방법 논문

돼지에서 상 완 동맥 도관 법

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DOI:

10.3791/59365

2019년 3월 30일

이 논문에서

요약

비디오는 돼지에서 원심 상 완 동맥의 도관 법을 자세하게에서 설명합니다. 이 절차는 정확 하 게 동맥 혈압을 측정 하 고 동맥 혈 가스 측정에 대 한 샘플을 수집 하는 간단 하 고 빠른 방법입니다.

초록

비디오는 돼지에서 원심 상 완 동맥의 도관 법을 자세하게에서 설명합니다. 이 기술은 지속적으로 동맥 혈압을 측정 하 여 동맥 혈 가스 측정을 평가 하기 위해 동맥 혈액 샘플을 수집 연구를 수 있습니다. 동맥 혈액 압력 및 동맥 혈 가스는 실험 절차 동안 모니터링 하는 데 중요 한 생리 적인 매개 변수. 돼지에서 동맥 도관 법의 4 개의 일반적인 방법은 설명, 경 동맥, 대 퇴, 부위, 그리고 중간 saphenous 동맥 도관 법을 포함 하 여. 이러한 기술의 각 부위 동맥 및 경 동맥 도관 법에 대 한 깊은 조직 해 부를 포함 하는 단점에 대 한 접근의 용이성 등 장점이 있다. 돼지, 상 완 동맥의 말 초 부분 catheterization에에서 동맥 도관 법의 설명된 대체 메서드는 상대적으로 최소한의 조직을 절 개를 요구 하 고 정보를 데이터에 맞춰 제공 빠른 절차 다른 동맥 도관 법 사이트에서 수집. 절차는 팔꿈치와 팔꿈치 관절의 flexor 측면 사이 위치 더 낮은 팔의 경사 평면을 따라 중간 접근을 사용 하 고이 이렇게 있습니다 연구자 포함 하는 절차에 대 한 한 시 빨리 벗어나게 자유의 주요 장점은 caudoventral, caudodorsal 다시, 또는 돼지의 뒷 다리 사지. Catheterized 선박의 위쪽 forelimb와 효과적인 항상성에서 동맥 카 테 테 르 제거 다음의 잠재적인 과제의 위치,이 기술은 비 복구 절차를 제한 수 있습니다.

서론

외과 개입 과학 발전을 강화 하는 동물 모델을 개발 실험 연구에 사용 됩니다. 과학 문학 가득 소설의 예제와 함께 수술 동물 모델,12,3. 수술 절차의 해 부 구조 뿐만 아니라 마 취와 진통에 필요한 다양 한 약물과 복잡 한 생리 적 상호 작용 뿐만 아니라 조작 관련 된 복잡 한 과정입니다. 이 상호 작용 동물 내에서 생리 적 프로세스에 큰 변화를 일으킬 수 있다 하며 같은 동물4의 경계 모니터링. 임상적으로 성공적인 수술 결과 동맥 혈 가스와 동맥 혈액 압력5의 측정 관련 되었습니다. 이러한 임상 매개 변수는 차례로 동맥6,7의 성공적인 catheterization 동맥 혈압을 측정 하 여 동맥 혈액을 효과적으로 수집 능력을 필요로 합니다.

동맥 혈액을 수집 하 여 압력 측정 동맥 도관 법은 다양 한 동물 종의5,6,7,,89,10, 에 사용 되었습니다. 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 개발19,,2021 의 다른 연령대에서 동물에 모두 복구 (임상과 진단) 절차4,5, 감독 되었습니다 6,7,8 및 복구 비 (실험) 절차14,15,,1617,18. 또한, 동맥 접근의 용이성 및 수술 절차의 문맥에서 동맥의 위치 또한 중요 한 고려 사항이 동맥 동맥 혈액 측정을 선택할 때. 예를 들어 개에 중간 꼬리 동맥 및 말에 얼굴 동맥으로 개에 말, 페달 동맥은 진단 측정을 위해 사용 되 고 모니터링 복구 절차6,7,8. 대조적으로, 경 동맥과 대 퇴 동맥은 종종 어느 비-복구에 대 한 돼지에서 catheterized 또는 장기 카 테 테 르 주입 실험14,,1518.

돼지에서 동맥 도관 법 중 동맥 혈압 측정 또는 동맥 혈액을 수집 경 동맥, 대 퇴, 중간 saphenous, 또는 귀의 동맥22,23정기적으로 고용 하고있다. 특수 비 일상적인 절차에 대 한 다른 더 특이 한 동맥 사용 되었습니다, subclavian 및 장 골 동맥를 포함 하 여 측정 하 상 완 동맥 해 부 tortuosity1716대동맥 각각 이미지. 에 관계 없이 동맥 각 동맥은 그것의 사용에 대 한 고유의 장단점이 도관 법에 대 한 선택 됩니다. 예를 들어, 귀의 동맥 해부학을 쉽게 이지만 사용 한계 귀 혈관11,12에 그것의 가까운 근접에 제한 될 수 있습니다. 비교에서는, 경 동맥은 비교적 크고 강력한24, 하지만 그것은 깊은 jugular 밭 고 랑 내 하며 실질적인 조직 해 부25. 따라서, 다른 동맥 동맥 압력을 측정 하 여 동맥 혈액 수집 catheterized 수 식별 보증 된다. 이 비디오 및 원고 돼지, 비 복구 절차에 적용 될 수 있는 기술에 있는 원심 상 완 동맥의 도관 법 자세히 설명 합니다. 특히, 돼지 상 완 동맥 도관 법 뒷 다리 측정 (수술의이 부분에서 데이터 제시 하지) 요 추 척추 수술 중 동맥 혈액 압력 및 동맥 혈 가스 매개 변수를 측정 하기 위해 사용 되었다.

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프로토콜

비디오 및 원고에 설명 된 실험 동물에 대 한 모든 절차는 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 앨버타의 대학에 의해 승인 되었다

1. 수술 마 취 그리고 돼지의 수술 준비.

  1. 케 타 민 염 산 염 (22 mg/kg,), xylazine 염 산 염 (2.2 mg/kg) glycopyrrolate 염 산 염 (10 µ g/kg)를 포함 된 칵테일 마 취 약물으로 피하 50kg Landrace 요크 셔 상업 돼지 premedicate
  2. 돼지의 머리 근처 테이블의 끝에 임상 매개 변수 감시와 관련 된 모든 장비를 설정 합니다. 장비는 돼지에 대 한 액세스를 제한 하지 것입니다 확인 하십시오. 마음으로 레벨 수평 평면에 압력 변환기를 배치 하 여 정확한 동맥 혈압 측정을 생성 합니다.
  3. Anesthetize 흡입된 isoflurane 가스 (500-1000 mL/min O2에서 4%-5 %isoflurane) 돼지 제대로 크기의 얼굴에 마스크를 사용 하 여. 수의 후 두 경 (17-25 cm 긴 직선 블레이드)와 성 대를 시각화 하 고 국 소 10% 적용 lidocaine spay laryngospasm 및 기도 방해의 위험을 제한 하는 성 대에.
  4. 성 대를 통해 cuffed endotracheal 관 (9.0 m m 내부 직경 (ID))을 삽입 하 여 돼지를 넣어야 하 고 마 취와 isoflurane 가스 (1000-2000 mL/min O2에서 isoflurane 0.5%-3.0%)를 유지 합니다. 기계적인 통풍 기 (18-22 호흡/min)에 돼지를 환기 하 고 모든 만료 된 마 취 가스를 청소 하 고 수술 스위트 밖에 통풍. 턱 톤 모두 페달 및 종을 반사 응답에 의해 마 취의 수준을 평가 합니다.
    참고: 관리 정 맥 Lactated 벨의 솔루션 (LRS, 10-50 mL/kg/h; 단계 1.6 참조) hemodynamic 기능을 강화 하 고 줄일 isoflurane 가스 마 취를 유도 돼지26심혈 관 출력의 우울증.
  5. 의료 테이프 모니터 심장 박동 및 말 초 혈액 산소 (SpO2)의 채도와 혀의 점 막 표면에 펄스 속도도 보안. 삽입 한 온도 온도 모니터링을 비 강에 약 2-4 cm을 조사. 수술 동안 정상 체온 (38-40 ° C)를 유지 하기 위해가 열된 테이블에 돼지를 놓습니다.
  6. 적절 한 조직 준비와 수술 무 균을 보장 합니다.
    1. 10 %povidone-요오드 수술 스크럽 솔루션과 정 맥 도관 법에 대 한 준비 하 여 건조 공기 솔루션을 수 있도록 귀의 외부 표면을 청소.
    2. 20 g, 1 인치 정 맥 카 테 테 르, 어느 정 맥 유체를 제공 하는 한계 귀 정 맥 catheterize (LRS; 10-50 mL/kg/h) 또는 다른 마 취 에이전트의 추가.
    3. 지속적인 정 맥 remifentanil 염 산 주입 침략 적인 절차에 필요한 경우 돼지 마 취와 진통 강화 (0.14 0.05 µ g/k g/min).
  7. 가로 기댄 위치에 돼지를 놓고 부드럽게 확장 앞 다리는 어깨에서 대략 10-12 cm. (위 forelimb) 팔의 중간 양상의 피부 표면에 머리를 클립. 촉진에 의해 원심 상 완 동맥 펄스 상징입니다.
    참고: 동맥 landmarked 위치는 비스듬한 평면을 따라 팔꿈치, 팔꿈치 관절의 flexor 측면에서 5 cm에서 팔 약 9 cm와 거짓말. 상 완 동맥 proximally 통과 상 완 골 견 갑 골의 꼬리 3 쪽으로 이동 합니다.
  8. 마찬가지로 1.6 단계, 적절 한 조직의 준비와 수술 불 임을 확인 합니다. 깨끗 한 피부 표면 10 %povidone-요오드 수술 솔루션을 스크럽 하 고 건조 공기 솔루션을 허용. 4 개의 작은 일회용 수술 커튼으로 상 완 동맥 도관 법 사이트 드러 워 진.

2. 조직 해 부와 상 완 동맥 도관 법

  1. 기본 조직을 노출 하 메스 블레이드 6 cm 피부 절 개를 확인 합니다. 퉁 명 스럽게 Metzenbaum pulsating 동맥 확인까지 해 부, 심화이 두 근 brachii의 중간 서피스를 따라가 위로 해 부.
  2. 면봉을 사용 하 여 부드럽게 멀리에서 상 완 동맥, 메디아 신경 및 상 완 정 맥; adventitia 애타게 가까이에 있고 동일한 fascial 비행기 내에서 구조. 부드러운 해 부는 필요, 중요 한 것은 절차 동안 메디아 신경에 최소한의 상해를 보장 합니다. 상 완 동맥 약 2.0-2.5 c m의 피부 아래 거짓말 그리고 coracobrachialis 그리고 텐서 fasciae antibrachii 측면에 중간 이며 삼 두 근 근육27,28의 중간 머리의 작은 세그먼트를 overlies.
    참고: 장소 피부 절 개를 지키려고 견인 열, 상 완 동맥에 쉽게 액세스할 수 있도록. 두 번째 견인 장소 배 노출에 더 도움을 (선택 사항).
  3. 더 나은 구조적 무결성 및 절차 동안 처리 향상 된 조직 유지 하는 전체 해 부에 대 한 따뜻한 식 염 수 (37 ° C)와 모든 조직 축.
  4. 무딘된 집게와 함께 동맥 아래 터널을 만들고 polyglactin 봉합 동맥 아래 3 2-0를 통과. 의도적으로, 동맥을이 봉합 상대적으로 긴 (3-4 cm) 카 테 터를 확보 하 여 아의 끝을 둡니다. "느슨한 봉합 넥타이" 빠른 카 테 터 1.0 cm 서로에서 분리 되어 대략 1.5-2.0 cm 3 원심 봉합에 인접 하는 처음 두 봉합을 고정에 대 한 수 있도록 추가 합니다. 동맥을 가리고를 먼저 가장 원심 봉합 사 선
  5. 22 G, 1 인치 주변 정 맥 카 테 터를 동맥으로 삽입 하 고 사전 테 (완전 하 게 카 테 터 허브)는 stylet을 선박에. 부분적으로에서 동맥 혈액, 카 테 터의 적절 한 용기 배치 보장을 시각화 하기 위해 카 테 터는 stylet 철회. 다음, 단단히 묶는 중간 봉합 하 여 혈관에 카 테 터를 보안 합니다. stylet을 제거 하 고 신속 하 게 출혈을 최소화 하기 위해 카 테 터를 캡.
  6. 절 개 및 따뜻한 식 염 수 (37 ° C)와 카 테 터를 플러시. 가장 인접 봉합 고 중요 한 것은이 카 테 터 안정성을 향상 하 고 (즉, 돼지는 재배치) 동안 동맥에서 카 테 터의 실수로 지연 감소 카 테 터 허브 주위 원심 봉합 보안 밀접 하 게 확인 하십시오.
    참고: 동맥으로 카 테 터의 초기 배치 실패 하거나 혈관 손상, 위치에 동맥에 카 테 터 삽입 약 0.25 cm 초기 카 테 터 삽입 사이트에 인접.
  7. 신속 하 게 가득 LRS 정 맥 확장 라인 카 테 터, 그리고 게 따뜻한 식 염 수 (37 ° C)와 외과 사이트에 연결 된 동맥 압력 트랜스듀서와 촉촉한, 조직 유지를 연결 하 고 주변 조직으로 유출 한 혈액을 청소 . 테 patency 보장 및 카 테 테 르 벽을 따라 형성에서 혈전 방지 식 염 수와 카 테 터를 플러시.
    참고: 변환기 동맥 혈압 라인 오류 (즉, 누출)에 대 한 확인, 비우기 동맥 압력 모니터 측정에 의해 트랜스듀서 기준선을 설정 하 고 적절 한 동맥 혈압 웨이브 형성을 보장.
  8. 3-5 mL/min LRS 제공 압력 주입 가방 250 mmHg 이상 압력 확장 라인의 플러시 포트를 유지 하 여 지속적인된 테 patency를 확인 합니다.
    1. 선택 사항: 장소 2 2-0 폴 리 프로필 렌 또는 카 테 터 허브 또는 정 맥 확장 라인 허브 추가 동맥 내 카 테 터 안정성 향상을 위해 2 개의 2-0 polyglactin 봉합.

3. 조직 폐쇄와 몸 위치

  1. 근육 레이어 2-0 polyglactin와 간단한 연속 봉합 패턴으로 절단 하거나 테이퍼 바늘에 봉합 하 고 간단한 중단된 봉합 패턴 절단 바늘에 2-0 폴 리 프로필 렌 봉합 사를 피부 닫습니다 닫습니다.
    참고: 교환, 2-0 polyglactin 또는 폴 리 프로필 렌 봉합을 2-0 사용할 수 있습니다 근육과 피부를 닫습니다.
  2. 수술 테이블을 향해 측면 휴식 돼지의 복 부를 회전 하 여 복 부 recumbency에 돼지를 놓습니다. 왼쪽된 양면된 측면 휴식 돼지 오른쪽 양면된 측면 휴식 돼지 시계 반대 방향 회전 하면서 시계 방향으로 회전 합니다.
  3. 돼지의 척추 칼럼의 중간에 40 ° 각도로 catheterized forelimb를 놓습니다. 이 forelimb 위치 최고의 동맥 혈액의 흐름과 가장 정확한 동맥 혈압 측정을 생성합니다.

4. 임상 매개 변수 모니터링

  1. 및 호흡기 hemodynamic 매개 변수 뿐만 아니라 적절 한 모니터링 장비를 사용 하 여 전체 마 취 및 수술 절차에 걸쳐 온도 측정 합니다.

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결과

상 완 동맥 도관 법은 동맥 혈압 및 동맥 혈액의 돼지에서 확장된 수술 절차 동안 간헐적인 샘플링의 지속적인 모니터링에 대 한 수 있습니다. 측정 된 매개 변수는 설명 된 대로 7 50kg Landrace 요크 셔 상업 돼지에서 수집 했다. 상 완 동맥을 catheterize 하는 데 필요한 총 시간이 이었다 35.2 ± 4.4 분 초기 동맥 landmarking에서 최종 수술 절 개 폐쇄 (그림 1). 동맥 압력 120 분 이상 측정 하 고 수축 기, 이완, 및 평균 동맥 압력은 102.9 ± 1.76, 61.2 ± 0.92와 74.8 ± 0.89 mmHg, 각각 (그림 2). 그림 2 에서 데이터 후속 복구 절차 동안 75 분, 120 분에서 수축 기 혈압에서 일시적 하락을 보여 줍니다. 이것은 이벤트는 짧은...

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토론

동맥 도관 법 동맥 혈액 압력을 측정 하 고 동맥 혈 가스 측정을 위한 혈액 샘플을 수집 하는 다양 한 동물 종의5,6,,78 에 설립 되었습니다. , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16

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공개 사항

저자는 공개 없다.

감사의 글

이 작품 건강 연구의 캐나다 학회 및 캐나다 재단 혁신 그랜트 V. K. Mushahwar를 지원 한다. A. Toossi Vanier 캐나다 대학원 장학금, 앨버타 혁신-건강 솔루션 대학원 재학 및 퀸 엘리자베스 II 대학원 장학금에 의해 지원 되었다. V.K. Mushahwar 기능 복원에 캐나다 연구의 자입니다. 우리는 씨 제이 스택 모스 스트리트 프로덕션의 오디오 생산 및 절차와 함께 그들의 도움에 대 한 외과 의학 연구소의 직원으로 그의 도움에 대 한 인정 하 고 싶습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
0.9% NaCl (Saline) 용액EMRNJB1322P1 x1 리터 봉지
10% 리도카인 스프레이AstraZenecaDIN:02039508 / 1 x  50 ml  병
10% Povidone-Iodine 스크럽Purdue Pharma521232 1 x 500 ml 병 
20 ga 1인치 혈관 카테터Becton Dickinson3814331 x 혈관 카테터
2-0 폴리글락틴 봉합사 (Vicryl)EthiconJ339H2-0 vicryl / 봉합사 1 패킷
2-0 폴리프로필렌 봉합사 (Prolene) Ethicon8833H2-0 프롤렌 / 봉합사 1 패킷
22 ga 1 인치 혈관 카테터Becton Dickinson3814231 x 혈관
9 ID mm 기관 내 튜브JorvetJ0835P1 x 기관 내 튜브
혈압 IV 라인아르곤 의료 기기1124111 x 동맥 혈압 IV 라인
일회용 커튼Halyard Sales LLC897314-8 x 일회용 드레이프 
글리코피롤레이트 하이드로클로라이드 SandozDIN:02039508 / 1 x 20ml 바이알
IsofluraneAbbott Animal  건강05260-51 x 250ml 병
켈리 집게 - 곡선 (14cm)스티븐스162-7-388-10  악기
케타민 염산염베토 퀴놀DIN : 02374994 / 1 x 10ml 바이알
젖산 링거 솔루션Hospira0409-7953-094 x1 리터 가방
Metzenbaum 가위파인 사이언14518-18
Miller 후두경 블레이드Welch Allyn68044182 mm 길이  / 1
기기 비강 온도 프로브SurgivetV34171개의 프로브
바늘 드라이버Stevens162-V98-422
기기 Q 팁 애플리케이터Fisher Scientific22-037-96020-40  앱
Remifentanil hydrochlorideTEVADIN:0234432 / 1 mg 바이알
Surgivet 어드바이저: 바이탈 사인 모니터SurgivetV92031 모니터
Weitlaner 견인Stevens162-11-602  2 견인기
자일라진 염산염바이엘DIN : 02169606 1 x 50ml 병
카테터 동맥 스 개의 개의 기

참고문헌

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now? Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , 5, John Wiley & Sons Inc. New Jersey. (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

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