이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

화상 부상으로 인한 통증과 생쥐의 우울증과 같은 행동

3.3K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/62817

⸱

2021년 9월 29일

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

한쪽 뒷발의 일시적인 스컬드 손상(65°C ± 0.5°C, 3초)은 동측성 측면의 폰 프레이 필라멘트 자극으로 역치(g)를 감소시키고 보행 패턴을 변경한다. 게다가, 화상 부상은 강제 수영 테스트에서 우울증과 같은 행동을 유도합니다.

초록

물을 돋우는 것은 노인과 젊은 인구 모두에서 화상 부상의 가장 흔한 원인입니다. 그것은 저소득 및 중산층 국가에서 높은 사망률과 후유증으로 인해 주요 임상 과제 중 하나입니다. 화상은 종종 강렬한 자발적인 통증과 지속적인 이질통뿐만 아니라 생명을 위협하는 문제를 유발합니다. 더 중요한 것은, 과도한 통증은 종종 삶의 질을 크게 떨어 뜨릴 수있는 우울증을 동반합니다. 이 기사에서는 화상으로 인한 통증과 우울증과 같은 행동에 대한 연구를위한 동물 모델을 개발하는 방법을 보여줍니다. 마취 후, 화상 손상은 마우스의 한쪽 뒷발을 3초 동안 온수(65°C± 0.5°C)에 침지함으로써 유도하였다. 폰 프레이 테스트 및 자동 보행 분석은 화상 손상 후 2일마다 수행되었다. 또한, 강제 수영 테스트를 이용하여 우울증 유사 행동을 검사하고, 화상 부상 후 비정상적인 운동 기능을 구별하기 위해 로타로드 테스트를 실시하였다. 이 연구의 주요 목적은 마우스에서 화상 부상으로 인한 통증 및 우울증과 같은 행동을 연구하기위한 동물 모델의 개발을 설명하는 것입니다.

서론

화상 및 외상과 같은 조직 손상은 일반적으로 급성 통증의 동시 발생과 관련이 있습니다. 화상 부상 및 외상 관련 증상은 매년 1,80,000명의 사망자가 화상으로 인한 것으로 추정되며, 대다수는 다양한 유형의 화상으로부터 저소득 및 중산층 국가에서 발생한다1. 전 세계 보고서에 따르면 화상은 어린이에게서 흔하며 입원 환자 2,3의 약 40 % -60 %를 차지합니다. 이러한 특정 부상은 끓이거나 목욕하는 물 4,5와 같은 일상 생활에서 발생할 수 있으므로 더욱 심각합니다. 급성 통증은 대부분의 경우 조직 손상으로부터 회복 된 후 자발적으로 해결 될 수 있지만, 신경계의 비정상적인 변화로 인해 만성화 될 수 있습니다 6,7.

최근에는 급성 통증이 우울한 기분을 유발할 수 있으며 만성 통증은 불안과 우울증을 유발할 수 있다고 제안되었습니다 8,9,10,11. 통증과 우울증의 공존은 환자를 치료하는 것을 더 어렵게 만듭니다. 우울증은 또한 통증 민감성을 증가시키는 경향이 있으며, 이는 더 강렬한 우울증과 통증을 유발할 가능성이 높습니다12. 통증과 우울증의 합병증은 말초 염증13,14,15,16의 동물 모델에서 나타난다. 통증으로 인한 우울증의 근간이 되는 상세한 메커니즘은 지금까지 잘 알려져 있지 않다17. 따라서 부작용과 증상을 완화하기 위해보다 효과적인 화상 치료법을 개발할 필요가 있습니다.

따라서, 본 연구는 마우스에서 화상 손상으로 유발된 급성 통증 및 우울증 유사 행동을 연구하기 위한 동물 모델을 개발하도록 설계되었다. 이를 위해 화상 부상과 관련된 비정상적인 촉각 감도, 변경된 보행 패턴 및 우울증과 유사한 행동을 측정했습니다. 또한이 연구는 NSAIDs를 사용하여 모델을 검증하려고 시도합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

모든 실험 프로토콜은 한국 충남대학교 기관동물관리이용위원회에서 검토 및 승인한 후 국제통증연구협회(International Association for the Study of Pain)18의 윤리지침에 따라 실시하였다.

1. 뒷발에 스케일링 화상 부상의 유도

  1. 체중 20-25 g의 수컷 ICR 마우스를 습도 40%-60%의 빛과 온도 조절된 방(12/12 h 광암주기, 22.5°C ± 2.5°C)에 보관한다.
    참고: 수컷과 암컷 마우스 모두 이 프로토콜에 사용할 수 있습니다.
  2. 동물이 음식과 물에 자유롭게 접근 할 수있게하고 실험을 시작하기 전에 적어도 1 주 동안 순응하십시오.
    주: 모든 동물은 격리 스트레스와 같은 변수를 배제하기 위해 집단 수용되었다.
  3. 마우스를 실험 또는 대조군에 무작위로 할당하고 동물 번호를 코드로 사용하여 맹검 실험을 수행하십시오.
  4. 화상 유도 당일, 100 mg / kg의 용량으로 300 μL의 alfaxalone 주사를 복강 내 (i.p.) 주사하여 마우스를 마취하십시오. 화상 유도를 수행하는 동안 수술 가운, 장갑 및 마스크를 착용하십시오.
  5. 마우스를 깊이 마취 한 후 오른쪽 뒷발 주위를 70 % 에탄올로 소독하십시오.
    참고: 깊은 마취의 상태를 확인하기 위해 뒷발가락이나 꼬리에 적용된 핀치 자극에 대한 반응의 부족을 확인하십시오.
  6. 마취 유도 후 각막 건조를 방지하기 위해 안과 연고를 눈에 바르십시오.
  7. 깊이 마취된 마우스의 오른쪽 뒷발을 65°C ±는 0.5°C의 온수에 3초 동안 담그십시오. 뒷발을 뜨거운 물에 담그기 전에 각 마우스의 발목에 표시를하여 화상을 입은 부위의 일관성을 유지하십시오.
  8. 화상을 입힌 후 마우스를 깨끗한 가정 케이지에 넣고 동물이 마취에서 회복 될 때까지 가열 패드에 놓습니다.
    참고 : 진통제인 아세트 아미노펜 (200 mg / kg)은 화상 손상 당일부터 7 일 동안 매일 한 번 복강 내 투여되었습니다 (화상 + 아세트 아미노펜 그룹 만). 화상 그룹은 비히클 대조군으로서 식염수로 처리되었다. 실험은 이전 연구4에서 설명한 방법에 따라 수행되었다.

2. 기계적 이질의 측정

  1. 쥐를 행동 시험실로 데려와 시험 전에 적어도 30 분 동안 순응하게하십시오. 테스트를 수행하는 동안 수술 가운, 장갑 및 마스크를 착용하십시오.
  2. 마우스를 금속 메쉬 바닥 (메쉬 크기 : 0.7cm x 0.7cm)의 사각형 상자 (직경 : 13cm, 높이 : 12cm)에 넣고 적어도 30 분 동안 순응하게하십시오.
  3. 오름차순 자극 방법19,20을 사용하여 뒷발의 기계적 역치를 평가한다.
  4. 뒷다리 질경이를 자극하기 위해 5-8 초 간격으로 일련의 폰 프레이 필라멘트를 부드럽게 찌르십시오. 화상 유도 전날의 기준선 값을 구합니다.
    참고: 0.16-1.2 g 폰 프레이 필라멘트를 모든 동물에서 발 금단 역치를 측정하기 위해 시험에 각각 사용하였다. 발 금단 반응 테스트는 폰 프레이 필라멘트의 가장 낮은 굽힘력 (이 프로토콜에서 0.16g)으로 시작되었습니다. 응답이 없으면 다음 굽힘력을 가진 필라멘트가 적용되었습니다.
  5. 다섯 번의 시험을 수행하여 각 동측성 (부상 당한) 뒷발에 대한 기계적 역치를 평가하십시오.
    참고: 각 동물에서 다섯 번의 시험 중 세 번 이상 반응을 일으키는 폰 프레이 필라멘트의 굽힘력은 발 철수 역치 (PWT, g)로 표현되었습니다. 기계적 역치는 화상 손상 전날과 1, 3, 5 및 7일 후에 측정되었다. 진통 효과는 동물에 아세트아미노펜을 투여한 후 1시간 후에 평가하였다.

3. 자동 보행 분석

  1. 화상 부상 5 일 전부터 10-15 분 동안 하루에 한 번 보행 분석 시스템에서 마우스를 적응시킵니다. 보행 분석을 수행하는 동안 수술 가운, 장갑 및 마스크를 착용하십시오.
  2. 시험 당일, 쥐를 행동 시험실로 데려와 시험 전에 적어도 30 분 동안 순응하십시오.
    참고: 어두운 환경에서 순응 및 보행 분석 테스트를 수행합니다. 다음과 같이 프로그램 메뉴의 조건을 설정합니다.
    1. 프로그램을 실행 한 후 새 실험 만들기 메뉴를 클릭하여 데이터를 저장할 폴더를 지정하십시오.
    2. 지정 후 최대 실행 시간을 5초로 설정하고 최대 허용 속도 변동을 50%로 설정합니다.
    3. 등록된 카메라를 선택하고 프로그램의 설정 탭에서 보도 길이를 30cm로 설정합니다.
    4. 프로그램 메뉴 의 획득 탭에서 획득 열기를 선택합니다.
    5. 상태 메시지에 따라 배경 스냅 버튼을 클릭하여 빈 보도의 배경 이미지를 가져옵니다.
  3. 획득 시작 버튼을 클릭한 다음, 마우스를 왼쪽-오른쪽 횡단 가능한 보도의 입구에 놓습니다. 마우스의 자유로운 움직임에 따라 녹음이 자동으로 시작됩니다.
    참고: 동물의 보행이 성공적으로 기록되고 모든 발걸음이 감지되면 녹색 아이콘과 함께 준수 실행으로 표시됩니다. 소프트웨어가 발자국을 감지하지 못하면 빨간색 아이콘이 표시되며,이 경우 기록을 다시 수행하는 것이 좋습니다. 저자는 유사한 실행 속도로 수행 된 적어도 다섯 개의 성공적인 준수 실행을 수집하고 분석 할 것을 권장합니다.
  4. 프로그램 메뉴의 획득 탭에서 실행 분류를 선택합니다.
    참고 : 위의 성공적인 컴플라이언스 실행에서 얻은 데이터를 선택한 후 마우스의 보행 패턴이 기록 된 비디오 분석 화면으로 이동하십시오.
  5. 분석할 실행을 선택하고 자동 분류 단추를 클릭합니다.
  6. 자동 분류를 수행 한 후 각 실행에서 코, 생식기 인식 및 발을 정크 데이터에 대한 잘못된 인식을 제거한 다음 데이터를 분석하십시오.
    참고: 모든 통계 파라미터는 자동으로 분석되고 프로그램에 저장되며, 원시 데이터 값은 실험자의 분석 메뉴에서 찾을 수 있습니다. 자동 보행 분석은 화상 손상 전후 1, 3, 5 및 7일에 수행되었다. 평가는 Burn+Acetaminophen 투여군에서 아세트아미노펜 투여 후 30분, Burn 군에서 식염수 처리 후 30분 후에 수행하였다. 본 실험은 선행 연구 4,21,22에 기재된 방법에 따라 수행되었다.

4. 우울증과 같은 행동의 측정

참고 : 절망에 기반한 행동, 물에서의 부동성 시간은 강제 수영 테스트에 의해 측정되었습니다.

  1. 쥐를 행동 시험실로 데려와 시험 전에 적어도 30 분 동안 순응하십시오. 강제 수영 테스트를 수행하는 동안 수술 가운, 장갑 및 마스크를 착용하십시오.
  2. 마우스를 15 cm (25 °C ± 0.5 °C)의 물을 함유하는 투명한 플렉시 글라스 실린더 (10 cm x 25 cm)에 넣고 15 분 동안 넣는다.
  3. 24시간 후, 마우스를 동일한 조건의 실린더에 넣고 부동성 시간을 측정하였다.
    참고 : 부동성 시간은 시험 시간의 5 분 동안 측정되었으며, 마우스가 등반이나 수영을 멈추고 물 표면 위에 머리를 유지하기 위해 떠 다니는 시간이 기록되었습니다. 강제 수영 테스트는 화상 부상 후 7 일째에 수행되었습니다. 평가는 Burn+Acetaminophen 투여 후 1 h, 및 Burn 그룹에서 식염수 처리 후 1 h를 수행하였다. 실험은 이전 연구23,24에 기재된 방법에 따라 수행되었다.

5. 정상적인 운동 기능의 측정

참고 : 화상 손상 후 비정상적인 운동 기능을 구별하기 위해 로타로드 테스트가 수행되었습니다.

  1. 쥐를 행동 시험실로 데려와 시험 전에 적어도 30 분 동안 순응하십시오. 강제 수영 테스트를 수행하는 동안 수술 가운, 장갑 및 마스크를 착용하십시오.
  2. 동물을 장치의 바닥 위 16cm 위에 현탁된 롤링 원통형 플랫폼 (폭 5.7cm; 직경 3cm) 위에 놓습니다.
  3. 각 동물이 화상 부상을 입기 전에 적어도 5 일 동안 로타로드에서 하루에 한 번 훈련하도록하십시오.
  4. 약물 투여 후 2 시간 동안 20 분마다 로타로드 테스트를 수행하십시오. 컷오프 시간을 2분으로 설정합니다.
  5. 마우스가 회전하는 막대에서 떨어지지 않고 분당 15회전의 일정한 속도로 달리는 시간을 측정합니다.
    참고: 로타-로드 시험은 화상 부상의 유도 후 7일 후에 수행되었다. 평가는 Burn+Acetaminophen 투여 직후 및 Burn 군에서 식염수 처리 직후에 수행되었다. Alfaxalone은 이 시험에서 실험적으로 처리된 약물에 대한 양성 대조군으로 사용되었다. 로타로드 테스트 동안, 마우스가 떨어지지 않고 회전하는 막대에서 달리는 시간이 측정됩니다. 실험은 이전 연구22,25에 기재된 방법에 따라 수행되었다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

동물의 고통을 최소화하고 Three Rs (대체, 감소 및 정제) 지침에 따라 사용되는 동물의 수를 줄이기 위해,이 연구는 예비 실험을 통해 확립 된 중요한 데이터의 수집을위한 최소 수의 동물로 설계되었습니다. 본 연구에서, 행동 실험은 독립적으로 다음과 같이 두 번 수행되었다. 보행 분석, 기계적 동종 다량체 및 우울증 유사 행동 시험을 대조군 (n = 5), 화상 (n = 7; 비히클 대조군; 식염수) 및 화상 + 아세트 아미노펜 (n = 7) 그룹으로 수행하였다. 로타로드 시험에서, 대조군 (n=3), 화상 (n=4; 비히클 대조군; 식염수), 화상 + 아세트아미노펜 (n=4), 양성 대조군 (n=4; Alfaxalone) 그룹이 설계되었다. Alfaxalone은 현재 수의학에서 주사 가능한 전신 마취 유도제로 사용되는 신경 활성 스테로이드 및 마취제의 일종입니다. 이 연구에서, alfaxalone은 화상 유도를 위한 동물 마취에 사용되었고, 로타-로드 시험에서 운동 장애에 대한 양성 대조군 약물로 사용되었다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

스케일링 화상은 가열 된 액체에 의해 발생하는 열 화상의 일종입니다. 대부분의 경우 첫 번째 또는 두 번째 정도의 화상이 발생하지만 열원과의 장기간 접촉으로 인해 세 번째 정도의 화상이 발생할 수 있다고 제안되었습니다26. 본 연구에서, 화상 손상은 마우스의 오른쪽 뒷발을 3초동안 65°C에서 뜨거운 물에 노출시켜 4,26을 유도하였다. 화상 손상 발에서 조직 손상이 검출되었으며, 이는 발적, 피부 벗겨짐 및 붓기와 같은 화상의 일반적인 증상을 보여줍니다 (보충 그림 1)4.

기계적 이질통 측정은 동물 통증 모델에서 일반적으로 사용되는 통증 반응 식별 방법이며, 본 연구에서 von-Frey 필라멘트를 사용하여 측정되었다. 폰 프레이 필라멘트를 사용한 오름차순 자...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개 할 것이 없습니다.

감사의 글

본 연구는 충남대학교와 한국연구재단(NRF) 정부가 지원하는 지원금(NRF-2019R1A6A3A01093963 및 NRF-2021R1F1A1062509)의 지원을 받았다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
1 mL 주사기BD307809
1.5 mL 튜브AxygenMCT-150-C
50 mL 튜브SPL50050
아세트아미노펜 BioXtra, ≥ 99.0%Sigma-AldrichA7085-100G이 진통제는 양성 대조군으로 사용됩니다.
Alfaxan multidose (Alfaxalone)JUROX Pty.Limited본 실험에서 이 물질은 동물 마취에 사용되었으며, rota-rod test에서 실험적으로 처리된 약물에 대한 양성 대조군으로 사용되었습니다.
CatWalk 자동 보행 분석 시스템NoldusCatWalk XT보행 분석은 감각 운동 기능 장애가 있는 모델의 사지 움직임 및 위치 변화를 연구하는 데 사용됩니다
OPTISHIELD(Cyclosporin ophthalmic ointment)Ashish Life Science이 물질은 마취 유도 후 각막 건조를 방지하기 위한 연고로 사용되었습니다.
플렉시글라스 실린더SCITECH KOREA강제 수영 테스트에 사용되는맞춤형 제품
Rota-rod systemSCITECH KOREA가속 로타로드Motor Function
von Frey 필라멘트North Coast MedicalNC12775Mechanical Allodynia
WaterbathCHANGSHIN SCIENCE C-WBE화상 부상 유도에 사용
Normal 측정에 사용 측정에 사용

참고문헌

  1. Peck, M. D. Epidemiology of burns throughout the World. Part II: intentional burns in adults. Burns. 38 (5), 630-637 (2012).
  2. Tracy, L. M., Cleland, H. Pain assessment following burn injury in Australia and New Zealand: Variation in practice and its association on in-hospital outcomes. Australasian Emergency Care. 24 (1), 73-79 (2021).
  3. Montgomery, R. K. Pain management in burn injury. Critical Care Nursing Clinics of North America. 16 (1), 39-49 (2004).
  4. Kang, D. W., Choi, J. G. Bee venom reduces burn-induced pain via the suppression of peripheral and central substance P expression in mice. Journal of Veterinary Science. 22 (1), 9(2021).
  5. Abdi, S., Zhou, Y. Management of pain after burn injury. Current Opinion in Anaesthesiology. 15 (5), 563-567 (2002).
  6. Ullrich, P. M., Askay, S. W. Pain, depression, and physical functioning following burn injury. Rehabilitation Psychology. 54 (2), 211-216 (2009).
  7. Patwa, S., Benson, C. A. Spinal cord motor neuron plasticity accompanies second-degree burn injury and chronic pain. Physiological Reports. 7 (23), 14288(2019).
  8. Michaelides, A., Zis, P. Depression, anxiety and acute pain: links and management challenges. Postgraduate Medicine. 131 (7), 438-444 (2019).
  9. Doan, L., Manders, T., Wang, J. Neuroplasticity underlying the comorbidity of pain and depression. Neural Plasticity. 2015, 504691(2015).
  10. Vachon-Presseau, E., Centeno, M. V. The emotional brain as a predictor and amplifier of chronic pain. Journal of Dental Research. 95 (6), 605-612 (2016).
  11. Apkarian, A. V., Baliki, M. N. Predicting transition to chronic pain. Current Opinion in Neurology. 26 (4), 360-367 (2013).
  12. Yin, W., Mei, L. A Central amygdala-ventrolateral periaqueductal gray matter pathway for pain in a mouse model of depression-like behavior. Anesthesiology. 132 (5), 1175-1196 (2020).
  13. Deng, Y. T., Zhao, M. G., Xu, T. J. Gentiopicroside abrogates lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior in mice through tryptophan-degrading pathway. Metabolic Brain Disease. 33 (5), 1413-1420 (2018).
  14. Zhang, G. F., Wang, J. Acute single dose of ketamine relieves mechanical allodynia and consequent depression-like behaviors in a rat model. Neuroscience Letters. 631, 7-12 (2016).
  15. Edwards, R. R., Smith, M. T. Symptoms of depression and anxiety as unique predictors of pain-related outcomes following burn injury. Annals of Behavioral Medicine. 34 (3), 313-322 (2007).
  16. Pincus, T., Vlaeyen, J. W. Cognitive-behavioral therapy and psychosocial factors in low back pain: directions for the future. Spine. 27 (5), 133-138 (2002).
  17. Laumet, G., Edralin, J. D. CD3(+) T cells are critical for the resolution of comorbid inflammatory pain and depression-like behavior. Neurobiology of Pain. 7, 100043(2020).
  18. Zimmermann, M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain. 16 (2), 109-110 (1983).
  19. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 284(2017).
  20. Scholz, J., Broom, D. C. Blocking caspase activity prevents transsynaptic neuronal apoptosis and the loss of inhibition in lamina II of the dorsal horn after peripheral nerve injury. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 25 (32), 7317-7323 (2005).
  21. Kang, D. W., Choi, J. G. Automated gait analysis in mice with chronic constriction injury. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (128), e56402(2017).
  22. Kang, D. W., Moon, J. Y. Antinociceptive profile of levo-tetrahydropalmatine in acute and chronic pain mice models: Role of spinal sigma-1 receptor. Scientific Reports. 6, 37850(2016).
  23. Huang, W., Chen, Z. Piperine potentiates the antidepressant-like effect of trans-resveratrol: involvement of monoaminergic system. Metabolic Brain Disease. 28 (4), 585-595 (2013).
  24. Can, A., Dao, D. T. The mouse forced swim test. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (59), e3638(2012).
  25. Choi, J. G., Kang, S. Y. Antinociceptive effect of Cyperi rhizoma and Corydalis tuber extracts on neuropathic pain in rats. Korean Journal of Physiology & Pharmacology. 16 (6), 387-392 (2012).
  26. Mosby's. Mosby's Dictionary of Medicine, Nursing & Health Professions - Seventh edition, Nursing Standard. 20 (22), RCN Publishing Company Ltd. 36(2006).
  27. Vandeputte, C., Taymans, J. M. Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders. BMC Neuroscience. 11, 92(2010).
  28. Isvoranu, G., Manole, E. Gait analysis using animal models of peripheral nerve and spinal cord injuries. Biomedicines. 9 (8), 1050(2021).
  29. Yankelevitch-Yahav, R., Franko, M. The forced swim test as a model of depressive-like behavior. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (97), e52587(2015).
  30. Yan, H. C., Cao, X. Behavioral animal models of depression. Neuroscience Bulletin. 26 (4), 327-337 (2010).
  31. Papp, M., Willner, P. An animal model of anhedonia: attenuation of sucrose consumption and place preference conditioning by chronic unpredictable mild stress. Psychopharmacology. 104 (2), 255-259 (1991).
  32. Seminowicz, D. A., Laferriere, A. L. MRI structural brain changes associated with sensory and emotional function in a rat model of long-term neuropathic pain. Neuroimage. 47 (3), 1007-1014 (2009).
  33. Yalcin, I., Barthas, F. Emotional consequences of neuropathic pain: insight from preclinical studies. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 47, 154-164 (2014).
  34. Choi, J. W., Kang, S. Y. Analgesic effect of electroacupuncture on paclitaxel-induced neuropathic pain via spinal opioidergic and adrenergic mechanisms in mice. American Journal of Chinese Medicine. 43 (1), 57-70 (2015).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

화상 부상 모델통증 평가마우스 행동 테스트폰 프레이 검사보행 분석강제 수영 테스트로타로드 테스트기계적 이질통아세트아미노펜 처리