세포 치료제 준비/조작 단계에 도입된 이종(화학적 또는 동물 유래) 제품은 숙주 환자에서 면역 반응성 및 병원성 전파의 위험 증가와 관련이 있습니다. 여기서, 인간 지방유래 줄기세포의 분리 및 시험관내 확장을 위한 완전한 이종발생학적 무함유 방법이 기재되어 있다.
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방법 논문
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세포 치료제 준비/조작 단계에 도입된 이종(화학적 또는 동물 유래) 제품은 숙주 환자에서 면역 반응성 및 병원성 전파의 위험 증가와 관련이 있습니다. 여기서, 인간 지방유래 줄기세포의 분리 및 시험관내 확장을 위한 완전한 이종발생학적 무함유 방법이 기재되어 있다.
줄기 세포 치료의 증가하는 영향을 고려할 때, 체외 조작 중 동물 유래 제품의 도입으로 인한 잠재적 오염 또는 감염 전파에 대한 생물학적 안전성 문제가 제기되었습니다. 세포 분리 및 확장 단계에서 일반적으로 사용되는 콜라게나제 또는 소 태아 혈청과 같은 이종 성분은 수용 환자의 면역 반응성 또는 바이러스, 박테리아 및 프리온 감염의 잠재적 위험과 관련될 수 있습니다. Good Manufacturing Practice 지침에 따라 화학적 조직 해리를 피해야 하며 소 태아 혈청(FBS)은 이종성이 없는 보충제로 대체할 수 있습니다. 또한, 셀 제품의 안전성을 보장하기 위해서는 보다 신뢰할 수 있고 재현 가능한 방법의 정의가 중요합니다. 우리는 콜라겐 분해 효소 FBS 배양 표준 프로토콜과 비교하여 특성을 변경하지 않고 인간 지방 유래 줄기 세포의 분리 및 시험관 내 확장을 위한 혁신적이고 완전히 이종 발생이 없는 방법을 개발했습니다. 여기서, 복부 지방 조직으로부터 인간 지방유래 줄기세포(hASCs)를 분리하였다. 샘플을 가위/메스로 기계적으로 다진 후 미세 해부하고 10cm 페트리 접시에 기계적으로 분산시킨 다음 메스 절개로 준비하여 조직 조각의 부착과 hASC의 이동을 용이하게 했습니다. 세척 단계에 따라, hASC는 효소 소화 없이 소성 부착으로 인해 선택되었습니다. 분리된 hASC를 5% 헤파린이 없는 인간 혈소판 용해물이 보충된 배지로 배양하고 동물이 없는 트립신 대체물로 분리했습니다. 인간 치료용 세포 제품 생산에 대한 GMP(Good Manufacturing Practice) 지침에 따라 모든 배양 배지에 항생제를 사용하지 않았습니다.
지난 수십 년 동안 혁신적인 치료법에 대한 수요가 증가함에 따라 중개 의학 분야에 상당한 노력과 자원 투자가 이루어졌습니다1. 세포 기반 제품은 세포 공급원, 제조 공정(분리, 확장 또는 유전자 변형) 및 비세포 보충제(효소, 성장 인자, 배양 보충제 및 항생제)에 의해 결정되는 위험과 관련이 있으며 이러한 위험 요소는 특정 치료 적응증에 따라 다릅니다. 최종 제품의 품질, 안전성 및 효능은 위에 명시된 요소2에 의해 크게 영향을 받을 수 있습니다. 줄기 세포 치료는 생물 안전 원칙을 준수해야합니다. 세포 배양에서 동물 유래 제품으로 인한 병원성 전파의 잠재적 위험은 문제가 될 수 있으며 제조에 도입된 모든 제품에 대한 철저한 테스트가 필수적입니다3.
인간 지방유래 줄기세포(hASC)를 분리하는 전통적인 방법은 콜라게나제(collagenase)를 이용한 효소 분해 후 원심분리를 통한 세척 단계를 거친다4. 효소 분리는 일반적으로 세포 수율 및 생존력 측면에서 다른 기계적 기술보다 더 효율적인 것으로 간주되지만, 콜라게나제와 같은 동물 유래 성분은 미국 식품의약국(FDA)에서....
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hASC는 스위스 로잔 CHUV에 있는 로잔 대학 병원에서 복부 자가 피판(심부 하복부 천공 피판, [DIEP])을 사용하여 유방 재건술을 받은 건강한 여성의 복부 지방 조직에서 분리되었습니다. 플랩의 폐기된 부분과 지방 조직은 환자가 정보에 입각한 동의서에 서명한 후 얻었습니다. 모든 프로토콜은 헬싱키 선언에 따라 병원의 바이오뱅크 부서 DAL(번호 314 GGC) 및 윤리 위원회에서 검토하고 승인했습니다.
알림: 모든 단계는 층류 후드와 무균 조건에서 수행해야 합니다. 개인 보호를 위한 장갑과 실험복은 항상 착용해야 하며 모든 표면은 적절한 살생물제로 세척해야 합니다. 과도한 조직은 생물 의학 폐기물로 적절하게 처리해야 합니다.
1. 필요한 재료 및 배양 용액 준비
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위에서 설명한 분리 방법을 적용하면 콜라게나제를 사용하지 않고 복부 지방 조직 샘플에서 hASC를 성공적으로 얻을 수 있습니다. 더욱이, hASC는 hPL의 존재 하에 그리고 동물 기원의 다른 성분 없이 완전한 이종유전자가 없는 조건에서 확장되었다. 다음 결과는 프로토콜을 지원하며 hPL 및 FBS를 대조 조건으로 병행하여 배양된 hASC에서 얻습니다.
초기 클러스터 출현 후, hASC는 고전적인 방추형을 보였으며 FBS가 있는 대조군 세포에 비해 더 작고 길었습니다(그림 3). 유세포 분석에 의해 평가된 세포 면역표현형은 두 보충제와 함께 배양된 hASC 간에 유사한 것으로 나타났다. 특히, hASCs의 80%-90% 이상이 CD73 17 및 CD105 17에 대해 양성이었고, 5% 미만이 CD34 17 및 CD45
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지방유래 줄기세포는 풍부함, 빠르고 저렴한 분리 방법, 높은 in vitro/in vivo 증식률 및 줄기/분화 특성으로 인해 지난 10년 동안 중개 연구의 관심을 끌었습니다18,19,20. 그 결과, hASC는 재생 의학에서 세포 기반 전략의 우수한 후보로 간주된다21. 지방 조직으로부터 분리된 후, hASC는 시험관 내에서 확장이 필요하며, 경우에 따라 특정 치료 적용에 사용되기 전에 분화 단계를 거쳐야 합니다. 분리, 시험관 내 확장 및 최종 차별화를 포함한 전체 프로세스는 번역 관점에서 위험을 줄이기 위해 GMP 지침에 따라 수행되어야 합니다22,23
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| 15 mL 튜브 | euroclone | et5015b | |
| anti-CD105 | BD Biosciences | BD560839 | |
| anti-CD34 | BD Biosciences | BD555821 | |
| anti-CD45 | BD Biosciences | BD555482 | |
| anti-CD73 | BD Biosciences | BD561254 | |
| autoMACS 헹굼 용액 (FACS buffer) | Miltenyi | 130-091-222 | |
| BD Accuri C6 장치 (유세포 분석 기기) | BD Accuri-Burker | ||
| 챔버 | Blaubrand | 717810 | |
| 세포 동결 용기 | corning | CLS432002 | |
| CellTiter 96 AQueous One Solution 세포 증식 분석 | Promega | G3582 | |
| CoolCell 냉동 용기 | Corning | ||
| Cryovials | clearline | 390701 | |
| Dimethyl sulfide | Sigma Aldrich | D2650-100mL | |
| disposabile blade 메스 | 파라곤 | bs 2982 | |
| Dulbecco's Modified Eagle's Medium - High glucose | GIBCO 11965092 | ||
| Human Platelet Lysate FD (GMP grade) | Stemulate | PL-NH-500 | |
| 인피니트 F50 분광 광도계 | Tecan-4x | ||
| 및 10x 배율 대물렌즈가 있는 광학 현미경 | Olympus | CKX41 | |
| 페트리 접시 10cm | Greiner bio-one | 664160 | |
| 멸균 메스 | Reda | 07104-00 | |
| 멸균 가위 | Bochem | 4071 | |
| 멸균 핀셋 | Bochem | 1152 | |
| 스윙 버킷 원심분리기 | Sigma | 3-16K | |
| T25 플라스크 | Greiner bio-one | 6910170 | |
| TrypLe(동물성 트립신 대체품) | GIBCO | 12604-013 |
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