인핸서 RNA(eRNA)는 활성 인핸서에서 생산되는 비암호화 RNA입니다. eRNA 기능을 연구하는 최적의 방법은 네이티브 염색질 영역에서 eRNA 수준을 조작하는 것입니다. 여기에서는 CRISPR-dCas9 융합 전사 활성제를 사용하여 관심 있는 eRNA의 발현을 유도하는 eRNA 연구를 위한 강력한 시스템을 소개합니다.
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방법 논문
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인핸서 RNA(eRNA)는 활성 인핸서에서 생산되는 비암호화 RNA입니다. eRNA 기능을 연구하는 최적의 방법은 네이티브 염색질 영역에서 eRNA 수준을 조작하는 것입니다. 여기에서는 CRISPR-dCas9 융합 전사 활성제를 사용하여 관심 있는 eRNA의 발현을 유도하는 eRNA 연구를 위한 강력한 시스템을 소개합니다.
인핸서(Enhancer)는 포유류 게놈에 흩어져 있는 중추적인 게놈 요소이며 조직 특이적 유전자 발현 프로그램을 지시합니다. 인핸서(enhancer)가 전사 인자(transcription factor, TF)에 대한 DNA 결합 모티프를 제공할 뿐만 아니라 eRNA라고 하는 비암호화 RNA를 생성한다는 증거가 증가하고 있습니다. 연구에 따르면 eRNA 전사체는 생리학과 질병 모두에서 유전자 조절에 중요한 역할을 할 수 있습니다. eRNA의 기능을 조사하기 위해 일반적으로 사용되는 방법은 eRNA의 knockdown 또는 enhancer transcription의 화학적 억제에 의한 "기능 손실" 접근 방식으로 제한됩니다. eRNA가 종종 과발현되는 인간 암과 같은 특정 질병 상태를 모방하기 위해 eRNA의 "기능 획득" 연구를 수행하는 강력한 방법은 없었습니다. 여기에서는 dCas9 mediated Synergistic Activation Mediaators(SAM) 시스템을 적용하여 eRNA의 역할에 대한 기능적 질문을 위해 eRNA를 정확하고 강력하게 활성화하는 방법을 소개합니다. eRNA 선택, gRNA 설계, RT-qPCR에 의한 eRNA 활성화 검증에 이르기까지 eRNA 활성화의 전체 워크플로우를 제시합니다. 이 방법은 유전자 조절 및 질병 발달에서 특정 eRNA의 역할을 연구하는 독특한 접근 방식을 나타냅니다. 또한 이 시스템은 특정 질병의 맥락에서 표현형을 유발하는 eRNA 표적을 식별하기 위한 편향되지 않은 CRISPR 스크리닝에 사용할 수 있습니다.
인간 게놈에는 조절 요소 1,2,3의 별자리가 포함되어 있습니다. 이 중 인핸서는 가장 중요한 범주 중 하나로 부상합니다 4,5,6. 인핸서(Enhancer)는 발달을 조절하는 데 필수적인 역할을 하며, 세포 정체성을 결정하기 위한 공간-시간 유전자 발현 프로그램을 생성하는 역할을 합니다 5,6,7. 일반적으로 인핸서는 전사 인자(transcription factor, TF)에 대한 결합 모티프를 제공하는 DNA 요소로만 간주되며, 이는 표적 유전자 발현을 조절합니다 6,8. 그러나 일련의 연구에 따르면 많은 활성 인핸서가 비코딩 인....
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이 프로토콜의 전체 워크플로우는 그림 1에 나와 있습니다.
1. Enhancer RNA (eRNA) 선정
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그림 1 은 이 프로토콜의 전체 워크플로우를 보여줍니다. 우리의 초점은 유방암에서 과발현되는 대표적인 eRNA인 NET1e15에 초점을 맞추었으며, 이를 위해 SAM 시스템을 사용하여 유전자 발현, 세포 증식 및 암 약물 반응을 조절하는 생물학적 역할을 활성화하고 연구했습니다. 이 NET1 enhancer의 경우, 전사된 eRNA 전사체(그림 2A,B)가 측면에 있는 여러 개의 p300 ChIP-Seq 피크를 표시했습니다. 강력한 GRO-Seq 신호를 기반으로 p300 ChIP-Seq 피크 중 하나를 인핸서 코어(enhancer core)로 선택했습니다(양방향 eRNA 전사체가 시작되는 곳, 그림 2B). NET1 인핸서.......
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당사의 데이터를 바탕으로 SAM 시스템이 세포 성장 또는 약물 내성과 같은 세포 표현형을 조절하는 eRNA의 역할을 연구하는 데 적합하다는 결론을 내렸습니다. 그러나 다음과 같은 이유로 강력한 eRNA 활성화를 위해서는 신중한 gRNA 설계가 필요합니다. 우선, 각 특정 세포주/유형에서 eRNA의 transcription start site(TSS)에 명확하게 주석이 되어 있지 않습니다. 이로 인해 후성유전체 정보(예: H3K27ac의 ChIP-Seq, 전사 인자 또는 p300), GRO-Seq(또는 사용 가능한 경우 추가 CAGE4 또는 GRO-cap26 데이터 세트)에 의해 묘사된 전사 활성을 활용하여 전사 시작 부위를 추론하여 gRNA가 dCas9/SAM 복합체에 의한 정상적인 인핸서 전사의 잠재적 장애를 피할 수 있도록 설계할 수 있어야 합니다. 둘째, 현재 설계 도구에서 제공.......
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이 내용은 전적으로 저자의 책임이며 텍사스 암 예방 및 연구소의 공식 견해를 반드시 나타내는 것은 아닙니다.
이 작업은 W.L(Cancer Prevention and Research Institute of Texas, CPRIT RR160083 및 RP180734; NCI K22CA204468; NIGMS R21GM132778; 텍사스 대학교 UT 스타 상; 및 Welch Foundation AU-2000-20190330) 및 J.L(UTHealth Innovation for Cancer Prevention Research Training Program Post-doctoral Fellowship, CPRIT RP160015)에 대한 박사 후 연구원. 우리는 현재 수치 중 일부가 Creative Commons 라이선스(https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/)를 따르는 (수정 포함) 채택된 원본 publicataion15 를 인정합니다.
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| BsmBI 제한 효소 | New England BioLabs Inc. | R0580S | |
| Cas9 mAb | 활성 모티프 | 61757 | 로트: 10216001 |
| 데옥시뉴클레오티드(dNTP) 용액 혼합물 | New England BioLabs Inc. | N0447S | |
| 둘베코' s Modified Eagle Medium | Corning | 10-013-CM | |
| Dynabeads Protein G | Thermo Fisher Scientific | 65002 | |
| EDTA | Thermo Fisher Scientific | BP118-500 | |
| EGTA | Sigma | E3889 | |
| 소 태아 혈청 | GenDEPOT | F0900-050 | |
| 글리코겐 | Thermo Fisher Scientific | 10814010 | |
| Hepes-KOH | Thermo Fisher Scientific | BP310-100 | |
| 헥사디메트린 브로마이드 | 시그마 | H9268 | |
| 하이그로마이신 B | Goldbio | H-270-25 | |
| IGEPAL CA630 | 시그마 | D6750 | |
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| lenti_gRNA(MS2)_zeo backbone | Addgene | 61427 | |
| lenti_MS2-p65-HSF1_Hygro | Addgene | 61426 | |
| LiCL | Sigma | L9650 | |
| Lipofectamine 2000 | Thermo Fisher Scientific | 11668-500 | |
| NaCl | Sigma | S3014 | |
| Na-데옥시콜레이트 | 시그마 | D6750 | |
| NaHCO3 | Thermo Fisher Scientific | BP328-500 | |
| N-라우로일사르코신 | 시그마 | 97-78-9 | |
| Opti-MEM 저감 혈청 매체 | Thermo Fisher Scientific | 31985070 | |
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| 열 순환기 | Bio-Rad Laboratories | T100 | |
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