이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

마우스 Preimplantation 배아에서 줄기 세포 라인의

8.3K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/56171

⸱

2017년 8월 20일

 ,  , 
1Unitat de Biologia Cellular, Facultat de Biociències, Universitat Autònoma de Barcelona

이 논문에서

요약

이 문서는 효율적으로 파생 하 고 만능 마우스 배아 줄기 세포 라인 blastocyst 단계에서 문화 프로토콜을 설명 합니다.

초록

마우스 배아 줄기 세포 (mESC) 파생은 만능 세포는 preimplantation 배아에서 설립 하는 과정입니다. 이 라인 자동 갱신 또는 특정 조건 하에서 분화 하는 능력을 유지 합니다. 이러한 속성으로 인해 mESC은 재생 의학, 질병 모델링 및 조직 공학 연구에 유용한 도구입니다. 이 문서는 피더 세포 백혈병 금지 요인으로 보충 하는 정의 된 매체에에 허용 마우스 긴장에서 blastocysts 경작 여 mESC 라인 높은 파생 효율성 (60-80%)을 얻기 위해 간단한 프로토콜을 설명 합니다. 프로토콜 파생 매체 (2i 매체)에 두 개의 작은 분자 억제제의 칵테일의 간단한 추가 의해 효율적으로 mESC 라인 비 허용 마우스 긴장에서 파생에 적용할 수 있습니다. 자세한 절차 준비 및 피더 세포, 수집 및 마우스 배아, 그리고 파생의 문화와 mESC 라인의 문화 문화에 제공 됩니다. 이 프로토콜 특수 장비가 필요 하지 않습니다 하 고 기본적인 포유류 세포 문화 전문 지식 가진 어떤 실험실에서 실시 될 수 있습니다.

서론

배아 줄기 세포 (ESC)는 만능 세포 자체 갱신 또는 특정 조건1에서 차별화 수 유지 preimplantation 배아에서 파생 된. 이러한 속성을 바탕으로, ESC 재생 의학, 질병 모델링 및 조직 공학 연구2에 대 한 유용한 도구가 되고있다.

ESC는 preimplantation 마우스 배아, 발생 하는 낮은 성공3,4마우스 ESC (mESC) 라인에서에서 처음으로 파생 되었다. 년, 파생 효율 낮은 pluripotency 시험관을 유지의 어려움 때문에 남아 있었다. 게다가 피더 세포5, 파생 효율성을 높여주는 존재 식민지 첨부 하 고 karyotypic 안정성6, 프로토콜 이어질 pluripotency 유지 보수 개선의 몇 가지 수정을 강화 합니다. 가장 중요 한 추가 백혈병 금지 요인 (LIF)의 mESC 문화 매체7,8, 129S2 허용 배경9 에서 배아의 사용 그리고 보충 매체와 mESC의 문화 정의 혈 청, 잠재적인 차별화 요인10의 무료. 더 최근에, 강력한 증거는 보이지 mESC 배양 (2i 라고도 함)에 신호 통로의 2 개의 작은 분자 변조기의 칵테일의 pluripotency를 유지 하기 위해 최고의. 칵테일 2i MEK 억제제 물질 활성화 한 단백질 키 니 아 제 (MAPK) 통로 억제 함으로써 차별화 신호를 감소, PD0325901 및 GSK3β 억제 물 CHIR99021, 낮은 농도에서 세포 생존을 향상의 조합 구성 Wnt 통로11활성화 하 여

현재 문서에서 우리는 효율적으로 mESC 라인 마우스 blastocysts에서 파생 하는 간단한 프로토콜을 설명 합니다. 우리는 파생 매체 LIF와 혈 청 교체12보충에 피더 세포에 관대 한 긴장에서 배아를 배양 표준 절차를 따릅니다. 이 프로토콜, mESC 라인 효율성 2i 매체에서 그에 해당 된 파생 수 있습니다. 도 불구 하 고, 2i는 문제를 방지 하려면 가능한 pluripotency 유지 관리 또는 작업 비 관대 한 긴장을 할 때 추가할 수 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

동물 및 Universitat Autònoma de 바르셀로나의 인간의 연구 윤리 위원회 및 Departament d 아래 섹션에서 설명 하는 동물의 사용 승인 되었습니다 ' 농업, Ramaderia, 낚시 나 Generalitat 드 Catalunya (프로토콜 #8741)의 Alimentació.

1. 피더 셀 비활성화 및 스토리지

참고: 인간의 포 피 섬유 아 세포 (HFF-1) 이전 90% 태아 둔감 한 혈 청 (FBS)와 10% 디 메 틸 sulfoxide (구성 된 냉동 솔루션의 1 mL에 냉동 DMSO) 사용까지 액체 질소에 저장.

  1. 37 ° C 물 욕조에 유리병을 immersing 하 여 HFF-1 (1 mL)의 극저온 유리병을 녹여.
  2. 미리 데워 진된 Dulbecco에 극저온 유리병의 해 동된 내용을 추가 ' s 수정이 글 ' s 매체 (DMEM) 10% 보충 FBS를 1:10 희석.
  3. T75 플라스 크에 희석된 세포 (10 mL) 씨 하 고 37 ° C, 5% CO 2 문화.
  4. 다음날, DMSO 잔재를 제거 하는 매체를 변경 합니다. 매체를 제거 하 고 10% 보충 미리 따뜻하게 DMEM의 10 mL를 추가할 FBS.
  5. 는 HFFs 문화 고 문화 confluent 단계를 도달할 때까지 모든 48 h 매체를 변경 합니다. 약 7 ~ 10 일 걸릴 수 있습니다.
  6. 비활성화 솔루션을 준비, 미토마이신 C DMEM 10% 보충에 희석 FBS 10 µ g/mL의 최종 농도에. 37 ° C, 5% CO 2 3 h에 대 한 비활성화 솔루션 셀을 품 어.
  7. 비활성화 솔루션을 제거 하 고 몇 번이 고 2 mL의 행 크 스 균형 소금 솔루션 (HBSS) 미토마이신 C 잔해 제거와 셀 린스.
  8. 사 세포를 분리, 미리 데워 진된 트립 신-EDTA 솔루션의 1 mL을 추가 하 고 37 ° C, 5% CO 2 5 분 동안 품 어.
  9. 관찰 들은 분리 되도록 거꾸로 현미경 세포 (0.3 수 가늠 구멍 또는 나 10 배 목표). 없는 경우, 37 ° C, 5% CO 2에서 몇 분 더 그들을 품 어. 다시 거꾸로 현미경 세포 검사.
  10. 셀 덩어리를 분리 하기 위해 파스퇴르 피 펫과 솔루션을 플라스틱.
  11. DMEM 10 %FBS resuspend 보충의 4 mL를 추가 하 여 효소 솔루션을 무력화.
  12. 세포 현 탁 액의 약 수를 받아 고 HBSS에 1: 100 희석. 셀의 수를 확인 하려면 로드 희석의 10 µ L를 Neubauer ' s 챔버. 거꾸로 현미경 (20 x 목표와 0.45 나) 챔버의 큰 사각형 중 하나에 있는 셀.
  13. 4 큰 사각형의 총에서 계산 반복
      . N으로 세포 (N)의 총 수를 계산 셀의 평균 수 = 총 볼륨 희석 x 10 4 x x 계산.
  14. 원심 200 x g. 삭제에서 5 분에 대 한 샘플의 나머지는 상쾌한 고 mL 당 10 6 세포의 농도에 솔루션을 동결와 펠 릿 resuspend.
  15. 약 10 6 셀 (1 mL) 각 극저온 튜브에서 정지 수. 냉동 컨테이너에 극저온 튜브를 놓고-80에서 동결 ° c.
  16. 다음 날, 액체 질소에 극저온 튜브 저장.

2. 피더 세포 배양

  1. 파생 프로세스를 시작 하기 전에 1-4 일 재개 1 x 10 6을 포함 하는 극저온 유리병 비활성화 HFF-1 셀 37에서 물 욕조에 ° c.
  2. 확인에 해 동된 HFF-1의 1:6 희석 사전 예 열 10 %FBS 37에 온도 유지 보완 DMEM ° c.
  3. 돼지 피부에서 미리 데워 0.2% 젤라틴의 500 µ L 4-잘 접시의 모든 잘을 10 분 동안 37 ° C에서 접시를 유지
  4. 우물에서 젤라틴의 500 µ L을 제거 하 고 HFFs 희석의 500 µ L를 추가 합니다. 부드럽게 우물의 바닥에 HFFs의 균일 분배를 보장 하기 위해 접시 바위. 원형 움직임을 피하, 그렇지 않으면 셀 우물의 센터에 집중 합니다.
  5. 접시 적어도 24 h에 각 잘 사 HFFs의 단층을 37 ° C, 5% CO 2를 품 어.
  6. 다음날, 거꾸로 현미경 (10 X 목표와 0.3 나) 세포를 관찰 하 고 그들이 부착 되 고 균질 분산을 확인. DMSO 잔재를 제거 하는 매체를 변경 합니다. 매체를 제거 하 고 추가 10% 보충 미리 따뜻하게 DMEM의 500 µ L FBS.

3. 배아 수집 및 문화

  1. 4 일전 배아 컬렉션 관리 5 IU 임신 암 말의 ' s 6-12 주 오래 된 여성 쥐에 복 주사에 의해 혈 청 생식 샘 자극 호르몬.
    참고: 다른 마우스 긴장에서 여성 사용할 수 있습니다 129S2 또는 B6CFAF1 긴장, 여성 사용 했습니다. 그럼에도 불구 하 고 때 매체 (예: CBA), 비-허용 긴장에서 여성 협력 한다으로 보충 2i 단계 4.2에서에서 설명 했 듯이.
  2. 후 48 h, 복 주입, 인간 융 생식 샘 자극 호르몬의 5 IU를 관리 하 고 남성, 적어도 8 주 오래 된, 1:1 비율로 여성 친구. 다음 날은 남성에서 여성을 분리.
  3. 배아 컬렉션, 전날 35 m m 세포 배양 4 mg/mL 소 혈 청 알 부 민 (BSA)와 보충 KSOMaag 매체의 여러 40 µ L 방울과 페 트리 접시를 준비 하 고 완벽 하 게 커버를 미네랄 오일 접시를 채우십시오. Equilibrate 매체를 37 ° C, 5% CO 2 접시를 품 어.
  4. 배아 조작 펫을 준비 하 긴 밀고 유리 분 젠 버너를 사용 하 여 파스퇴르 피 펫의 얇은 부분을 열. 일단 부드러운, 불꽃에서 그것을 철회 하 고 떨어져 두 끝을 당겨. 원하는 길이에 그것을 휴식. 끝에 내경 100-150 µ m 이어야 한다.
  5. 경부 전위 45-48 h 게시물-coitum (컴퓨터)에 의해 여성 쥐를 안락사.
  6. 절단 곡선 부드럽게 날카로운가 위 피부 및 똑 바른 날카로운가 위 복 하 여 복 부 구멍을 노출 하는 쥐를 해 부. 집게와 함께 한 자 궁을 잡아, 바로 날카로운가 위를 사용 하 여 수 란 관을 잘라 고에 Hepes 버퍼 CZB 매체 (HCZB) 13 37 ° C. 반복 다른 수 란 관을 제거 하는 과정.
  7. 1 mL 주사기 oviducts 로드 HCZB 플러시 시계 집게 2 셀 배아를 수집 하 여 장소에서 개최.
    참고: 준비 물 내리는 바늘 걸릴 30 G 피하 주사, 결국, 잘라내어 거칠 돌에 무뚝뚝한 끝을.
  8. 입 피 펫 장치를 사용 하 여, 배아를 선택, HCZB에 그들을 씻어 및 blastocyst 단계까지 37 ° C, 5% CO 2 이전 준비 배아 문화 접시에 그들을 문화. 50 배아까지 각 40 µ L 드롭에서 경작 될 수 있습니다. 배아 개발은 stereomicroscope 아래 모든 24 시간 모니터링.
    참고: 또는, 배아 수집할 수 있습니다 체 외에서 배아 문화 단축 blastocyst 단계에서. 이 경우에, 3.5-4.5 시공 하루에 암컷을 안락사, 자 궁 해 부. HCZB와 플러시.

4. 줄기 세포 파생

    배아 시드, 당일
  1. 파생 판의 준비
    1. 100 µ M 2 β mercaptoethanol, 1과 DMEM 매체를 보완 하 여 파생 매체 준비 비-필수 아미노산 x 혈 청 교체, 및 10의 20 3 U/mL LIF.
    2. 원하는 경우 또한 MEK 억제제 PD0325901의 1 개의 µ M와 3 추가 GSK3 억제제 2i 매체를 CHIR99021의 µ M.
    3. 걸릴에서 사 HFFs (단계 2.6)의 단층와 함께 4-잘 접시는 인큐베이터입니다. 매체를 제거 하 고 각 음을 미리 데워 파생 매체의 800 µ L를 추가 합니다. 인큐베이터에 접시를 반환.
  2. Zona pellucida 제거 및 배아 시드
    1. 35 m m 세포 배양 신랄 한 Tyrode의 3 개의 30 µ L 방울과 페 트리 접시를 준비 ' 파생 매체의 s 솔루션 14 및 3 개의 30 µ L. 미네랄 오일 방울을 커버 하 고 37에서 요리를 계속 ° c.
    2. 는 인큐베이터에서 배아 문화 접시를 가져가 라. 하나, 산 성 Tyrode에 문화 상품에서 전송 된 blastocysts ' s 솔루션 드롭 배아 조작 피 펫을 사용 하 여. 만약에 가능 하다 면, 유도 과정을 시작 하려면만 확장 된 blastocysts 선택.
    3. 는 Zona pellucida 소화는 stereomicroscope에서 모니터링합니다. 최대한 빨리 zona pellucida 사라집니다, 파생 매체 드롭 산 성 Tyrode에 밖으로 세척 하기 위하여는 blastocyst 전송 ' s 솔루션.
    4. 각 우물에는 인큐베이터와 씨 한 zona 무료 blastocyst 급지대에서 4-잘 파생 판 셀 걸릴.
    5. 인큐베이터와 37 ° C, 5% CO 2 문화 4-잘 파생 판 돌아갑니다.
  3. 모니터링 줄기 세포 성장 및 매체 변경
    1. 문화는 거꾸로 한 현미경 (20 X 목표와 0.45 나) 아래 모든 24 시간 모니터링. 부 어 굴절 세포 파생물을 둘러싼 또는 심지어 추진 피더 세포 옆으로 등 줄기 세포 분화의 흔적 인지 주의 하는 것이 중요 하다.
    2. 다른 매일 문화 매체를 변경 합니다. 인큐베이터에서 4-잘 접시를가지고, 각 우물에서 매체를 제거 하 고 사용 하는 경우 미리 따뜻하게 파생 매체 LIF와 2i, 보충의 800 µ L를 추가 합니다. 문화 outgrowths (6-8 일)을 관찰 하는 때까지 유지.

5. 줄기 세포 배양 및 유지 보수

  1. 준비 Kolle 같은 핸들 및 줄기 세포 조작 펫. 따라 단계 내경 250-300 µ m. 끝으로 줄기 세포 조작 펫을 준비 하는 3.4 Kolle 같은 핸들을 준비 하 당겨진된 파스퇴르 피 펫의 다른 부분을 사용 합니다. 열 및 후크를 얻기까지 모양.
  2. 는 인큐베이터에서 4-잘 문화 접시 고 아래는 stereomicroscope 파생물을 찾습니다. 핸들을 사용 하 여 차별화 된 세포와 지류 파생물을 둘러싸고 멀리 밀어.
    참고: 파생물의 최종 분화를 피하기 위해, 그것은 파생물의 가장자리에서 모든 분화 된 세포를 제거 하는 것이 중요.
  3. 줄기 세포 조작 피 펫으로 파생물을 발음 하 고 50 µ L 트립 신-EDTA 드롭에서 새로운 접시에 놓습니다.
  4. 메스를 사용 하 여 기계적으로 그리고 효소 그것을 세분화 하기 위해 여러 부분에서 가지를 잘라.
  5. 바로, 트립 신 행동을 무력화 파생 매체의 신선한 드롭으로 파생물 조각을 전송.
  6. 지류의 단층으로 새로운 4-잘 접시에 파생물 조각 전송합니다. 잘 당 최대 10 조각을 전송 하 고 37 ° C, 5% CO 2 파생 매체와 문화.
  7. 는 MESC 라인 설립을 고려 하기 전에 적어도 6 주 동안 줄기 세포와 같은 문화를 유지 합니다. 모든 다른 하루와 서브 컬쳐 매체를 변경 그들 일주일에 한 번.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

이 프로토콜에 따라 이상 파생물 형성의 95% 달성 되어야 문화 (그림 1A)의 첫 번째 주 후. 6 구절 후 mESC 라인의 설립의 60-80% 평균 성공 실험적인 복제 사이 변수 이다. 2i 추가 크게 개선 되지 않습니다 결과 허용 마우스 변종, 129S2 배경 등을 작업할 때 하지만 작업 비 관대 한 긴장을 할 때 필요 합니다.

마우스 ESC 식민지 평면 모양으로 일반 형태를 제시 해야 하 고 치료 (그림 1B-C) 없이 교양 때 가장자리를 정의 또는 2i와 교양 (그림 1D). 식민지 제시 주변 차별화 표시 되어야 합니다 (그림 1...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

MESC 선 파생 많은 실험실에서 일상적으로 사용 하는 잘 알려진 절차는, 비록 그 효율 항상 pluripotency 유지 보수를 방해할 수 있는 여러 요인으로 인해 예상 대로 높은 것은 아닙니다. 현재 문서에서 우리가 쇼, 단계적으로, 간단 하 고 신뢰할 수 있는 프로토콜을 사용 하 여 높은 효율성과 mESC 라인을 설정 하는 방법. 이러한 효율성은 문학에서 보고 된 것과 유사한.

최대 효율을 보장 하기 위해, 그것은 매일 셀을 제어 하는 것이 중요 또는 매일, 시간 이후 포인트 표시는 그냥 설명. 세포 죽음과 감 별 법이 추진 하 고 이후 식민지의 전면에 자라 난을 피하기 위해 필수적 이다. 그것은 또한 그들의 subculture 동안 식민지의 트립 신-EDTA에 노출 가능한 한 많이 감소 하는 것이 중요 때문에이 또한 세포 생존 능력을 줄일 수 있습니다.

또 다른 중요 요인은 피더 세포의 소스와 그들의 문화 이다. 여러 연구...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개 없다.

감사의 글

피더 세포 배양, 동물 보호에 대 한 룸 Estabulari 드 라 UAB와 비디오를 기록 하기 위한 Domènec 마틴 그의 기술 지원에 감사 Jonatan 루카스 하 고. 이 작품 정부의 드 Economia y Competitividad AGL2014-52408-R 및 Generalitat 드에 의해 지원 되었습니다 카탈루냐 2014 SGR-524. MVC는 PIF UAB 장학금의 수혜자.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
1 mL 스라이통BD 
2-β-mercaptoethanolLife Technologies31350-010
4-well plateThermo Scientific Nunc176740
Acidic Tyrode's solution 집에서 만든Nagy et al, 2003의 레시피를 참조하십시오. 단기 보관(최대 1개월)의 경우 4ºC로 유지하고 장기 보관의 경우 -20ºC로 유지합니다. 용액의 효율이 감소하면 HCl 1M의 작은 방울의 첨가물로 산성화해야 합니다.
BSASigmaA3311
Chicken anti-Mouse IgG, Alexa Fluor 488분자 프로브 - InvitrogenA-212001:500 희석. Oct4, Tuj1, αSMA 및 AFP 마우스 항체에 대한 2차 항체. 
CHIR990212축삭 메드켐 13861mM 원액을 얻기 위해 분말 1mg당 2.15ml DMSO로 재구성합니다. 원하는 부피로 분취하고 -20ºC에서 보관하십시오.동결 및 해동 주기를 피하십시오. 
CryoTubeThermo Scientific Nunc3754518
DMSOSigma41640
DMEMBioWestL0107
FBSBioWestS1810사용 전에 56°C에서 30분 동안 가열하여 비활성화합니다. 분취 및 -20°C에서 보관; C
플러싱 바늘BD 304000바늘 끝을 자르고
돼지 껍질에서 연마석 젤라틴Fluka48724증류된 물에 0,2%로 희석하고 오토클레이브합니다. 각 희석액은 한 달 동안 사용할 수 있습니다.
염소 항 토끼 IgG, Alexa Fluor 594분자 프로브 - InvitrogenA-110371:500 희석. Sox2 토끼 항체에 대한 2차 항체. 
HBSSBioWestL0611
Hepes-buffered CZB 집에서 만든See composition in Chatot et al, 1989
Human chorionic gonadotropinDivasa-FarmavicVeterin-Corion 3000 UI50 IU / ml에서 NaCl 0.9 %로 희석. 1 ml에 Aliquot 및 -20º에서 보관; C는 최대 2개월 동안 사용할 수 있습니다. 한 번 해동하면 다시 얼지 마십시오. 
인간 포피 섬유아세포ATCCATCCSCRC-1041장기 보관을 위해서는 액체 질소에 보관하는 것이 좋습니다.
KnockOut 세럼 교체용생명 기술  10828-028감광성. 10ml와 같은 소량으로 분주하고 -20°C에 보관하는 것이 좋습니다. C(만료 날짜 확인). 동결 및 해동 주기를 피하십시오.     
KSOMaag EvolveZenith BiotechZEKS-050보충제에는 4mg/ml BSA가 함유되어 있습니다. 37º에서 평형; C 및 5% CO2는 사용 하루 전.
백혈병 억제 인자Merk MilliporeESG1106
생쥐 Charles River/HarlanmESC 유도 측면에서 허용 균주(예: 129S2 또는 C57BL)의 마우스를 사용하는 것이 좋습니다. 그러나 근친 교배 균주는 배아를 생산하는 데 덜 효율적입니다. 따라서 하이브리드 활력을 활용하기 위해 129S2 x C57BL 또는 B6CBAF1와 같은 하이브리드 변형을 사용하는 것이 좋습니다.
미네랄 오일SigmaM8410Embryo 테스트 완료. 감광성. 
Mitomycin CServa29805010.5 mg/ml에 MilliQ 물로 분말을 재구성하십시오. 4º에 저장하십시오; C는 빛으로부터 보호됩니다. 주의, 그것은 유해하고 암을 일으키는 것으로 의심됩니다. 
마우스 항 튜불린 &베타; III (Tuj1)BiolegendMMS-435P1:500 희석
마우스 단클론 항 알파, SMASigmaA52281:200 희석
마우스 단클론 항 AFPR & D 시스템MAB13681:50 희석
마우스 단클론 안티 Oct3/4 산타 크루즈Sc-52791:50 희석
비필수 아미노산생명 기술11140-035
PD0325901Axon Medchem 14081mM 원액을 얻기 위해 분말 1mg당 2.08ml DMSO로 재구성합니다. 원하는 부피로 부분 표본을 만들고 -20°C에서 보관하십시오. 동결 및 해동 주기를 피하십시오.
페트리 접시 (35mm)Thermo Scientific Nunc153066
페트리 접시 (60mm)Thermo Scientific Nunc150288
임산부의 혈청 성선 자극 호르몬FoligonFoligon-1000 UI는 50 IU / ml에서 NaCl 0.9 %로 희석합니다. 1 ml에 그것을 분취하고 -20 º에서 보관하십시오. C는 최대 2개월 동안 사용할 수 있습니다. 한 번 해동하면 다시 얼지 마십시오. 
Rabbit policlonal anti-Sox2Merck MilliporeAB56031:200 희석
T75 falconThermo Scientific130190
Trypsin-EDTA 10xBioWestX0930HBSS에서 1:10을 희석하여 1x 용액 얻기
309628의 뭉툭한 끝으로 갈아서

참고문헌

  1. Biswas, A., Hutchins, R. Embryonic stem cells. Stem Cell Dev. 16 (2), 213-221 (2007).
  2. Weinberger, L., Ayyash, M., Novershtern, N., Hanna, J. H. Dynamic stem cell states: naive to primed pluripotency in rodents and humans. Nat Rev Mol Cell Biol. 17 (3), 155-169 (2016).
  3. Evans, M. J., Kaufman, M. H. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 292, 154-156 (1981).
  4. Martin, G. R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Nat Acad Sci U S A. 78 (12), 7634-7638 (1981).
  5. Martin, G. R., Evans, M. J. Differentiation of clonal lines of teratocarcinoma cells: formation of embryoid bodies in vitro. PNAS. 72 (4), 1441-1445 (1976).
  6. Czechanski, A., et al. Derivation and characterization of mouse embryonic stem cells from permissive and nonpermissive strains. Nat Prot. 9 (3), 559-574 (2014).
  7. Smith, A. G., et al. Inhibition of pluripotential embryonic stem cell differentiation by purified polypeptides. Nature. 336 (6200), 688-690 (1988).
  8. Williams, R. L., et al. Myeloid leukaemia inhibitory factor maintains the developmental potential of embryonic stem cells. Nature. 336 (6200), 684-687 (1988).
  9. Brook, F. A., Gardner, R. L. The origin and efficient derivation of embryonic stem cells in the mouse. Proc Nat Acad Sci U S A. 94 (11), 5709-5712 (1997).
  10. Ward, C. M., Stern, P., Willington, M. A., Flenniken, A. M. Efficient germline transmission of mouse embryonic stem cells grown in synthetic serum in the absence of a fibroblast feeder layer. Lab Invest. 82 (12), 1765-1767 (2002).
  11. Ying, Q. L., et al. The ground state of embryonic stem cell self-renewal. Nature. 453 (7194), 519-523 (2008).
  12. Wakayama, S., et al. Efficient establishment of mouse embryonic stem cell lines from single blastomeres and polar bodies. Stem cells (Dayton, Ohio). 25 (4), 986-993 (2007).
  13. Chatot, C. L., Ziomek, C. A., Bavister, B. D., Lewis, J. L., Torres, I. An improved culture medium support development of random-bred 1-cell mouse embryos in vitro. J Reprod Fertil. 86, 679-688 (1989).
  14. Nagy, A., Vintersten, K., Behringer, R. Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. , 3rd, Cold Spring Harbor Lab Press. New York. (2003).
  15. Lee, K. H. Conditions and techniques for mouse embryonic stem cell derivation and culture. Pluripotent Stem Cells. , 85-115 (2013).
  16. Ma, Y., et al. Human foreskin fibroblast produces interleukin-6 to support derivation and self-renewal of mouse embryonic stem cells. Stem Cell Res Ther. 3 (29), (2012).
  17. Cheng, J., Dutra, A., Takesono, A., Garrett-Beal, L., Schwartzberg, P. L. Improved generation of C57BL/6J mouse embryonic stem cells in a defined serum-free media. Genesis. 39 (2), 100-104 (2004).
  18. Chaudhry, M. A., Vitalis, T. Z., Bowen, B. D., Piret, J. M. Basal medium composition and serum or serum replacement concentration influences on the maintenance of murine embryonic stem cells. Cytotechnology. 58 (3), 173-179 (2008).
  19. Kawase, E., Suemori, H., Takahashi, N., Okazaki, K., Hashimoto, K., Nakatsuji, N. Strain difference in establishment of mouse embryonic stem (ES) cell lines. Int. J. Dev. Biol. 38 (2), 385-390 (1994).
  20. Gonzalez, J. M., et al. Embryonic stem cell culture conditions support distinct states associated with different developmental stages and potency. Stem Cell Rep. 7 (2), 177-191 (2016).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

마우스 배아줄기세포배아 배양공급세포 준비배반포 유도백혈병 억제 인자2i 배지투명대 제거줄기세포 계대배양다능성 마커배엽 분화
마우스 Preimplantation 배아에서 줄기 세포 라인의
문의하기
도서관에 추천하기

개인정보 처리방침

이용 약관

정책

저작권 © 2026 MyJoVE Corporation. 모든 권리 보유.