2를 37 ° C에서 배양 파골 세포 전구체를 계속 5 %.

4. 파골 세포의 분화

  1. CEL 때까지 실온에서 1 ml의 해양 기원의 단백질 분해 / collagenolytic 효소로 세포를 5 ml의 PBS와 파골 세포 전구체를 씻고 치료LS는 접시의 부드러운 도청에 의해 빠질 수 있습니다.
    주 :이 정지 접시에서 배양하는 경우 파골 세포 전구체가 해제 될 수있다; 전구체 해제 할 조직 문화 처리 된 표면에 너무 단단히 연결합니다. 트립신은 파골 세포 전구체를 활성화 할 수 있습니다 피해야한다.
  2. 50 ML 원뿔 튜브에 각각의 접시 및 전송 세포에 4 ㎖의 α-MEM을 추가합니다. 혈구를 사용하여 세포를 세어 mL를 5 × 104 세포 / 밀도로 세포를 희석시키고 100 NG / ml의 최종 농도로 35 NG / ㎖ 및 RANKL의 최종 농도로 M-CSF를 추가한다.
  3. 조직 배양 - 처리 된 플레이트에 2.6 × 104 세포 / ㎠의 밀도로 시드 세포는 2 일 동안 가습 된 조직 배양 인큐베이터에서 37 ℃에서 배양한다. 분화는 전형적으로 5 × 104 세포를 각 웰에 시딩 24- 웰 플레이트에서 수행된다.
  4. 이일 1 ml의 신선한 osteoc와 매체를 대체하여 분화, 재 공급 셀의 시작 후마지막 매체.
    참고 : 파골 세포의 분화는 일반적으로 3 일내 완료됩니다. 결과 파골 세포는 TRAP 염색 쉽게 정량화 및 형태 학적 분석을 할 수 있습니다.

Jagged1 코팅 된 표면과 노치 신호 전달의 5 연속 자극

  1. 10 ㎍ / ml의 농도로 PBS에 염소 항 - 인간 IgG 항체의 Fc 일시 중단 (1 : 10 ㎎ / ㎖의 스톡 1000 희석). 1.3 μg의 / ㎠의 밀도로 배양 표면 항체 용액을 첨가하고 실온에서 1 시간 동안 배양한다. 24 웰 플레이트의 경우에, 웰 당 250 μL (2.5 μg의)를 추가한다.
  2. 진공 흡인 우물과 1 ml의 PBS로 리필. 이 과정을 2 회 반복합니다.
  3. 10 μg / ml의 농도에서 재조합 Jagged1 PBS-Fc 융합체 단백질을 일시. 1.3 μg의 / ㎠의 밀도에서, 항체 - 코팅 된 배양 표면 Jagged1-FC 용액을 첨가하고 실온에서 2 시간 동안 배양한다. 배양 표면 항체 ONL 도포Y는 컨트롤로서 사용될 수있다.
  4. 진공 흡인 우물과 1 ml의 PBS로 리필. 이 과정을 2 회 반복합니다. 건조에서 그들을 방지하기 위해 시드 셀하기 직전까지 우물에서 PBS를 유지합니다.
  5. 시드 2.6 × 10 4 파골 세포 전구체 / 코팅 표면 위에 cm 2. 노치 신호 전달은 연속적으로 적어도 3 일간 자극한다.

Jagged1 코팅 비즈와 노치 신호 전달 6. 임시 자극

  1. 1.5 ㎖의 최종 부피로 0.5 μg의 / cm 2 Jagged1-FC, 21 μL / cm 2 G 단백질 아가 로스 비드, 및 PBS : 적절한 크기의 튜브에 다음을 결합한다. 24 웰 플레이트의 1도에 대한 Jagged1 구슬의 적절한 수를 준비 1.5 ml의 1 μg의 Jagged1-FC, 40 ㎕의 단백질 G 아가로 오스 비즈와 PBS를 결합합니다.
  2. 4에서 회전 튜브를 품어 2 시간 동안 C를 °.
  3. 펠렛 비즈에 1 분 300 XG에 원심 분리기 튜브. 1.5 ml의 PBS에 재현 탁 구슬. 이 세척을 반복2 번 이상.
  4. 130 μL / cm 2 배지에서 재현 탁 Jagged1 구슬과 배양 세포에 적용됩니다.
  5. 원하는 기간 동안 CO 2를 37 ° C에서 구슬과 세포를 품어 5 %. PBS 또는 배지 여러 세척과 구슬을 제거합니다.
  6. 노치 대상 유전자 전 사체 (10)의 측정을 통해 노치 신호 전달 활성화를 확인합니다.

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결과

이 방법의 목적은 문화이며, 파골 세포 전구체에 노치 신호를 자극한다. 때 제대로 배양, 파골 세포 전구체는 부드러운 세포질 (그림 1A)와 주로 긴 스핀들 모양의 형태를 나타낸다. 주의가 파골 세포 전구체의 면역 활성화를 피하기 위해주의해야한다. 활성화되면, 전구체 확산과 거품 세포질 (그림 1B)로 평평하게됩니다. 이러한 "기름에 튀긴 된 계란"세포는 RANK 신호에 저항하고 효율적으로 성숙한 파골 세포로 분화하지 않습니다. 올바른 문화와 분화 조건에서 농축 파골 세포 전구체는 차별화하고 삼일 (그림 1C) 내에서 큰 TRAP 양성 다핵 파골 세포에 퓨즈.

24 시간 내에 노치 표적 유전자를 상향 조절 Jagged1-FC 코팅 표면에 파골 세포 전구...

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토론

프로토콜 내에서 중요한 단계

문화와 파골 세포 전구체의 체외 분화는 파골 세포 및 골 재생과 뼈 질량의 보존을위한 치료 대상의 식별 분자 메커니즘의 조사를위한 유용한 플랫폼을 제공합니다. 마우스 파골 세포 전구체를 배양 할 때, 가장 중요한 요소는 나이브 상태의 전구체를 유지한다. 마크로파지 유사 세포로, 파골 세포 전구체는 박테리아 성분 및 염증성 사이토 카인에 반응하는 프라이밍된다. 활성화되면, 파골 세포 전구체는 더 이상 효율적으로 파골 세포로 분화되지 않습니다. 전구체의 활성화의 일차적 원인은 소 태아 혈청 TNFα와 같은 염증성 사이토 카인의 존재 또는 부적절하게 불 활성화 보체이다. 이런 이유로, 혈청 로트 실험에 사용하기 전에 파골을지지하는 그들의 능력에 대해 테스트되어야한다. 또한, 모든 혈청 osteoc에 사용마지막 전구체 문화는 열 파골 세포 전구체를 활성화 할 수 있습니다 보완을 변성하는 불 활성화해야합니다.

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공개 사항

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

감사의 글

이 연구는 펜실베이니아 대학교 근골격계 질환 센터(5 P30 AR050950-09), AO 재단(S-16-12A)의 보조금, 필라델피아 VA 의료 센터 중개 근골격계 연구 센터 및 교내 정형외과 부서 연구 개발 기금의 지원을 받았습니다. JWA는 National Institute of General Medical Sciences Institutional Research and Career Development Award(IRACDA; 5 K12 GM081259-08)에서 자금을 지원하는 University of Pennsylvania Postdoctoral Opportunities in Research and Teaching(PENN-PORT) 펠로우십의 지원을 받습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
재조합 마우스 M-CSFBiolegend576402여러 공급업체에서 사용 가능, 실험 전 테스트 활동
재조합 마우스 RANKLShenandoah Biotechnology200-04여러 공급업체에서 사용 가능, 실험 전 테스트 활동
재조합 인간 Jagged1-FcR& D Systems1277-JG-050여러 공급업체에서 사용 가능, 실험 전 테스트 활동
단백질 G 아가로스 비드InvivoGengel-agg-2
염소 항인간 IgG FcJackson ImmunoResearch109-001-008
최소 필수 매체 분말Sigma-AldrichM0894
Accutase 세포 해리 시약ThermoFisherA1110501파골세포 전구체를 들어 올리는 데 사용
Acid Phosphatase, Leukocyte (TRAP) KitSigma-Aldrich387A-1KT분화된 파골세포를 염색하는 데 사용

참고문헌

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