Summary

고함량 스크리닝 및 분석 응용을 위한 구상체의 대규모 생산을 위한 강력한 방법

Published: December 28, 2021
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Summary

이 프로토콜은 대규모 고함량 스크리닝 및 분석에 적합한 방식으로 세 가지 유형의 구상체를 생산하는 방법을 자세히 설명합니다. 또한, 이들이 스페로이드 및 개별 세포 수준에서 어떻게 분석될 수 있는지를 보여주는 예들이 제시된다.

Abstract

고함량 스크리닝 (HCS) 및 고함량 분석 (HCA)은 연구자들에게 세포에서 대규모 정량적 표현형 측정을 추출 할 수있는 능력을 제공하는 기술입니다. 이 접근법은 세포 생물학에서 근본적인 사건과 적용된 사건의 광범위한 범위에 대한 우리의 이해를 깊게하는 데 강력한 것으로 입증되었습니다. 현재까지이 기술에 대한 대부분의 응용 프로그램은 단층에서 자란 세포의 사용에 의존해 왔지만 그러한 모델이 조직에서 발생하는 많은 상호 작용 및 과정을 재검토하지 않는다는 것이 점점 더 실현되고 있습니다. 이와 같이, 구상체 및 오가노이드와 같은 3차원(3D) 세포 어셈블리의 개발 및 사용에 있어서 출현이 있었다. 이러한 3D 모델은 암 생물학 및 약물 전달 연구의 맥락에서 특히 강력하지만, HCS 및 HCA에 적합한 재현 가능한 방식으로 생산 및 분석하는 것은 많은 도전 과제를 제시합니다. 여기에 상술된 프로토콜은 다세포 종양 구상체(MCTS)의 생성을 위한 방법을 설명하고, HCS 및 HCA와 양립가능한 방식으로 세 개의 상이한 세포주에 적용될 수 있음을 입증한다. 이 방법은 웰 당 수백 개의 구상체의 생산을 용이하게하며, 스크리닝 정권에서 사용될 때 웰 당 수백 개의 구조물로부터 데이터를 얻을 수 있으며 모두 동일한 방식으로 처리 할 수 있다는 특별한 이점을 제공합니다. 고분해능 형광 이미징을 위해 구상체를 처리하는 방법과 HCA가 각 스페로이드 내의 개별 세포뿐만 아니라 스페로이드 수준에서 정량적 특징을 추출하는 방법을 자세히 설명하는 예도 제공됩니다. 이 프로토콜은 세포 생물학에서 중요한 질문의 넓은 범위에 대답하기 위해 쉽게 적용될 수 있습니다.

Introduction

전통적으로, 세포-기반 분석은 고체 기질 상에서 성장하는 단층에서 수행되었으며, 이는 효과적으로 2차원(2D) 환경으로서 고려될 수 있다. 그러나, 2D 세포 배양 모델은 일부 맥락에서 생리학적 관련성이 결여되어 세포들 사이에서 발생하는 많은 복잡한 상호작용을 복제할 수 없다는 것이 점점 더 인식되고 있다1. 3차원(3D) 세포 배양 방법은 연구자들 사이에서 빠르게 인기를 얻고 있으며, 3D 세포 모델은 조직 환경에서 세포가 직면하는 생리적 조건을 더 잘 모방할 수 있는 높은 잠재력을 보여준다2. 사용 된 3D 셀 어셈블리에는 여러 가지 유형이 있지만 가장 일반적인 두 가지 유형은 구상체와 오가노이드입니다. 구상체는 다양한 세포주에서 성장할 수 있으며, 사용되는 세포 유형과 조립 방법에 따라 다양한 모양과 크기를 채택 할 수 있습니다3. 더욱이, 구상체는 또한 이들이 암 세포주로부터 성장할 때 다세포 종양 구상체 (MCTS)로 지칭될 수 있으며, 이들 모델은 전임상 시험관내 약물 전달 및 독성 연구에 특히 사용되는 것을 발견하였다4,5. 반면에 오가노이드는 우리 몸의 조직과 장기를보다 잘 모방하는 것을 목표로하며보다 복잡한 형태 학적 배열을 채택 할 수 있습니다. 오가노이드의 생산은 성체 줄기 세포 또는 만능 줄기 세포의 사용을 포함하며, 이는 관심있는 조직 또는 기관과 유사한 적절한 세포로 재 프로그래밍 될 수 있습니다. 그들은 주로 장기의 발달을 조사하고 질병 및 숙주 – 병원체 상호 작용을 모델링하는 데 사용됩니다6.

3D 셀 어셈블리를 생성하는 데 사용되는 다양한 방법이 있습니다. 스캐폴드-기반 방법은 세포가 부착되거나 성장할 수 있는 기질 또는 지지체를 제공한다. 이러한 스캐폴드는 다양한 형상을 가질 수 있으며 다양한 상이한 재료로 만들어질 수 있다. 가장 흔한 것은 세포외 매트릭스 (ECM) 성분과 하이드로젤이며, 이들은 세포의 자연적인 세포외 환경과 유사하도록 설계되어 생리적 상호작용을 촉진한다4,7. ECM basement 물질은 Engelbreth-Holm-Swarm 마우스 육종 종양으로부터 추출되었으며, 라미닌, IV형 콜라겐 및 펄레칸8을 포함하는 ECM 성분의 풍부한 혼합물을 함유하는 것으로 나타났다. 그러나, 그것의 유리한 구성에도 불구하고, 그것의 사용에는 두 가지 주요 과제, 즉 배치 대 배치 가변성과 10 °C8,9 이하와 그 이상의 두 가지 다른 응집체 상태를 갖는다는 것이 있습니다. 대조적으로, 하이드로젤은 그 성분 및 강성에 대하여 유연하다는 장점이 있으며, 이들은 원하는 특정 3D 셀 어셈블리에 적합하도록 맞춤화될 수 있다7,10. 스캐폴드 기반 방법은 오가노이드 성장에 필수적이지만 구상체에도 널리 사용됩니다. 세포가 자라는 표면에 부착되는 것을 방지하여 작동하는 스캐폴드가없는 방법은 일반적으로 스페로이드 어셈블리와 만 호환됩니다. 예를 들어 세포를 구상체로 응집시킬 수 있는 평평한 바닥 또는 U-바닥을 갖는 초저 부착(ULA) 플레이트 또는 스피너/회전 플라스크에서 세포의 지속적인 교반 사용10이 포함됩니다.

다양한 생물학적 사건을 연구하기 위해 3D 세포 어셈블리를 사용하는 것이 빠르게 인기를 얻고 있습니다. 그러나 그들의 문화를 위해 선택된 방법이 적절하고 다운 스트림 분석 계획과 양립 할 수 있어야합니다. 예를 들어, ULA 플레이트의 사용은 높은 일관성의 구상체를 생성한다; 그러나, 이 방법은 웰 당 단일 스페로이드의 생산으로 제한되고, 따라서 처리량을 제한한다. 3D 구조물의 형광 이미징이 계획될 때 특별한 고려가 필요하다. 조립체가 성장되는 기판 또는 플레이트는 광학적으로 호환될 필요가 있으며, 사용되었을 수 있는 임의의 스캐폴드에 의해 야기되는 광산란의 영향을 최소화하기 위해 주의를 기울여야 한다11. 이 특별한 문제는 현미경 대물 렌즈의 개구수가 증가함에 따라 더욱 심각해진다.

아마도 3D 세포 모델로 작업하기 위해 선택하는 주요 이유 중 하나는 전체 어셈블리뿐만 아니라 그 안에있는 개별 세포에 대한 체적 이미징 데이터를 추출하는 것입니다. 특히 MCTS 모델은 치료제가 외부에서 중앙 세포로 어떻게 전달되는지에 대한 우리의 이해를 심화시키는 데 매우 강력하다는 것을 증명하기 시작했습니다 (종양에서 필요하기 때문에)12, 따라서 다른 층의 개별 세포로부터 지식을 얻는 것이 필수적입니다. 개별 세포로부터 정량적 정보를 추출하는 이미징 기술은 고함량 분석(HCA)이라고 불리며 스크리닝13의 맥락에서 강력한 접근 방식입니다. 현재까지 HCA는 거의 독점적으로 단층 배양에 적용되어 왔지만,이 접근법이 광범위한 세포 기능 및 과정을 연구 할 수있게 해주는 3D 배양에 적용 할 수있는 힘을 가지고 있다는 인식이 증가하고 있습니다14. 많은 수의 3D 어셈블리를 분석하여 각 구조에서 셀 수준 데이터를 제공 할 수 있다는 분명한 이점이 있습니다. 그러나 잠재적으로 두꺼운 셀 어셈블리의 이미징과 관련된 문제 및 생성 된 대규모 데이터 세트는 극복해야합니다.

이 기사에서는 96-웰 포맷으로 MCTS를 대규모로 생산하기 위한 강력한 스캐폴드 기반 방법을 제시합니다. 이 방법은 각 웰에서 수백 개의 3D 셀 어셈블리를 쉽게 생산할 수 있습니다. 실시예는 간, 폐 및 결장의 고형 종양 모델을 나타내는 세 가지 상이한 세포 유형에 대해 제시된다. 형성되는 구상체는 다양한 크기일 수 있으며, 따라서 HCA는 특정 크기 및/또는 형태학의 구조를 선택하는데 사용된다. 이 기능은 관찰 된 모든 표현형이 다른 크기의 구상체에 걸쳐 비교 될 수 있지만 모두 동일한 웰에서 동일한 방식으로 처리 될 수 있다는 추가적인 이점을 제공합니다. 이 접근법은 고해상도 이미징과 호환되며, 중요한 것은 동일한 셀룰러 어셈블리에서 세포 수준 및 하위 세포 수준의 정량적 데이터를 모두 제공하는 것입니다. 스페로이드 생산의 이러한 방법은 웰 당 단일 스페로이드를 생성하는 방법에 비해 추가적인 이점을 가지며, 각 웰에서 생산된 많은 수의 스페로이드가 전사체 및 프로테옴 프로파일링과 같은 다른 다운스트림 분석을 위해 잠재적으로 충분한 바이오매스를 제공한다는 것이다.

Protocol

1. 세포 배양 미디어 준비 세포주의 종류에 따라 특정 세포 배양 배지를 준비한다. 세포 유지를 위한 모든 배지에 10% 태아 소 혈청(FBS)이 포함되어 있는지 확인하십시오.참고: 다른 세포주는 다른 배지를 사용합니다. HT-29 결장 암종 세포 (ATCC HTB-38)는 맥코이스 5A + 10% FBS에서 성장한다. HepG2 간세포암종 세포(ATCC HB-8065)는 최소 필수 배지 + 1% L-글루타민 + 10% FBS에서 성장한다. H358 기관지 폐포 암종 세포 (ATCC CRL-5807)는 RPMI 1640 배지 + 1% L-글루타민 + 10% FBS에서 성장한다. L-글루타민과 FBS를 포함하는 모든 배지는 완전한 배지로 지칭된다. 세포를 도금하여 구상체로 성장할 때, ECM 지하실 물질의 착색을 피하기 위해 10 % FBS가있는 페놀 적색이없는 배지가 필요하며, 이는 이미징 과정에서 아티팩트를 유발할 수 있습니다. 계대 배양 세포 세포가 약 80% 합류할 때, 2mL의 트립신-EDTA(0.25% (w/v) 트립신/0.53 mM EDTA)로 간단히 세척하십시오. 트립신-EDTA를 흡인하고, 신선한 트립신-EDTA 3 mL를 첨가하고, 37°C에서 3-5분 동안 인큐베이션한다. 세포가 세포 배양 접시에서 분리되면 신선한 완전 배지 7 mL를 첨가하십시오. 세포 현탁액 1 mL를 새로운 10 cm 세포 배양 접시에 넣고 신선한 완전 배지 9 mL를 첨가하여 1:10 희석된 세포를 수득하였다. 세포를 5% CO2가 있는 가습된 인큐베이터에서 37°C에서 배양한다. 세포주에 따라 3-5일마다 세포를 계대배양한다. 2. 구상체의 생성 ECM 지하실 재료로 96웰 플레이트를 코팅하십시오. ECM 지하 재료를 얼음 위에서 하룻밤 사이에 해동하십시오. ECM basement 물질을 -20°C로 유지된 미리 냉각된 팁을 사용하여 차가운 페놀 적색 무혈청 배지에 희석한다.참고: ECM basement 물질의 최종 농도는 사용된 세포주에 따라 달라진다. HT-29 및 H358 세포의 경우 ECM 지하실 재료 4mg·mL-1 을 사용하십시오. HepG2 세포의 경우, 환원 성장 인자 ECM basement 물질의 4 mg·mL-1 을 사용하십시오. ECM basement 재료/배지 용액 15μL를 96웰 이미징 플레이트에 피펫팅합니다.참고: 대규모 스페로이드 생산의 경우, ECM 지하실 재료가 들어있는 팁과 저장소가 냉각되는 한 이 단계는 8채널 피펫과 96채널 피펫팅 헤드를 모두 사용하여 수행할 수 있습니다. 플레이트를 4°C에서 91 x g 에서 20분 동안 원심분리한다. 플레이트를 37°C에서 30분 이상 인큐베이션하지 않는다. 계대 배양 및 세포 수 플레이트 인큐베이션 기간 동안, 세포를 트립신-EDTA로 인큐베이션하고, 이들을 10% FBS를 함유하는 완전한 배지에 재현탁시킨다. 10 μL의 세포 현탁액을 혈구계 계수 챔버에 피펫한다. 챔버의 4 사분면에있는 세포 수를 계산하십시오. 4개의 사분면 내의 평균 세포 수를 결정함으로써 세포 현탁액 내의 세포 수를 계산한다.참고: 셀은 자동화된 셀 카운팅 장치를 사용하여 계산할 수도 있습니다. 세포를 실온에서 4분 동안 135 x g 에서 원심분리한다 (RT). 일단 세포가 펠릿화되면, 상청액을 흡인하고, 세포를 페놀 적색이 없는 완전 배지에 재현탁시켜 mL당 1 x 106 세포의 농도를 얻는다. ECM 지하실 물질 코팅 플레이트에 세포를 시드 세포를 페놀 적색이 없는 완전 배지에 희석한다.참고: 시딩된 세포의 밀도는 사용된 세포주에 의존한다. HT-29 및 HepG2 세포의 경우, 웰 당 3 x 104 세포가 시딩되고; H358 세포의 경우, 웰 당 4 x 104 세포가 시딩됩니다. 세포를 웰 당 35 μL의 총 부피로 시드한다. 원형 동작으로 드롭 방향으로 추가하십시오.참고: 대규모 스페로이드 생산의 경우 피펫팅 원형 운동을 달성할 수 있는 한 이 단계를 8채널 피펫으로 수행할 수 있습니다. 세포를 5% CO2가 있는 가습된 인큐베이터에서 37°C에서 1시간 동안 인큐베이션한다. 페놀 레드-프리 완전 매질에서 ECM 기저 물질의 용액을 준비하고, 이는 웰 내의 최종 농도 2% ECM 기저 물질을 초래한다. 이를 달성하기 위해, 웰 당 23.8 μL의 페놀 적색이 없는 완전한 배지에 1.2 μL의 ECM basement 물질을 첨가하여, 웰 당 60 μL의 최종 부피를 생성한다. 세포를 5% CO2가 있는 가습된 인큐베이터에서 37°C에서 인큐베이션한다. 다음날, 배지를 100 μL의 신선한 페놀 무함유 완전 배지로 교체한다. 매초마다 배지를 100 μL의 신선한 페놀 적색 무함유 완전 배지로 교체하십시오. 3. 구상체의 면역형광염색 참고: 이 프로토콜은 Nürnberg et al., 202015에서 채택되었습니다. 이러한 적응은 주로이 프로토콜에 설명 된 구상체가 Nürnberg et al. work15 에서 사용 된 것보다 작기 때문에 더 짧은 배양 시간을 촉진한다는 사실에 근거합니다. 예를 들어, 차단 시간은 2h에서 1h로 감소합니다. 또한, 프로토콜이 스페로이드의 높은 처리량 생산을 위해 설계됨에 따라, 모든 처리 단계는 구상체가 배양되는 웰에서 수행되며, 이는 개별 스페로이드를 튜브로 옮길 필요가 없음을 의미합니다. 고정 및 염색에 필요한 모든 용액과 완충액을 준비하십시오. 물 200 mL 당 PBS 정제 1개를 첨가하여 인산완충식염수(PBS)를 제조하였다. PBS를 오토클레이브합니다. 파라포름알데히드(PFA)를 3.1.3-3.1.4 단계에 따라 준비한다. 가열된 교반기를 사용하여 PBS 400 mL를 흄 후드에서 60-70°C로 가열한다. 교반하면서 PFA 15g을 첨가한다. 일단 PFA가 용해되면, 50 μL의 1 M CaCl2 및 50 μL의 1 M MgCl2를 첨가한다. PBS 100 mL를 첨가하여 최종 부피를 500 mL로 만든다. NaOH를 사용하여 PFA를 pH 7.4로 평형화시킨다. PFA를 멸균 진공 필터(기공 크기 0.22 μm)를 통해 여과하고, 분취량을 -20°C에서 저장한다. PBS 50 mL에 글리신 3.75 g을 첨가하여 1 M 글리신 원액을 제조하였다. 4°C에서 보관한다. PBS 2.4 mL에 100 μL의 트리톤 X-100, 1 mL의 디메틸설폭사이드(DMSO) 및 1.5 mL의 1 M 글리신을 첨가하여 5 mL의 투과화 완충액을 제조하였다. 4°C에서 2주 이상 보관하지 마십시오. PBS 4.9 mL에 100 μL의 트리톤 X-100, 0.5 mL의 DMSO 및 0.05 g의 소 혈청 알부민(BSA)을 첨가하여 5 mL의 블로킹 완충액을 제조하였다. 블로킹 완충액을 1.5 mL 튜브 내로 분취하고, -20°C에서 보관한다. PBS 4.74 mL에 10 μL의 폴리소르베이트 20, 0.05 g의 BSA 및 250 μL의 DMSO를 첨가하여 5 mL의 항체 인큐베이션 완충액을 제조하였다. 항체 인큐베이션 완충액을 1.5 mL 튜브에 분취하고, 이를 -20°C에 보관한다.참고: 여기에 설명된 프로토콜에서 구상체는 96웰 플레이트의 내부 60개 웰에만 조립되지만, 플레이트의 96개 웰 모두에서 준비할 수 있습니다. 내부 60 웰에서만 구상체를 준비하는 이유는 일부 높은 수치 조리개 대물 렌즈가 일부 플레이트 유형의 ‘스커트’로 인해 외부 웰의 전체 우물을 물리적으로 이미지 할 수 없기 때문입니다. 위의 부피는 구상체를 함유 한 60 웰의 제조에 충분합니다. 구상체를 고치고 침투하십시오. 구상체에서 배지를 조심스럽게 제거하여 ECM basement 재료 층이 방해받지 않도록하십시오. 구상체를 매번 3분 동안 70 μL의 PBS로 두 번 세척한다. 구상체를 37°C에서 1시간 동안 70 μL의 3% PFA로 고정시켰다. 구상체를 매번 3분 동안 70 μL의 PBS로 두 번 세척한다. 70 μL의 0.5 M 글리신 용액으로 37°C에서 30분 동안 켄칭한다. RT에서 30분 동안 70 μL의 투과화 완충액을 사용하여 구상체를 투과시킨다. 구상체를 매번 3분 동안 70 μL의 PBS로 두 번 세척한다. 구상체를 70 μL의 블로킹 완충액 중에서 37°C에서 1시간 동안 인큐베이션한다.참고: 구상체가 고정되면 모든 후속 처리 단계는 8채널 피펫 또는 96웰 피펫팅 헤드(사용 가능한 경우)를 사용하여 수행할 수 있습니다. 이것은 이미징 전에 스페로이드 준비의 속도를 증가시킵니다. 일차 및 이차 항체를 이용한 면역염색 구상체 일차 항체를 항체 인큐베이션 완충액에서 적절한 희석액으로 희석하고 각 웰에 70 μL를 첨가한다. 구상체를 일차 항체와 함께 밤새 인큐베이션한다.주: 희석은 사용된 특정 항체에 의존한다. 본원에 나타낸 예에서, 리소좀은 1:500의 희석을 사용하여 마우스 항-LAMP1 항체로 면역염색된다. 다음날, 구상체를 매번 3분 동안 PBS 70 μL로 5회 세척한다. 2차 항체를 1:500의 희석액으로, 형광 접합된 팔로이드인을 1:500에, 및 Hoechst 33342 (1 mg mL-1 스톡으로부터)를 항체 인큐베이션 완충액에서 1:5000으로 희석하고, 각 웰에 70 μL를 첨가한다. 하룻밤 동안 배양하십시오.주: 항체 희석은 사용된 특정 항체에 의존한다. 높은 광안정성과 높은 밝기를 보여주는 고도로 교차 흡착된 이차 항체를 권장합니다. 다음날, 구상체를 매번 3분 동안 PBS 70 μL로 5회 세척한다.참고: 플레이트는 구상체가 PBS로 덮여 있는 한 이미징 전에 RT에서 최대 두 주 동안 보관할 수 있습니다. 4. 구상체의 이미지 수집 및 분석 이미지 수집 구상체가 들어있는 96-웰 플레이트를 공초점 고함량 스크리닝 현미경에 삽입하십시오. 사용 된 형광단을 자극하기 위해 적절한 레이저를 선택하십시오. 크로스 토크를 피하기 위해 채널을 순차적으로 획득하십시오. 적절한 목표를 사용하여 구상체를 이미지화하십시오.참고: 가능한 경우 침수 목표를 사용하는 것이 좋습니다. 예를 들어, 20x/1.0 NA 목표는 ~77개의 시야각에서 전체 우물을 이미지화할 수 있습니다. 63x/1.15 NA 목표는 약 826개의 시야각으로 우물 전체를 이미지화할 수 있습니다. 이미지는 구상체의 깊이에 따라 ~ 30-40 개의 슬라이스를 이미지화하고, 각 슬라이스는 앞의 슬라이스에서 1.5 μm 간격으로 촬영됩니다. 이미지 분석 구상체의 형태학적 분석을 위해서는 4.2.2-4.2.6단계를 따르십시오. 형광 컨쥬게이션된 팔로이드 염색에 기초하여 구상체를 분절한다. Hoechst 33342 염색에 기초하여 핵을 분절한다. 세포질에 존재하는 잔류 Hoechst 33342 염색에 의해 각 세포의 세포질을 분절한다. 부피, 표면적, 구형도 및 구상체 당 핵 수를 포함하여 구상체의 다양한 형태 학적 특성을 계산하십시오.참고: 이 정보는 선택한 이미지 분석 소프트웨어에 내장된 다양한 알고리즘을 사용하여 추출됩니다. 이미지를 추가로 처리하여 75,000 μm3 보다 작고 900,000 μm3보다 큰 구상체를 제거합니다.참고: 이 값은 여러 구상체의 융합으로 인해 발생할 수 있는 매우 작은 셀 어셈블리 및 대형 어셈블리를 제거할 수 있도록 하기 위한 제안입니다. 스페로이드는 이 단계에서 다른 크기 클래스로 분류할 수도 있습니다. 구상체 내의 단일 세포를 분석하려면 4.2.8-4.2.12단계를 따르십시오. 형광 컨쥬게이션된 팔로이드 염색에 기초하여 구상체를 분절한다. Hoechst 33342 염색에 기초하여 핵을 분절한다. 세포질에 존재하는 잔류 Hoechst 33342 염색에 의해 각 세포의 세포질을 분절한다. 이차 항체 염색에 기초하여 리소좀을 분절한다. 세포당 리소좀의 수, 세포 부피 및 세포 표면적을 포함하여 각 구상체 내의 세포의 상이한 형태학적 특성을 계산한다.참고: 이 정보는 선택한 이미지 분석 소프트웨어에 내장된 다양한 알고리즘을 사용하여 추출됩니다.

Representative Results

이 프로토콜에서는 다양한 종양 조직을 표현하기 위해 다양한 세포 유형을 사용하여 구상체 형태의 3D 세포 배양 어셈블리를 생산하는 강력한 방법이 자세히 설명되어 있습니다. 이 방법을 사용하면 웰 당 수백 개의 구상체를 생성 할 수 있으므로 세포 기반 분석을 고함량 방식으로 수행 할 수 있습니다 (그림 1). 이 접근법은 이전에 HT-29 구상체16 에서의 나?…

Discussion

여기에 설명된 접근법은 HCS 및 HCA에 적합한 방식으로 웰당 수백 개의 구상체를 생성하기 위한 플랫폼을 상세히 설명한다. 웰 당 하나의 스페로이드 형성 만 허용하는 평평한 바닥 및 둥근 바닥 ULA 플레이트의 사용과 같은 다른 인기있는 방법과 비교할 때,18,19,이 방법은 스크리닝 형식으로 많은 수의 구상체로부터 고해상도 정보를 추출 할 수있는 기회?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자들은 Science Foundation Ireland (SFI) (16 / RI / 3745)에서 JCS에 대한 인프라 연구 보조금의 지원을 인정합니다. UCD 세포 스크리닝 실험실에서의 작업은 UCD 과학 대학의 지원을 받습니다. ASC는 아일랜드 연구위원회 (IRC) 아일랜드 대학원 장학금 (GOIPG / 2019 / 68)의 정부에서 자금을 지원합니다. 저자는 또한 실험실의 모든 구성원에게 그들의 의견과 도움이되는 토론에 감사드립니다. 그림 1의 아트웍은 BioRender에서 생성되었습니다.

Materials

0.05% Trypsin-EDTA (1x), phenol redGibco25300054
Bovine Serum Albumin (BSA)Sigma AldrichA6003
Calcium chlorideFisher Scientific10050070
CellCarrier-96 Ultra Microplates, tissue culture treated, black, 96-well with lidPerkin Elmer6055302These plates have been renamed as Phenoplates
Dimethyl sulfoxide (DMSO)Sigma AldrichD2650
Foetal Bovine Serum (FBS), qualified, EU approved, South America origin, heat inactivatedGibco10500064
GlycineFisher ScientificBP381-1
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488InvitrogenA-11029
L-Glutamine solution, 200 mMGibco25030024
Hoechst 33342Sigma Aldrich14533
Magnesium chlorideFisher Scientific10647032
Matrigel Basement Membrane Matrix, Phenol Red-free, LDEV-free, 10 mLCorning356237This Matrigel formulation can be also found with the same catalogue number at BD Biosciences
Matrigel Growth Factor Reduced MatrigelBD Biosciences356231This Matrigel formulation can be also found with the same catalogue number at Corning
McCoy's 5A mediumGibco26600023
McCoy's 5A medium with L glutamine and sodium bicarbonate, without phenol redHyclone10358633
Minimum Essential Medium (MEM)Gibco21090022
Minimum Essential Medium (MEM), without glutamine, without phenol redGibco51200046
Mouse monoclonal anti-LAMP1 antibody (concentrate)Developmental Studies Hybridoma BankH4A3-a
Neubauer counting chamberHirschmann8100203
Nunclon tissue culture dish with lid, polystyrene, 92 mm x 17 mmThermoFisher Scientific150350
Opera Phenix HCS System and Harmony HCA softwarePerkin ElmerHCSHH14000000
Paraformaldehyde (PFA)Sigma AldrichP6148
Phalloidin Alexa Fluor 568InvitrogenA12380
Phosphate Buffered Saline (PBS) tabletsSigma AldrichP4417
Polysorbate 20Sigma AldrichP5927
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX SupplementGibco61870010
RPMI 1640 Medium, without glutamine, without phenol redGibco11835063
Triton X-100Sigma AldrichT9284
Stericup sterile vacuum filter unitsMilliporeSCGVU05RE

References

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A Robust Method for the Large-Scale Production of Spheroids for High-Content Screening and Analysis Applications

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Chalkley, A. S., Mysior, M. M., Simpson, J. C. A Robust Method for the Large-Scale Production of Spheroids for High-Content Screening and Analysis Applications. J. Vis. Exp. (178), e63436, doi:10.3791/63436 (2021).

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