형광-활성화된 세포 분류-방사성 신호의 세포 기원을 결정하기 위한 방사성리간드 처리조직(FACS-RTT)

알츠하이머 병 (AD)과 같은 신경 퇴행성 질환은 증상 증가와 관련된 신경 세포 손실을 특징으로합니다. 치매의 가장 흔한 원인 인 AD는 사례의 60 % -70 %를 차지하며 전 세계 약 5 천만 명의 사람들에게 영향을 미칩니다¹. 신경 병리학 적 수준에서 AD의 두 가지 주요 특징은 세포 외 아밀로이드 β (Aβ) 플라크와 세포 내 타우 신경 세동 엉킴의 축적입니다. 신경교 세포 변화는 또한 AD² 및 여러 신경 전달 물질 시스템 ^3,4의 가능한 파괴와 관련이 ^있습니다.

TgF344-AD 래트 라인은 인간 APP 및 PS1_ΔE9 전이유전자를 발현함으로써 AD를 모델로 변형시켜 가용성 및 불용성 Aβ-40 및 Aβ-42 발현 및 아밀로이드 플라크 형성⁵를 유도하였다. 또한 타우병증으로 이어지는 타우 단백질의 과인산화 형태의 축적을 제시한다. 9-24 개월의 나이부터, 쥐는 점차적으로 AD의 병리학 적 특징과인지 장애 5,6,7,8,9를 개발합니다.

양전자 방출 단층 촬영 (PET), 단일 광자 방출 컴퓨터 단층 촬영 (SPECT) 및 자기 방사선 촬영은 γ선의 방출 및 정량화에 기반한 기술입니다. 방사성 추적기는 생체 내 (PET 및 SPECT) 또는 생체 외 / 시험관 내 (자기 방사선 촬영)에서 정량화됩니다. 이러한 민감한 기술은 AD와 같은 여러 뇌 질환의 메커니즘에 대한 이해에 기여했습니다. 실제로, 신경 염증의 관점에서, [11 C]-(R)-PK11195 또는 [¹¹C]PBR28과 같은 방사성 표지 추적기를 갖는 생체내 신경염증 마커인 18 kDa 트랜스로케이터 단백질 (TSPO)을 평가하는 많은 연구가 있다 (검토를 위해¹⁰ 참조). 또한, 신경 전달 물질 시스템의 변화는 방사성 추적기^11,12,13을 사용하여 연구되었습니다.

그러나, 이러한 기술들은 방사성 신호의 세포 기원을 결정하지 않는다. 이것은 PET/SPECT에서 방사성 리간드의 결합의 변경에 대한 생물학적 토대에 대한 해석을 방해할 수 있다. 예를 들어, 신경 염증에 대한 TSPO 연구의 경우, TSPO의 증가 또는 감소가 성상세포 또는 미세 아교 변화로 인한 것인지 여부를 이해하는 것이 가장 중요합니다. 방사성리간드 처리된 조직으로의 형광-활성화 세포 분류(FACS-RTT) 기술은 이러한 문제를 해결하기 위해 개발되었으며, 이를 통해 모든 세포 유형에서 방사성리간드 결합을 개별적으로 평가하고 세포당 표적 단백질 밀도를 정량화할 수 있습니다. 이 혁신적인 기술은 결과적으로 보완적이며 PET 및 SPECT 이미징과 매우 호환됩니다.

여기에서이 기술은 TSPO 특이적 방사성 리간드를 사용한 신경 염증 연구와 세로토닌성 시스템을 평가하는 두 축을 따라 적용되었습니다. 첫 번째 축에서, 목표는 급성 염증 반응에 반응하여 TSPO 신호의 세포 기원을 이해하는 것이 었습니다. 따라서, FACS-RTT는 리포폴리사카라이드(LPS) 주사를 통해 신경염증을 유도한 후 생체내 [¹²⁵I]CLINDE SPECT 이미징 연구를 통해 래트의 뇌 조직에 사용되었다. 또한, 동일한 이미징 및 FACS-RTT 프로토콜이 12개월 및 24개월령의 TgF344-AD 래트 및 매칭된 야생형(WT) 래트에 적용되었다. 두 번째 축은 세포 유형별 생체외 5-HT2A R 밀도 평가를 통해 이러한 래트 모델에서 세로토닌성 시스템 변경의기원을 결정하는 것을 목표로 하였다.

모든 실험 절차는 제네바 광저우의 인간 및 동물 실험 윤리위원회, 연구 윤리를위한 광저우위원회 (CCER) 및 제네바 광저우 건강 (스위스)의 일반 방향과 각각 합의하여 수행되었습니다. 데이터는 동물 연구: 생체 내 실험(ARRIVE) 지침 보고에 따라 보고됩니다.

1. SPECT 카메라 준비 및 보정

1. 카메라를 켜고 운영 소프트웨어를 로드 합니다(자료 표 참조). 홈 XYZ 스테이지 버튼을 클릭하여 호밍을 수행합니다.
2. 하나의 10분 스캔 획득으로 구성된 실험을 설정합니다. 스 텝 모드를 Fine 으로 설정하고 획득 모드를 Listmode 로 설정합니다(전체 방출 스펙트럼을 기록하기 위해).
3. 침대를 설치하고 온난화 시스템, 호흡 센서 및 마취가 기능적이고 안전한지 확인하십시오 (그림 1A-D). 이어서, 동물의 머리가 위치될 팬텀(즉, 2 mL 마이크로퍼지 튜브에 알려진 농도의 ¹²⁵I의 2 mL)을 배치한다(영역 중심, 도 1E).
4. 화면 하단에 있는 세 개의 이미지를 사용하여 세 차원의 커서를 밀어 스캔 영역을 설정합니다. 팬텀과 동물의 스캔 볼륨이 동일한지 확인하십시오.
5. 1.2-1.4단계에서 설정된 파라미터로 후속 교정을 위해 팬텀 스캔을 시작합니다.

2. SPECT 이미징을 위한 작업 공간 설정

1. 소독제 virucide로 작업 공간을 청소하고 모든 표면에 부드러운 종이를 놓습니다.
2. 각각의 탱크에 이소플루란과 산소가 충분한지 확인하십시오.
3. 나비 카테터의 지느러미를 잘라 쥐 꼬리 정맥을보다 명확하게 볼 수 있도록 24G 카테터를 준비하십시오.
4. 바늘을 제거한 후 헤파린 용액 (25000 U / mL)으로 카테터를 완전히 채워서 카테터를 코팅하십시오. 그런 다음 카테터 삽입 후 혈전 형성을 피하기 위해 바늘을 다시 넣으십시오.

3. [¹²⁵I]CLINDE 방사성 추적기 합성

주의: 방사능은 살아있는 세포의 원자에 영향을 미치고 유전 물질 (DNA)을 손상시키기에 충분한 이온화 에너지를 가질 수 있습니다.

1. 방사능과 관련된 실험을 위해 승인 된 적절한 환경에서 작업하십시오.
   참고: 손가락과 신체 선량계를 포함한 방사능 처리를 위해 적절한 개인 보호 장비(PPE)를 착용하십시오. 방사능의 모든 소스에서 안전한 거리에 머물러보십시오.
2. 100 μL의 트리부틸린 전구체 100 μg을 요오드화나트륨(^Na125I)( 물질표 참조) 및 5 μL의 37% 과아세트산과 함께 70°C에서 20분 동안 글로브 박스에 위치된 열순환기에서 인큐베이션한다.
3. 500 μL의 부피에 도달하기 위해 물에 50% 아세토니트릴(ACN)을 사용하여 반응을 희석한다. 희석된 반응물 500 μL를 역상 컬럼 상에 주입 한다(표 참조).
4. 10분 동안 7 mM_H3PO4중의 5%-95% ACN으로부터 실행되는 선형 구배 HPLC로 [^125I]CLINDE를 단리한다. 단리물을_H2O로 희석하여 최종 부피 10 mL를 달성한 다음, 희석된 반응을 농축 컬럼 상에 주입한다(표 참조).
5. 컬럼으로부터 [^125I]CLINDE를 300 μL의 무수 에탄올로 에루팅하고, 이어서 이를 RT에서 진공 원심분리기에서 40분 동안 인큐베이션함으로써 에탄올을 증발시켰다.
6. [^125I]CLINDE를 함유하는 잔류물을 300 μL의 멸균 염수에 희석하여 원액을 생성한다.
7. 방사능을 측정한 후, 원액을 멸균 식염수에 희석하여 500 μL의 0.037 MBq의 용액을 얻었다.
8. 트레이서를 HPLC (고성능 액체 크로마토그래피)로 정제하십시오. 450 nm에서의 표준 교정을 사용하여 용출 시간을 결정하고, 단일 방사성 피크를 분리한다. 냉(비방사성) CLINDE(50% ACN의 용액 중 400 μL에서 0.1 μg, 0.5 μg, 0.75 μg, 1 μg, 1.5 μg, 2 μg, 및 5 μg)의 7가지 표준 농도를 사용하여 표준 검량선을 수행한다. 무선 TLC(박층 크로마토그래피)에서 단일 피크를 측정하여 방사화학적 순도를 확립한다. 방사성 화학 물질의 순도가 60 % 이상인지 확인하십시오.
9. 450 nm에서 자외선 흡광도를 측정하는 방사성 리간드의 특정 활성과 콜드 참조 화합물로 확립 된 보정 곡선을 확인하십시오. 특정 활동이 1000GBq/μmol보다 큰지 확인하십시오.

4. [¹²⁵I]R91150 방사성 추적기 합성

참고: CLINDE 합성 섹션에서 언급한 것과 동일한 보안 규칙을 따라야 합니다.

1. 3 μL의 무수 에탄올, 3 μL의 빙초산, 15 μL의 담체가 없는 Na125I(물질 표 참조)(10 mCi)의 용액에 300 μg의 ^R91150전구체를 0.05 M NaOH 및 3 μL의 30%_H2O2의 용액에 혼합한다. 글러브 박스에서 30 분 동안 배양하십시오.
2. 전체 반응을 역상 컬럼에 주입 하십시오 (재료 표 참조).
3. 3 mL/min의 유속으로 등용매 HPLC 실행 (ACN/물 50/50, 10 mM 아세트산 완충액)에 의해 [¹²⁵I]R91150을 분리한다.
4. 10 mL의 최종 부피^에대해 H2O에 [_125I]R91150을 희석한다.
5. 희석된 반응물 10 mL를 농축 컬럼에 주입 한다(표 참조).
6. 컬럼으로부터 [^125I]R91150을 300 μL의 무수 에탄올로 분리한다.
7. 에탄올을 증발시켜 이를 40분 동안 RT에서 진공 원심분리기에서 인큐베이션한다.
8. [^{125I]R91150을}함유하는 잔류물을 300 μL의 식염수에 희석한다.
9. HPLC로 추적기를 정화하십시오. 450nm에서 표준 교정을 사용하여 용출 시간을 결정하고 단일 방사성 피크를 분리하십시오. 무선 TLC에서 단일 피크를 측정하여 방사화학적 순도를 확립한다. 방사성 화학 물질의 순도가 98 % 이상인지 확인하십시오.

5. 동물 준비

1. TgF344-AD 래트(남성 또는 암컷, 2-24개월령부터)를 3% 이소플루란이 있는 유도 챔버에서 계량하고 마취시킨다. 일단 깊이 마취되면, 이소플루란 유동을 챔버 내에서 2%(0.4 L/min, 100% O2)로 낮춘다.
2. 마취 노즈콘이 장착 된 미리 따뜻해진 침대에 동물을 놓습니다. 이소플루란을 2%(0.4L/min, 100%_O2)로 유지하십시오.
3. 동물의 눈에 아이 젤 윤활제를 바르고 호흡 모니터링을 통해 마취의 깊이를 확인하십시오. 필요한 경우 마취를 조정하십시오.
4. 꼬리 정맥에 24G 카테터 삽입을 수행하십시오.

6. 스펙트 획득

1. 동물을 38°C로 설정된 온도 조절 가열 패드가 장착된 카메라 침대로 옮깁니다(그림 1E).
2. 동물의 머리를 물린 막대에 고정시키고 머리 지지대를 고정하십시오.
3. 1분의 60프레임을 구성하는 60분 스캔에서 실험을 설정합니다. 1단계에서 설정한 다른 모든 매개 변수를 다시 사용합니다. 이미지 업데이트 버튼을 클릭하여 동물 위치를 업데이트 하십시오.
4. 세 가지 차원에 대한 화면 하단 부분에 있는 세 개의 이미지의 도움으로 커서를 밀어 스캔 영역을 설정합니다.
5. 500 μL의 방사성 방사성 추적기 ([125 I]CLINDE 또는 [¹²⁵I]R91150)를 주입한 다음, 300 μL의 멸균 0.9% NaCl로 튜브를 플러시한다. 동시에 획득 시작을 클릭하여 스캔을 시작하십시오.
6. 스캔 시간 동안 호흡률 모니터링을 통해 동물을 일정한 마취하에 유지하십시오. 필요한 경우 이소플루란의 흐름을 조정하십시오.
7. 스캔이 끝나면 마취 된 동물을 목이 잘려 신속하게 안락사시킵니다.

7. 스캔 재구성

1. 스캔 재구성 소프트웨어( 재료 표 참조)를 연 다음 데이터 세트를 열고 스캔 폴더에 생성된 [filename].parameters 파일을 찾습니다.
2. 관심 있는 동위원소를 선택합니다. Listmode 매개 변수는 이 단계에서 여러 동위원소 선택을 허용합니다.
3. 0.4mm Voxel 크기, 4개(POS-EM) 서브세트, 6회 반복(24ME-EM 환산), 사후 필터 없음 및 해당 붕괴 보정에 해당하는 동위원소 매개변수를 선택합니다. NIfTI에 대한 출력 형식을 선택한 다음 SPECT 재구성 시작 을 선택합니다.

8. 쥐 뇌 추출

1. 주사 절차와 동일한 마취 사건에서 호흡 속도를 모니터링하여 동물의 깊은 마취 상태를 확인한 후 단두대에 의한 감금으로 진행하고 머리를 해부 벤치로 신속하게 옮깁니다.
2. 가위로 머리 꼭대기의 피부를 뒤쪽에서 앞쪽으로 조심스럽게 자르고 눈 가운데까지 자릅니다.
3. 두개골 기저부와 자궁 경부 척추 주위의 과도한 근육을 차단하십시오.
4. 다음으로, 두개골 뒤쪽의 구멍에 가위의 칼날 하나, foramen magnum을 조심스럽게 놓고 수술 펜치로 두개골의 뒷부분을 제거하십시오.
5. 그런 다음 외과 용 펜치로 두개골의 윗부분을 조심스럽게 제거하십시오. 오래된 수컷 쥐의 두개골은 두껍고 뇌 손상을 피하기 위해 작은 조각으로 제거 할 수 있습니다.
6. 조심스럽게 가위로 수막을 자르십시오. 수막은 추출 과정에서 뇌를 손상시킬 수 있습니다. 예방 조치로 제거하십시오.
7. 두개골의 윗부분을 제거한 후 동물의 머리를 돌리고 작은 평평한 주걱으로 시신경과 삼차 신경을 절단하여 조심스럽게 뇌를 당겨 내십시오.
8. 얼음 위에서 해부를 위해 뇌를 평평하고 깨끗한 유리 표면에 조심스럽게 옮기십시오.
9. 평평한 금속 주걱과 면도날을 사용하여 뇌의 관심 영역을 해부하십시오. 조직을 2 mL 원심분리 튜브에 넣고 얻은 조직을 칭량한다. 세포 분리를 위해 뇌 섹션을 직접 사용하거나 나중에 사용할 수 있도록 액체 질소에서 신속하게 동결하십시오.

9. 세포 분리

1. 깨끗하고 멸균 된 환경에서 작업하십시오. 클래스 II 생물 안전 캐비닛 (BSC)에서 일하는 것이 좋습니다. 장갑과 BSC에 도입된 모든 장비가 멸균되어 있는지 확인하십시오.
2. 세포 분류를 위해 세포를 준비하려면 Jaclyn M. Schwarz¹⁴의 프로토콜을 따르십시오.
   참고: 이 실험에서는 시판되는 신경 해리 키트( 표 참조)를 세포 준비에 사용했습니다.
   1. 샘플을 1 mL의 HBSS (Ca- 및 Mg-free)가 있는 2 mL 원심분리 튜브에 넣고, 원심분리 (300 x g, 2 분, 실온 = RT)하고, 펠렛을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다.
   2. 1900 μL의 효소 믹스-1을 첨가하고, 이를 37°C에서 15분 동안 인큐베이션하면서 매 5분마다 역전시킴으로써 튜브를 교반시킨다.
   3. 30 μL의 효소 믹스-2를 첨가하고, 피펫 1( 물자의 표 참조)로 30회 앞뒤로 부드럽게 교반한다. 이어서, 37°C에서 15분 동안 인큐베이션하면서 매 5분마다 역전시켜 튜브를 교반시킨다.
   4. 피펫 2와 앞뒤로 부드럽게 혼합한 다음, 피펫 3을 37°C에서 10분 동안 인큐베이션하기 전에 조직을 해리시킨다.
   5. 세포를 80 μm 세포 스트레이너로 여과하고, 10 mL의 HBSS (Ca- 및 Mg-free)를 첨가한다. 원심분리 (300 x g, 10 분, RT) 펠렛을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다.
   6. 미엘린 고갈을 위해, 펠렛을 400 μL의 미엘린 제거 완충액 (물질 표 참조)으로 재현탁시킨 다음, 100 μL의 미엘린 제거 비드 (물질 표 참조)를 첨가한 다음, 4°C에서 15분 동안 인큐베이션한다.
   7. 미엘린 제거 완충액 5 mL를 원심분리기(300 x g, 10분, RT)에 첨가하고, 펠렛을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다.
   8. 500 μL의 미엘린 제거 버퍼를 추가하고 튜브를 자기장 컬럼에 넣으십시오. 컬럼을 미엘린 제거 완충액 1 mL로 네 번 세척한다.
   9. 원심분리 (300 x g, 2 분, RT) 펠릿을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다. 세포를 해리시키기 위해 잠깐 (2 초) 소용돌이 치고, 5 μL의 Fc 블록 CD32를 첨가한다. 다시 소용돌이 4°C에서 5분 동안 인큐베이션한다.
   10. 관심있는 일차 항체의 혼합물 중 100 μL를 첨가하는 단계; 4°C에서 20분 동안 인큐베이션한다.
   11. 원심분리기(350 x g, 5분, 4°C)를 통해 펠렛을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다. 튜브를 부드러운 종이에 거꾸로 닦으십시오.
   12. 짧은 와류 (2 s) 후에, 100 μL의 2차 항체 믹스를 첨가하고, 4°C에서 15분 동안 인큐베이션한다.
   13. 미엘린 제거 완충액 2 mL를 원심분리기(350 x g, 5분, 4°C)에 첨가하고, 펠렛을 방해하지 않고 상층액을 제거하였다. 튜브를 부드러운 종이에 거꾸로 닦으십시오. 세포를 250 μL의 멸균 PBS에 재현탁시키고 세포 분류를 직접 진행한다.

10. 셀 정렬

1. 분류된 세포를 수집하기 위한 500 μL의 멸균 PBS로 마이크로퍼지 튜브를 준비한다.
2. 세포 용액 1000 μL 당 10 μL의 Hoechst를 첨가하여 살아있는 세포의 핵을 색칠하고 죽은 세포와 구별하십시오.
3. 가능한 한 빨리 세포를 4°C의 세포 선별기로 옮긴다.
4. 먼저 세포를 전방 및 측면 산란으로 정렬 한 다음 Hoechst 양성 세포를 정렬합니다. 다음으로, 관심있는 항체에 기초하여 세포를 정렬한다. 양성으로 염색된 세포를 별도로 수집한다. 양성 세포와 자기 형광 세포를 구별하십시오.
5. 각 관심 풀에 대해 정렬된 셀 수를 계산합니다.

11. 감마 카운팅

1. γ 계수 시스템을 SPECT 교정에 사용된 것과 동일한 팬텀 용액 10μL로 교정하되 1mL의 물에 희석합니다.
   참고: 팬텀 용액은 γ 계수 시스템의 정밀도가 향상되었기 때문에 희석됩니다.
2. 정렬 된 세포의 튜브를 γ 계산 시스템에 놓고 제조업체의 프로토콜에 따라 γ 계산을 진행하십시오.

WT 래트는 일방적 LPS 주사 후 [125I]CLINDE 방사성추적기를 사용한 생체내 SPECT 스캔을 경험하였다(도 2). 이 스캔 (방사선 추적기 주사 후 45-60 분의 이미지로부터의 합산 데이터 사용)은 뇌의 대측성 영역에서보다 LPS 주사 부위 (도 2A)에서 [125I]CLINDE의 더 높은 결합을 보였다 (도 2B). FACS-RTT를 시행한 생체외 샘플은 이러한 결과를 확인하고 미세아교세포에서만 더 많은 수의 [125I]CLINDE 결합 부위의 존재를 밝혀냈으며, 이는 뇌의 동측성 측에서 [125I]CLINDE 신호의 세포 기원이 미세아교세포였음을 보여준다(도 3A)15.

동일한 [125I]CLINDE 방사성추적기를 사용하여, 프로토콜을 이어서 오래된 TgF344-AD 래트(12개월 및 24개월령)의 해마에서 수행하고 24개월된 WT와 비교하였다. 결과는 TgF344-AD 래트에서 12개월째에 TSPO 결합의 증가가 성상세포로 제한된다는 것을 입증하였다. 24개월 된 래트에서, TSPO 결합의 증가는 성상세포 및 미세아교세포 변화 둘 다에 기인하였다(도 3B). 결과는 성상세포에서의 TSPO 과발현이 아마도 미세아교세포 이전에 관찰된다는 것을 보여주었다. 독립적으로, 방사성추적자[125I]R91150을 사용하여, 이 기술은 더 오래된 TgF344-AD 래트에서, 삼중항 성상세포가 WT와 비교했을 때 감소된5HT2AR 밀도를 나타냈다는 것을 보여주기 위해 세포 규모에서 사용되었다(도 3C)16.

마지막으로, FACS-RTT를 인간 AD 사후 샘플에 대해 수행하였다. 해리 후, 세포를 FACS 절차 및 염색 전에 [125I]CLINDE와 함께 인큐베이션하였다. 이것은 연령 일치 대조군과 비교하여 AD 피험자의 성상세포 및 미세아교세포 둘 다에서 TSPO의 피질 과발현을 발견하는 것을 허용하였다 (도 3D).

그림 1: SPECT 카메라 설정. (A) SPECT 카메라 전체 프레젠테이션. (B) 히터 및 호흡률 모니터링을 통한 침대 프리젠 테이션. (C) 마취 튜브 플러그. (D) 가열 침대 및 호흡 프로브 소켓. (E) 소프트웨어에서 팬텀 포지셔닝 모니터링보기. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2: [125I]CLINDE 방사성추적기를 사용한 SPECT를 이용한 TSPO 뇌 영상. 대표적인 이미지([125I]CLINDE)의 주사 후 해마의 (A) LPS 또는 (B) 식염수 주사 후 뇌의 동측성(백색) 및 대측방(적색) 측에서의 주사 후 45-60분. 생체내 시간-관심 부피에서 측정된 활성 곡선은 오른쪽 패널에 표시된다. 스펙트: 단일 광자 방출 컴퓨터 단층 촬영; TSPO: 트랜스로케이터 단백질; LPS: 리포폴리사카라이드. n = 조건 당 7 마리의 동물. 이 수치는 Tournier et al.15에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

도 3: TSPO 및 5HT2A R. (A) LPS의 일방적 뇌 주사 후 TSPO 과발현의 세포 기원의 정량화. 방사능은 주사의 대측성 (회색, n = 7) 및 동측성 (녹색, n = 7) 측의 각 세포 집단에서 측정되었다 (조직의 % 주입 용량 / g). 사용 된 통계 테스트 : 쌍을 이룬 t- 테스트. (b) 오래된 TgF344-AD 래트에서의 TSPO. [125I]CLINDE 농도 (조직의 % 주입 용량 / g)는 24 개월 된 야생형 동물 (회색, n = 9) 및 12- (녹색, n = 8) 및 24 개월 된 (보라색, n = 7) TgF344- AD 래트에서 결정되었습니다. 사용 된 통계 테스트 : 양방향 ANOVA. (c) 5HT2A R은 오래된 TgF344-AD 래트에서 선조체의 성상세포에서 감소된다. [125I]R91150 농도는 WT (회색, n = 7) 및 오래된 TgF344-AD (녹색, n = 11) 래트의 세포 수준 (% 주사 용량 / 세포)에서 성상 세포 및 미세 아교세포에서 결정되었습니다. 통계 테스트 사용 : 단방향 ANOVA. (D) 알츠하이머병(AD)에서 전두엽 피질에서 TSPO 과발현의 세포 출처. 각 세포 집단에서, 방사능은 AD 피험자 (녹색, n = 9) 및 대조군 (회색, n = 9)에서 측정된다 (조직의 % 주사량 / g). 사용 된 통계 테스트 : 페어링되지 않은 t- 테스트. 모든 데이터는 다음의 주석과 함께 평균 ± 95% CI로 표현된다: * p < 0.05, **p < 0.01, *** p < 0.001. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.