방법 논문

비 계-무료 3 차원 심장 조직 창조의 그물 형 기반 방법

DOI:

10.3791/58252

2018년 8월 5일

이 논문에서

요약

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 프로토콜 만족 구조적 무결성 및 동기 박동 동작 3 차원 비 계 없는 심장 조직을 만들 순 형 기반 방법을 설명 합니다.

초록

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 프로토콜 고 추가 비 계 자료 없이 3 차원 (3 차원) 심장 조직을 만들 쉬운 그물 형 기반 방법에 설명 합니다. 인간 유도 만능 줄기 세포 유래 cardiomyocytes (iPSC-CMs), 인간의 심장 섬유 아 세포 (HCFs), 그리고 인간의 탯 줄 정 맥 내 피 세포 (HUVECs)는 격리 하 고 70 %iPSC-CMs, 15 %HCFs, 및 15 %HUVECs 세포 현 탁 액을 생성 하는 데 사용. 그들은 spheroids의 수백을 한 번에 집 광을 위한 micropores를 포함 하는 매우 낮은 첨부 파일 "걸기 하락" 시스템에서 공동 경작. 셀 집계 하 고 자발적으로 공동 문화의 3 일 후 구타 spheroids를 형성 한다. spheroids 수확, 새로운 금형 캐비티에 시드 고 인큐베이터에 통에 경작. spheroids가 성숙한 기능 조직 시드 후 약 7 일. 만족 스러운 구조적 무결성 및 동기 박동 동작 융합된 spheroids 결과 다층된 조직에 의하여 이루어져 있다. 이 새로운 메서드는 나중에 심장 마비의 치료에 대 한 설계 조직 만들기를 재현 하 고 비용 효율적인 방법으로 유망 가능성이 있다.

서론

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

현재 심장 조직 공학의 목표는 대체 또는 손상 된 심근 조직1의 기능과 구조를 복구 하는 치료를 개발 하는 것입니다. 기본 심장 조직의 중요 한 수축 및 electrophysiological 속성을 전시 하는 3 차원 심장 조직 모델을 만드는 방법 급속 하 게 확대 되어 있다2,3. 다양 한 전략을 탐험 하 고 연구4,5에서 사용 되었습니다. 이 방법에서에서 범위 특정 합성 및 천연 생리 활성 hydrogels, 젤라틴, 콜라겐, 섬유 소, 그리고 펩 티 드6, 같은 사용 하 여 바이오 잉크 증 착 기술2 및 bioprinting 기술7.

그것은 비 자유로운 방법 외국 비 계 소재8통합의 단점 없이 소재 기반 방법으로 유사한 조직 생산할 수 표시 되었습니다. 오 렌 Caspi 외. 셀의 다양 한 종류의 매우 vascularized 인간의 조작된 심장 조직9의 세대 수는 설명 했다. 턱 외. spheroids에서 심장 패치 생성을 위한 3 차원 인쇄 방법을 개발. 결과 패치 cardiomyocytes, 섬유 아 세포, 내 피 세포는 70:15:15 비율10에 구성 됩니다. Spheroids 하 여 효과적인 "빌딩 블록" 비 계 없는 심장 조직 창조의 그들은 저 산소 증에 대 한 저항으로 이식11,12에 대 한 충분 한 기계적 무결성을가지고 표시 되었습니다. 이전 학문은 회전 타원 체 생성에 대 한 여러 가지 제작 방법을 설명 했다, 교수형의 사용을 포함 하 여 방법, 스피너 플라스 크13, 미세 시스템14및 비 점착 문화 표면 코팅 또는 코팅 agarose 마이크로 금형15. 이 프로토콜을 사용 하 여 교수형 드롭 장치, spheroids의 수백을 한 번에 집 광을 위한 micropores를 포함.

이 연구는 소설 평방 금형 캐비티에는 spheroids를 수동으로 시드 및 성숙에 대 한 통에 조직 배양 포함 심장 조직 창조에 대 한 효율적인 비 계 없는 방법을 선물 한다. 일반적인 정적 문화 조건 하에서 산소 보급 조직 구조, 중앙 괴 사 발생의 외부 측면에 제한 됩니다. 그러나, 그물 형 금형에 시드 모든 spheroids 영양분과 산소의 증가 보급에 대 한 수 있도록 지속적인 유체 운동, 미디어에 몰두. 또한,이 형 기반 방법 수동 최소의 노력으로 다른 크기의 조직 패치의 동시 생성 가능 하며 결과 조직 형에서 쉽게 제거 될 수 있습니다. 이 새로운 메서드는 비 계, 다층 심장 패치의 효율적이 고 재현 가능한 창조에 대 한 수 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1입니다. Cardiomyocytes의 준비

  1. 앞에서 설명한17지하실 멤브레인 매트릭스와 문화 인간 유도 만능 줄기 세포 (hiPSCs)와 6 잘 플레이트 코트.
  2. 앞에서 설명한 방법18을 사용 하 여 hiPSC CMs로 hiPSCs를 구분 합니다.
  3. 16-18 d 후 차별화에서 일시 중지는 cardiomyocytes 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS) x 1의 2 mL와 함께 각 잘 헹 궈 서 칼슘 또는 마그네슘, 인큐베이션 1 mL/트립 신 또는 셀 분리 시 약 (참조 테이블의의 뒤에 없이 재료) 실 온에서 5 분.
  4. 트립 신 또는 셀 분리 시 중화 ( 재료의 표참조) 로스웰 파크 기념 연구소 (RPMI) 셀 미디어 B-27 (RPMI/B-27 셀 미디어)와 보완의 동일한 볼륨을 사용 하 여. 위쪽 및 아래쪽 준수 셀을 풀고 플라스틱.
  5. 10 mL 혈 청 학적인 피 펫과 정지 cardiomyocytes 수집 하 고 50 mL 원뿔 튜브에 그들을 전송.
  6. 세포 현 탁 액 셀 펠 렛을 얻기 위해 상 온에서 5 분 동안 250 x g 에서 원심
  7. RPMI/B-27 셀 미디어 10 mL에 펠 릿을 resuspend.
  8. 20 µ L 세포 현 탁 액의 0.4 %Trypan 블루 솔루션의 동일한 금액으로 결합 하 고 부드럽게 혼합.
  9. 수동 hemocytometer를 사용 하 여 계산 하 고 세포 현 탁 액의 농도 세포 생존 능력을 구하십시오.

2입니다. 섬유 아 세포의 준비

  1. 앞에서 설명한16인간의 심장 섬유 아 세포 (HCF) (성인 심 실 타입) 셀 라인의 문화를 시작 합니다.
  2. 트립 신 또는 셀 분리 시의 적절 한 금액으로 그들을 배양 하 여는 HCFs 일시 중단 ( 재료의 표참조) 실내 온도16시 5 분. T175 플라스 크에 10 mL의 트립 신 또는 셀 분리 시 약 사용 되었다.
  3. 트립 신 또는 셀 분리 시 중화 ( 재료의 표참조) 다음 50 mL 원뿔 튜브에 샘플을 전송 매체의 동일한 볼륨을 사용 하 여, 고를 실 온에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심을 펠 릿입니다.
  4. 섬유 아 세포 성장 매체의 10 mL에 펠 릿을 resuspend ( 재료의 표참조).
  5. 20 µ L HCF 세포 현 탁 액의 0.4 %trypan 블루 솔루션의 동일한 금액으로 결합 하 고 부드럽게 혼합.
  6. 자동된 셀 카운터 또는 수동 hemocytometer를 사용 하 여 계산 하 고 새로운 세포 현 탁 액의 농도 세포 생존 능력을 구하십시오.

3입니다. 내 피 세포의 준비

  1. 앞에서 설명한17인간 탯 줄 정 맥 내 피 세포 (HUVEC) 라인의 문화를 시작 합니다. 트립 신 또는 셀 분리 시의 적절 한 금액으로 그들을 배양 하 여는 HUVECs를 일시 중단 ( 재료의 표참조) 실내 온도17시 3 분. 트립 신 또는 셀 분리 시 중화 ( 재료의 표참조) 다음 50 mL 원뿔 튜브에 전송 매체의 동일한 볼륨을 사용 하 여, 및 펠 릿을 실 온에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심.
    참고: T175 플라스 크에 10 mL의 트립 신 또는 셀 분리 시 약 사용 되었다.
  2. 내 피 세포 성장 매체의 10 mL에 펠 릿을 resuspend ( 재료의 표참조).
  3. HUVEC 서 스 펜 션의 20 µ L를 결합 하 여 0.4 %Trypan 블루 솔루션의 동일한 금액으로 그것을 얼룩 하 고 부드럽게 혼합.
  4. 자동된 셀 카운터 또는 수동 hemocytometer를 사용 하 여 계산 하 고 세포 현 탁 액의 농도 세포 생존 능력을 구하십시오.

4입니다. 드롭 Spheroids 매달려의 창조

  1. 교수형 장소 살 균 6 잘 플레이트에 (각각 350 µ m의 직경) 850 micropores를 포함 하는 드롭 장치.
  2. 위에서 설명한 세 가지 종류의 세포를 분리: hiPSC CMs, HCFs, 및 HUVECs. ML 당 2,475,000 세포의 농도에 RPMI/B-27 셀 미디어 70 %iPSC-CMs, 15% HCFs 50 mL 원뿔 튜브에서 15 %HUVECs 비율에 그들을 결합.
  3. 드롭 시스템 (350 µ m의 작은 직경) 6 잘 플레이트에 매달려 매우 낮은 첨부 파일의 각 음에 세포 현 탁 액 (mL 당 2,475,000 세포)의 4 mL를 분배.
  4. Spheroids는 교수형에 세포 현 탁 액을 분배의 12 h 이내 저절로 형성 드롭 장치. 37 ° C, 5% CO2, 그리고 95% 습도에서 72 h (3 d)의 총에 대 한 문화는 spheroids의 성숙에 대 한 계속.
  5. 문화의 72 h 후 수확 교수형의 바닥에 숨 구멍을 통해 spheroids 매체와 접시에 장치를 배치 하 고 소용돌이 그것 부드럽게 교수형에서 spheroids를 해제 하 여 시스템을 드롭 드롭 장치.

5. 3 차원 패치 창조 소설 그물 형을 사용 하 여

  1. 기지, 평방 바닥판, 바닥 그물, 및 10 층된 측면 그물은 소독 집게의 쌍의 원조와 함께 소설 몰드를 만드는 조립 첫째, 스택 및 기지, 바닥판 평방, 정렬 하단 코너 게시물을 사용 하 여 net. 그런 다음 스택과 고급 스테인레스 스틸 접지 단자의 그물을 만드는 방향으로 번갈아에 10 쪽 그물 레이어.
  2. 플러시 PBS 또는 매체를 표면 장력을 감소, 다음, 전송 충전 베이스에 조립된 형 기본 작성.
  3. PBS와 같은 방법에 있는 매체 그물 금형 캐비티에 젖은. 천천히 원하는 크기의 전제 된 구멍에는 spheroids를 입력 (2 x 2 x 1 mm, 4 x 4 x 1 m m, 또는 6 x 6 x 1 m m).
    참고: 셀 집계에 꽉 연결 하 고 정적 유지 구멍에 spheroids의 예상된 하는 볼륨의 120% 공급 있는지 확인 합니다.
  4. Net 상단과 상단 스퀘어 플레이트 코너 게시물에 어셈블합니다 및 stoppers 및 지주 튜브는 spheroids의 유실을 방지 하기 위해 보안.
  5. 6 잘 플레이트 RPMI/B-27 셀 미디어 또는 전체 조립된 형을 충당 하기 위해 충분 한 매체와 멸 균 용기에 6 mL와 채워진된 그물 형 시스템 전송.
  6. 3000-4000 x g에 7-10 일 동안 스윙 통에 채워진된 금형 시스템 6 잘 플레이트를 품 어.
    참고:는 인큐베이션 기간 심장 패치의 크기에 의해 결정 됩니다. 큰 패치, 보육 시간 심장 패치 성숙에 대 한 증가 합니다.

6. 소설 그물 형에서 패치 제거

  1. 미디어에서 금형 시스템을 제거 하 고 소독된 처리 매트 살 균 10 cm 접시에에 놓습니다.
  2. 지주 관, stoppers, 상단 사각 접시 및 최고 그물을 제거 합니다. 신중 하 게 살 균 집게의 쌍을 가진 계층된 측면 그물 하나에 의해 밖으로 슬라이드. Decannulation, 후 그대로 심장 패치 하단의 그물 위에 얻을 수 있다.
  3. 소독 집게를 사용 하 여 패치 순 하단을 선택 하 고 하단의 net RPMI/B27 미디어의 5 mL와 함께 35 mm 접시에 전송. 부드럽게 천천히 접시, 또는 살 균 세포 스 크레이 퍼와 함께 그물을 소용돌이 의해 그물 아래에서 패치를 풉니다. 그물 아래에서 초연, 후 심장 조직 RPMI/B27 미디어 양식 수 있습니다.
  4. 35 mm 접시에 부동성 3 차원 심장 패치를 품 어 계속. 금형에서 제거 후 빠르면 24 시간 기능 동기 박동을 관찰할 수 있습니다.
  5. 그물 형에서 패치를 제거한 후 모양을 무결성 및 시간 동기 박동 증가의 강도 유지는 관찰 합니다.
    참고: 3 차원 그물 형 기반 심장 패치 전시 decannulation 후 구성 요소 cardiospheres의 전기 통합. 우리는 60에서 80 분당 60 일 이상 유지 하는 구타 주파수를 관찰.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리의 실험에 우리는 70 %iPSC-CMs, 15% HCFs RPMI/B-27 셀 미디어 mL 당 2,475,000 세포의 농도에 15 %HUVECs 세포 현 탁 액을 활용. 세포 현 탁 액을 만든 후 우리는 프로토콜의 4.3 단계에서 설명한 대로 드롭 시스템에 매달려 매우 낮은 첨부 파일의 각 음에 세포 현 탁 액 4 mL 적절. 교수형의 사용 문화 37 ° C, 5% CO2, 그리고 95% 습도에서 3 일 후에 spheroids를 치고 수백의 자발적인 형성 귀착되 었 다 드롭 시스템. Spheroids는 쉽게 4 배와 10 배 확대 한 평균 직경 350 µ m의 문화 (그림 1)의 72 h 후에 가벼운 현미경 아래 박동을 관찰 했다.

Spheroids, 수확 후 프로토콜의 6.5 단계의...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 방법의 중요성의 재현성 및 결과 다층 심장 조직의 효율성에 있다. 심장 조직 공학 분야에서 현재 목표 중 하나는 치는, 다층, 고 기능 3 차원 심장 패치를 생성 하는 방법을 식별 하입니다. 우리는 spheroids 소설 그물 형으로 cardiomyocytes, 내 피 세포, 섬유 아 세포의 구성의 직접 수동 시드 다층된 심장 조직 만들기의 효율적이 고 재현 가능한 방법 보고. 이 방법에 사용 되는 그물 형 6 x 6 x 1 m m 2 x 2 x 1 밀리미터에서 배열 하는 조직의 창조에 대 한 서로 다른 크기의 다양 한 있다. 우리가 설명 또한 다른 금형 셰이프 및 원하는 조직 형상에 따라 시스템을 수정할 수 있습니다. HiPSC-CMs에 대 한 설명된 셀 농도 및 비율 이전 최적화 했다 하 고 다른 셀 형식에 대 한 수정 추가 평가 요구할 것 이다.

생체 외에서 의 창조 bioprinter 기술을 사용 하 여 3 차원 심장 조직 치료 및 진단 모델 개발의 희...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는 공개 없다.

감사의 글

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는 다음 자금 출처 인정: 심혈 관 연구에 대 한 마술을 문제 기금.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
인간 심장 섬유아세포 (HCF)Sciencell6310
FM-2는 기초 매체로 구성되어있습니다. Sciencell2331HCF 배양 매체
인간 배빌리칼 정맥 내피 세포 (HUVEC)LonzaCC-2935
EGM+Bullet Kit LonzaCC5035HUVEC 배양 배지
E8 미디어 InvitrogenA1517001HiPSC 배양 배지
Geltrex InvitrogenA1413202
TrypLE Express Enzyme (1X)Thermo Fisher12604013트립신 및 세포 해리 시약
RPMI 배지Invitrogen11875093RPMI 배지 B-27 보충제는 hiPSC-CM 배양 배지
B-27 보충제 (50x)Thermo Fisher17504044RPMI 배지와 B-27 보충제는 hiPSC-CM 배양 배지
Trypan Blue 솔루션, 0.4%Thermo Fisher15250061
Novel net mold TissueByNet Co.,LtdNM25-1
행잉 드롭 플레이트Kuraray Co.,LtdMPc350
6 웰 플레이트 시그마-알드리치CLS-3516

참고문헌

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gao, L., et al. Myocardial Tissue Engineering With Cells Derived From Human-Induced Pluripotent Stem Cells and a Native-Like, High-Resolution, 3-Dimensionally Printed Scaffold. Circulation Research. 120 (8), 1318-1325 (2017).
  2. Borovjagin, A. V., Ogle, B. M., Berry, J. L., Zhang, J. From Microscale Devices to 3D Printing: Advances in Fabrication of 3D Cardiovascular Tissues. Circulation Research. 120 (1), 150-165 (2017).
  3. Tandon, N., et al. Electrical stimulation systems for cardiac tissue engineering. Nature Protocols. 4 (2), 155-173 (2009).
  4. Duran, A. G., et al. Regenerative Medicine/Cardiac Cell Therapy: Pluripotent Stem Cells. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 66 (1), 53-62 (2018).
  5. Lux, M., et al. In vitro maturation of large-scale cardiac patches based on a perfusable starter matrix by cyclic mechanical stimulation. Acta Biomaterialia. 30, 177-187 (2016).
  6. Eschenhagen, T., et al. Three-dimensional reconstitution of embryonic cardiomyocytes in a collagen matrix: a new heart muscle model system. The FASEB Journal. 11 (8), 683-694 (1997).
  7. Moldovan, N. I., Hibino, N., Nakayama, K. Principles of the Kenzan Method for Robotic Cell Spheroid-Based Three-Dimensional Bioprinting. Tissue Engineering Part B: Reviews. 23 (3), 237-244 (2017).
  8. Sugiura, T., Hibino, N., Breuer, C. K., Shinoka, T. Tissue-engineered cardiac patch seeded with human induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes promoted the regeneration of host cardiomyocytes in a rat model. Journal of Cardiothoracic Surgery. 11 (1), 163(2016).
  9. Caspi, O., et al. Tissue engineering of vascularized cardiac muscle from human embryonic stem cells. Circulation Research. 100 (2), 263-272 (2007).
  10. Ong, C. S., et al. Biomaterial-Free Three-Dimensional Bioprinting of Cardiac Tissue using Human Induced Pluripotent Stem Cell Derived Cardiomyocytes. Scientific Reports. 7 (1), 4566(2017).
  11. Kelm, J. M., et al. A novel concept for scaffold-free vessel tissue engineering: self-assembly of microtissue building blocks. Journal of Biotechnology. 148 (1), 46-55 (2010).
  12. Noguchi, R., et al. Development of a three-dimensional pre-vascularized scaffold-free contractile cardiac patch for treating heart disease. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (1), 137-145 (2016).
  13. Zuppinger, C. 3D culture for cardiac cells. Biochimica et Biophysica Acta. 1863 (7 Pt B), 1873-1881 (2016).
  14. Langenbach, F., et al. Generation and differentiation of microtissues from multipotent precursor cells for use in tissue engineering. Nature Protocols. 6 (11), 1726-1735 (2011).
  15. Fennema, E., Rivron, N., Rouwkema, J., van Blitterswijk, C., de Boer, J. Spheroid culture as a tool for creating 3D complex tissues. Trends in Biotechnology. 31 (2), 108-115 (2013).
  16. Agocha, A., Sigel, A. V., Eghbali-Webb, M. Characterization of adult human heart fibroblasts in culture: a comparative study of growth, proliferation and collagen production in human and rabbit cardiac fibroblasts and their response to transforming growth factor-beta1. Cell Tissue Research. 288 (1), 87-93 (1997).
  17. Baudin, B., Bruneel, A., Bosselut, N., Vaubourdolle, M. A protocol for isolation and culture of human umbilical vein endothelial cells. Nature Protocols. 2 (3), 481-485 (2007).
  18. Pimentel, C. R., et al. Three-dimensional fabrication of thick and densely populated soft constructs with complex and actively perfused channel network. Acta Biomaterialia. 65, 174-184 (2018).
  19. Shimizu, T., et al. Polysurgery of cell sheet grafts overcomes diffusion limits to produce thick, vascularized myocardial tissues. The FASEB Journal. 20 (6), 708-710 (2006).
  20. Sakaguchi, K., Shimizu, T., Okano, T. Construction of three-dimensional vascularized cardiac tissue with cell sheet engineering. Journal of Controlled Release. 205, 83-88 (2015).
  21. Ong, C. S., et al. Creation of Cardiac Tissue Exhibiting Mechanical Integration of Spheroids Using 3D Bioprinting. Journal of Visualized Experiments. 125 (e55438), (2017).
  22. Tan, Y., et al. Cell number per spheroid and electrical conductivity of nanowires influence the function of silicon nanowired human cardiac spheroids. Acta Biomaterialia. 51, 495-504 (2017).
  23. Karra, R., Poss, K. D. Redirecting cardiac growth mechanisms for therapeutic regeneration. Journal of Clinical Investigation. 127 (2), 427-436 (2017).
  24. Bartholoma, P., et al. Three-dimensional in vitro reaggregates of embryonic cardiomyocytes: a potential model system for monitoring effects of bioactive agents. Journal of Biomolecular Screening. 10 (8), 814-822 (2005).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

Scaffold free Cardiac TissueNet Mold MethodHanging Drop SystemSpheroid FormationiPSC CMs HCFs HUVECsUltra low AttachmentMicropore DeviceStainless Steel NetsTissue MaturationBeating Spheroids

관련 논문