방법 논문

혈 청 및 혈장 복사 번호 검출 실시간 PCR를 사용 하 여

DOI:

10.3791/56502

2017년 12월 15일

이 논문에서

요약

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이 원고는 실시간 PCR 방법을 사용 하 여 혈 청 또는 플라스마 DNA에서 복사 번호 유사 분석을 설명 합니다. 이 방법은 거세 저항 전립선 암 환자에서 약물 저항의 예측에 적합 하지만 그것은 또한 다른 질병에 대 한 정보 수 있습니다.

초록

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혈 청 및 혈장 세포 무료 DNA (cfDNA)은 암 진단, 예 후, 모니터링 및 치료 저항의 예측에 대 한 생체의 유익한 정보, 비-침략 적 원본으로 표시 되었습니다. 전이성 거세 저항 전립선 암 (mCRPC)에서 자주 이벤트는 안 드로 겐 수용 체 (AR) 유전자 사본 번호 (CN) 얻을 가설에서 출발, 잠재적인 예측 biomarker로 cfDNA에서이 이벤트를 분석을 제안 한다.

우리가 2 다른 실시간 PCR 분석 실험 및 2 참조 유전자 (RNaseP 1)를 사용 하 여 cfDNA에 아칸소 CN 평가. DNA 양의 60 ng 각 분석 결과 조합에 대해 사용 되었다. AR CN 이득 디지털 PCR를 사용 하 여 보다 정확한 방법으로 확인 됐다. CN 변형 분석 이미 치료 저항 mCRPC의 설정에서의 예측을 위한 유익 입증 되었습니다 하지만 그것은 도움이 될 수 있습니다 또한 다른 환자의 설정에서 다른 목적을 위해. CfDNA에 CN 분석에는 여러 이점이 있다: 그것은 비 침략 적, 신속 하 고 쉽게 수행 하 고 혈 청 또는 플라스마 소재의 작은 볼륨에서 시작.

서론

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순환 하는 혈액에서 세포 무료 DNA (cfDNA) 암 진단, 예 후, 모니터링 및 치료 저항1,2의 예측에 대 한 생체의 최적의 원본 증명 되었습니다. 많은 연구 DNA 변경 (돌연변이, 복사 번호 유사 조직에 epigenetic 수정)와 해당 플라즈마 샘플1, 순환 종양 DNA (ctDNA)는 확인 그 사이 좋은 색인 기본 및 전이성 종양 조직 변경3에 대 한 유익한. CtDNA의 가능성은 따라서 게놈 재배열 및 특정 oncogenes4, 잠재적으로 전이성 클론와 subclonal 셀 식별에 복사 번호 유사 (CNVs)의 재건에 대 한 수 있습니다. CtDNA 임상 암 치료 모니터링으로 특정 돌연변이 관련 특정 표적으로 한 치료5,6, CNVs 항구에 특히 유용한 것으로 표시 되었습니다. 그것은 또한 조직 생 검에 대 한 필요를 극복 하 고 결과 비-침략 적 방식으로 특정 암 치료 기간 동안 서로 다른 시간에 얻을 수 있습니다.

전립선 암, 순환 셀 무료 안 드로 겐 사이의 중요 한 상관 관계에 관해서는 수용 체 (아칸소) CNVs 및 치료 응답 abiraterone와 enzalutamide로 표시 되었습니다, 나타내는 AR 유전자 복사 번호 (CN) cfDNA에 있을 수 있습니다는 치료 저항7,,89,10,11예측 가능한 유망 바이오 마커. CtDNA에 특정 유전자의 CNVs 다른 감도, 비용 및 속도으로 다른 접근을 사용 하 여 평가할 수 있다 (. 실시간, 디지털 PCR, 및 다음 세대 시퀀싱).

여기는 실시간 PCR 기술, 혈 청 및 혈장 샘플7,8cfDNA에 아칸소 CN을 평가 하기 위한 이중 분석에 따라 간단 하 고 빠른 방법에 설명 합니다. 전립선 암 (RNaseP, 일반 복사 번호 상태에 있는 것으로 알려져 내부 표준 기준 유전자로 intron 5 아칸소 (Xq12)의 다른 두 유전자 내에서 두 개의 다른 게놈 지역에 설계 된 두 개의 다른 PCR 분석 실험을 고려 14q11;에 1, 1에 위치한 p 34). 우리는 정밀도 결과의 감도 증가 한 실행 하는 것이 아니라 두 기준 유전자 선택. 60의 DNA 양을 ng 각 분석 결과 조합 (결합 된 분석 결과 대 한 아칸소-assay_1 + RNaseP와 아칸소-assay_2+ AGO1)에 대 한 증폭 되었다. 건강 한 남성에서 3 개의 혈 청 또는 플라스마 DNA 샘플 풀링 되었고는 교정기로 사용. 우리 고려의 차단 > 아칸소 이득에 대 한 1.5와 < 삭제 0.5. 이 방법의 주요 장점 중 하나입니다 그것은 유연 하 고는 다른 유전자 또한 평가 될 수 있다, 변화 하는 표준 내부 기준 유전자 종양 유형 및 특성에 근거 하 여.

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프로토콜

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복사 번호 분석을 위한 실시간 PCR을 수행 하기 위해 혈 청 또는 혈장 샘플에서 DNA의 격리 프로토콜에 의하여 이루어져 있다. DNA 추출, DNA 수량 제어 (분 광 광도 계)와 특정 대상에 대 한 실시간 PCR 수행 했다. 그림 1, 절차 및 타임 라인의 요약 보고 합니다.

프로토콜은 IRST 인간의 연구 윤리 위원회의 지침을 따릅니다.

1. 혈 청 수집 및 처리

  1. 약 5 mL의 전 혈 혈 청을 얻기 위해 응고 제 없이 혈 청 튜브에 수집 합니다. 처리까지 4 ° C에서 혈액 튜브를 유지 합니다.
  2. 4 ° c.에 15 분 동안 1000 x g에서 원심 분리기 튜브
  3. 조심 스럽게 2 mL 튜브에 혈 청을 전송 합니다.
  4. 수집 관을 무시 하 고 즉시-80 ° C에서 상쾌한 사용까지 동결.

2. 플라즈마 수집 및 처리

  1. 플라즈마를 EDTA와 플라즈마 튜브에서 약 10 mL 전 혈을 수집 합니다. 튜브를 완전히 작성 하 고 8 시간 그것을 반전. 처리까지 4 ° C에서 혈액 튜브를 유지 합니다.
  2. 튜브는 원심 분리기에 없는 브레이크 설정 실 온에서 15 분 동안 1800 x g에서 원심
  3. 조심 스럽게 2 mL 튜브에는 플라즈마의 위쪽 부분을 전송 합니다. 화이트 셀 레이어 위에 상쾌한의 적어도 1 mL을 떠나는 전송을 반복 합니다.
    참고: 셀 또는 셀 파편 오염 위험 감소는 상쾌한의 위쪽 부분을 전송.
  4. 수집 관을 무시 하 고 즉시-80 ° C에서 상쾌한 사용까지 동결.

3. DNA 분리 혈 청 또는 혈장에서

주: 혈 청 또는 플라스마에서 DNA의 분리 수행 되어야 한다 상업 프로토콜 다음 단계에서 수정을 사용 하 여.

  1. (0.5에서 2 mL에 포함 되는) 하는 한 약 수 혈 청 또는 플라스마 실 온에서 녹여
  2. 소용돌이 샘플을 혼합 하 고 명확한 1.5 mL 튜브에 혈 청 또는 혈장 0.5 mL를 전송. -80 ° c.에 재료의 나머지를 고정
  3. 샘플에 직접 가수분해 k (20 mg/mL)의 50 µ L를 추가 합니다.
  4. 샘플에 0.5 mL의 세포의 용 해 버퍼를 추가 하 고 pipetting으로 잘 혼합.
  5. 튜브를 닫고 열 블록에 15 분 동안 56 ° C에서 샘플을 품 어.
  6. 제조업체의 지침에 표시 된 대로 표시 된 양의 100% 에탄올 워시 버퍼 1과 2에 추가 합니다.
  7. 실내 온도에 다시 샘플을 가져올 하 고 절대 에탄올의 0.5 mL을 추가 pipetting으로 잘 혼합.
  8. 3.7 분리 및 6000 x g에서 원심 분리기는 1 분 동안에 단계에서 얻은 혼합물의 650 µ L를 추가 합니다.
  9. 통해 흐름을 포함 하는 튜브를 삭제 하 고 새로운 깨끗 한 컬렉션 튜브에 열을 놓습니다. 3.8 및 3.9 단계 한 번 더 반복 합니다.
  10. 습윤 열과 1 분 동안 6000 x g에서 원심 분리기의 테두리 없이 워시 버퍼 1, 500 µ L를 추가 합니다.
  11. 통해 흐름을 포함 하는 튜브를 삭제 하 고 새로운 깨끗 한 컬렉션 튜브로 교체.
  12. 습윤 십 분 (20000 x g) 최고 속도로 원심 분리기의 테두리 없이 워시 버퍼 2, 500 µ L를 추가 합니다.
  13. 통해 흐름을 포함 하는 튜브를 삭제 하 고 새로운 깨끗 한 컬렉션 튜브로 교체.
  14. 최고 속도로 (20000 x g) 어떤 잔여 세척 버퍼를 제거 하려면 3 분 원심.
  15. 장소는 깨끗 한 1.5 mL 튜브에 열. 차입 버퍼의 150 µ L을 추가 하 고 해당 버퍼 늦으면 열 수 있도록 7 분을 기다립니다.
  16. 1 분 동안 8000 x g에서 원심.
  17. DNA의 최대 복구를 보장 하기 위해 1 분 동안 다시 같은 열과 (20000 x g) 최고 속도로 원심 분리기에 단계의 3.16 elute 플라스틱

4. DNA 정량화 및 희석

  1. 분 광 광도 계를 사용 하 여 DNA의 정량화를 수행 합니다. 샘플의 2 µ L를 사용 하 여 제조 업체의 지시 당 벤치 정상 분 광 광도 계에.
    참고: 경우 DNA 수량 실시간 PCR를 계속 충분 하지 않습니다 (적어도 120 ng), 새로운 DNA 분리 과정을 수행.
  2. 마지막 볼륨 (약 50 µ L) 모든 실시간 PCR를 위한 충분 한 2.5 ng / µ L를 혈 청 또는 플라스마에서 DNA를 희석.

5. 실시간 PCR

  1. Thaw 복사 번호 분석 실험, 참조 유전자 분석 결과, 희석 DNA 샘플 및 교정기 얼음에 풀링된. 실 온에서 4 ° c.에 저장 된 마스터 믹스 equilibrate
  2. 각 샘플의 풀링된 교정기 3 복제에 대 한 대상 분석 결과의 참조 유전자 분석 결과, 1 µ L, 믹스 마스터의 10 µ L의 1 µ L의 혼합을 준비 합니다. 혼합 부정적인 제어 (물) 및 2 추가 샘플을 준비 합니다.
  3. 96 잘 접시, 각 우물에 혼합의 aliquot 12 µ L에서. 피 펫 또는 스핀 튜브 하지 않습니다.
  4. 각 DNA 샘플의 각 음에 풀링된 교정기 8 µ L (2.5 ng / µ L의 농도)를 추가 합니다. 피 펫 또는 스핀 튜브 하지 않습니다. 각 잘에 대 한 팁을 변경 합니다.
    참고: 30 DNA 샘플 96 잘 접시를 사용 하 여 각 실시간 실험에 대 한 처리 수: 30 x 3 샘플 + 1 x 3 교정기 풀링된 + 부정 제어 = 94.
  5. 짧게 1000 x g에서 접시를 회전 합니다.
  6. 다음 프로토콜을 사용 하 여 접시를 실행: 15 95 ° C에서 40 주기를 10 분 동안 95 ° C에 단계 개최 s, 그리고 1 분 동안 60 ° C.

6. 데이터 분석 및 해석

  1. 증폭 플롯 결과 아래에 "옵션" 섹션에서 첫 번째 대상 유전자 분석에 대 한 0.2에서 Ct 임계값을 설정 합니다. 각 대상 또는 참조 유전자에 대 한 집합을 반복 합니다. .Txt 확장명에 실시간 PCR 파일을 내보내려면, 도구 모음에 "내보내기"를 누릅니다. 플래그 "결과"만 선택 → 내보낼 데이터 선택 파일 형식으로는 확장명.txt → 언론 "수출 시작" → 가까이 내보내기 도구.
  2. 분석 소프트웨어를 열고 가져올 파일.txt (도구 모음 → 가져오기).
  3. 분석 하 고 도구 모음 (재생 기호)에 의해 분석 설정을 선택 파일 이름을 선택 합니다.
  4. 보정 샘플 및 대상 ( AR 유전자에 대 한 복사예를 들어, 1)의 사본의 알려진된 수를 지정 합니다. 보도 자료 "적용 됩니다."
  5. 각 샘플에 대 한 다른 우물에 비해 다른 델타 Ct (ΔCt) 한 음을 생략 합니다.
  6. 실험 (언론 플레이 기호) 분석
  7. 바 작 또는 테이블 복사본 수로 결과 평가 합니다.
    참고: 결과 테이블 자신감, Z-점수, 및 결과 해석에 대 한 도움이 될 수 있는 분석 복제 같은 여러 매개 변수를 포함 합니다.

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결과

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총 cfDNA 농도 모든 샘플 분석, 6.12 ng / µ L의 중간값을 보여주는 분 광 광도 법으로 정량 (범위: 2.00-23.71 ng / µ L) 혈 청 샘플 및 3.21 ng / µ L의 중간값 (범위: 2.31-8.49 ng / µ L) 플라즈마 샘플. 우리는 실시간 PCR 실험에 의해 총 115 샘플의 분석.

테스트 감도 복사 번호 분석에 대 한 보정 샘플으로도 사용 되는 건강 한 기증자 로부터 아칸소, 그리고 DNA에 대 한 높은 또는 낮은 이득이 환자에서 혈 청 혼합된 DNA를 사용 하 여 평가 했다. 그림 2에 표시, 아칸소 CN은 충분히 아칸소 이득 건강 한 기증자 DNA 유전자 이득 감지 (그림 2

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토론

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AR 혈 청 및 혈장 샘플에서 CN 분석 거세 저항 전립선 암 (CRPC) 환자의 계층에 대 한 새로운, 비-침략 적 접근 방식을 나타냅니다. 그것은 최근 증명 되었습니다 아칸소 CN CRPC 환자 화학 요법7,8,,910전후 abiraterone와 enzalutamide, 치료 결과 예측 수 있다.

우리의 접근 방법의 주요 장점은 DNA 분리 과정, 한 실시간 PCR 분석 및 쉬운 데이터 해석의 구성 된 프로토콜을 수행 하기 위해 매우 간단한는입니다. 또한, 테스트 수 있습니다 신속 하 게 수행된에 1 작업 일, 그리고 절차는 비싼 (각 샘플에 대 한 $20 USD 약). 우리는이 방법은 높은 재현성을 맞춰 디지털 PC...

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공개 사항

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저자 아무 경쟁 금융 관심사를 선언합니다.

감사의 글

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우리 데이터 분석에서 지원에 대 한 키 아 라 Molinari와 필리포 Martignano 감사합니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
BD Vacutainer 혈청 튜브Becton Dickinson367814혈청 용 전혈관
BD Vacutainer EDTA 튜브Becton Dickinson366643혈장 용 전혈관
에탄올 절대VWR사용자는 다른 회사도 사용할 수 있습니다
TaqMan 사본 번호 분석Thermo Fisher Scientific4400291FAM-dye를 사용한 사전 설계 및 검증된 분석. 다음과 같은 분석을 사용했습니다: AR_assay1: hs04107225 및 AR_assay2: hs04511283
TaqMan 복제 수 분석(수정됨)Thermo Fisher Scientific4467084VIC 염료로 변형된 사전 설계 분석: AGO1: Hs02320401_cn
TaqMan 복제 수 참조 분석, 인간, RNase PThermo Fisher Scientific4403326
TaqMan Universal PCR 마스터 믹스Thermo Fisher Scientific4326708Real Time PCR을 위한 마스터 믹스
QIAamp DNA Mini Kit (50)Qiagen51304DNA 추출 키트
MicroAmp 96-Well PlatesThermo Fisher ScientificN8010560 realt time PCR
NanoDrop 1000 분광광도계Thermo Fisher Scientific-정량화하기 위해 다른 분광광도계 방법도 사용할 수 있습니다
Applied Biosystem-를 사용할 수도 있습니다
Applied Biosystem-Software
사용자는 DNA 7500 Fast Real-Time PCR 시스템을 .사용자는 복제 수 분석을 위해 다른 실시간 기기인 CopyCaller Software.

참고문헌

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  2. Heitzer, E., Ulz, P., Geigl, J. B. Circulating tumor DNA as a liquid biopsy for cancer. Clin. Chem. 61 (1), 112-123 (2015).
  3. Murtaza, M., et al. Non-invasive analysis of acquired resistance to cancer therapy by sequencing of plasma DNA. Nature. 497 (7447), 108-112 (2013).
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  8. Salvi, S., et al. Circulating AR copy number and outcome to enzalutamide in docetaxel-treated metastatic castration-resistant prostate cancer. Oncotarget. 7 (25), 37839-37845 (2016).
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  10. Conteduca, V., et al. Androgen receptor gene status in plasma DNA associates with worse outcome on enzalutamide or abiraterone for castration-resistant prostate cancer: a multi-institution correlative biomarker study. Ann Oncol. , (2017).
  11. Attard, G., Antonarakis, E. S. Prostate cancer: AR aberrations and resistance to abiraterone or enzalutamide. Nat. Rev. Urol. 13 (12), 697-698 (2016).
  12. Lee, T. H., Montalvo, L., Chrebtow, V., Busch, M. P. Quantitation of genomic DNA in plasma and serum samples: higher concentrations of genomic DNA found in serum than in plasma. Transfusion. 41 (2), 276-282 (2001).
  13. Chan, K. C., Yeung, S. W., Lui, W. B., Rainer, T. H., Lo, Y. M. Effects of preanalytical factors on the molecular size of cell-free DNA in blood. Clin. Chem. 51 (4), 781-784 (2005).

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