이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

중개 암 연구에서 생체 내 현미경 및 자기 공명 영상의 결합을 위한 Dorsal Skinfold Window Chamber 종양 마우스 모델

2.9K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/66383

⸱

2024년 4월 12일

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

Intravital microscopy 결과의 번역은 조직에 대한 얕은 깊이 침투로 인해 어려움을 겪고 있습니다. 여기에서는 직접적인 공간 상관 관계를 위해 생체 내 현미경 검사와 임상적으로 적용 가능한 이미징 양식(예: CT, MRI)을 함께 정합할 수 있는 등쪽 창 챔버 마우스 모델에 대해 설명하며, 이를 통해 생체 내 현미경 검사 결과의 임상 번역을 간소화할 수 있습니다.

초록

현미경 및 광간섭 단층 촬영과 같은 전임상 생체 내 이미징은 종양 미세환경과 치료에 대한 반응을 시각화하기 위한 암 연구에서 유용한 도구임이 입증되었습니다. 이러한 이미징 방식은 미크론 규모의 해상도를 가지고 있지만 조직에 대한 얕은 침투 깊이로 인해 클리닉에서 사용이 제한적입니다. CT, MRI 및 PET와 같이 임상적으로 적용 가능한 이미징 방식은 침투 깊이가 훨씬 더 크지만 공간 해상도(mm 스케일)가 상대적으로 낮습니다.

전임상 생체 내 이미징 결과를 임상에 적용하려면 이러한 미시적 대 거시 적 해상도 격차를 해소할 수 있는 새로운 방법을 개발해야 합니다. 여기에서는 동일한 동물에서 전임상 생체 내 및 임상적으로 적용 가능한(CT 및 MR) 이미징을 가능하게 하도록 설계된 등쪽 스킨폴드 창 챔버 종양 마우스 모델과 이 두 가지 이질적인 시각화 방법을 연결하는 이미지 분석 플랫폼에 대해 설명합니다. 중요한 것은 설명된 창 챔버 접근 방식을 통해 직접 공간 일치를 위해 창 챔버의 기준 마커를 사용하여 다양한 이미징 양식을 3D로 공동 등록할 수 있다는 것입니다. 이 모델은 기존 임상 이미징 방법의 검증뿐만 아니라 "실측 자료" 고해상도 생체 내 소견과의 직접적인 상관 관계를 통해 새로운 방법을 개발하는 데 사용할 수 있습니다.

마지막으로, 화학 요법, 방사선 요법, 광역학 요법 등 다양한 치료에 대한 종양 반응은 전임상 및 임상적으로 적용 가능한 이미징 양식을 사용하여 이 방법론으로 종단적으로 모니터링할 수 있습니다. 따라서 여기에 설명된 등쪽 피부주름창 챔버 종양 마우스 모델 및 이미징 플랫폼은 다양한 암 연구 연구에서 사용될 수 있으며, 예를 들어 전임상 생체 내 현미경 결과를 CT 또는 MRI와 같은 보다 임상적으로 적용 가능한 이미징 양식으로 변환하는 데 사용할 수 있습니다.

서론

종양 미세혈관은 종양 미세환경의 중요한 구성 요소로서 치료의 표적이 될 수 있고 치료 반응의 결정 요인이 될 수 있습니다. 전임상 환경에서 미세혈관은 일반적으로 orthotopic 또는 heterotopic window chamber 동물 모델에서 생체 내 현미경을 사용하여 연구됩니다 1,2. 이는 이미징이 살아있는 조직에서 수행되고 종양을 몇 주 또는 몇 개월에 걸쳐 종단적으로 모니터링할 수 있기 때문에 조직학적 연구에 비해 몇 가지 장점이 있습니다 2,3. 이러한 연구는 생체 내 현미경의 고해상도 이미징 기능을 활용하여 종양에 대한 치료제의 전달 4,5, 치료 내성6의 원인, 항혈관 신생 치료 7,8 및 방사선 요법 2,9와 같은 치료에 대한 미세 혈관의 반응을 연구할 ....

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

모든 동물 시술은 캐나다 동물 보호 위원회(Canadian Council on Animal Care)에서 정한 실험 동물의 관리 및 사용 가이드(Guide to the Care and Use of Experimental Animals)에 따라 수행되었습니다. 실험은 캐나다 토론토에 있는 University Health Network Institutional Animal Care and Use Committee에서 승인한 프로토콜에 따라 수행되었습니다.

1. 종양 접종 랜드마크

참고: "랜드마크(landmarking)"는 DSFC 배치를 최적화하기 위해 종양 세포를 주입해야 하는 위치를 나타내기 위해 쥐의 피부를 표시하는 과정을 말합니다. 이 랜드마크 절차는 접종 당일 또는 1일 전에 이루어져야 합니다. 면역력이 저하된 NOD. 이 작업에는 Cg-Rag1tm1Mom Il2rgtm1Wjl/SzJ (NRG) 암컷 마우스가 사용되었습니다.

  1. 유도를 위해 5% 이소플루란을 사용하고 유지를 위해 2% 이소플루란을 사용하여 마우스를 마취합니다(산소 유량은 0.5L/min으로 설정). 오토클레이브 수술 매트로 감싼 가열 패드에 마우스를 올려 체온을 유지합니다.<....

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

스페클 분산 광학 간섭 단층 촬영(svOCT)을 수행하여 넓은 시야(FOV) 3D 미세혈관 이미지(6 x 6mm, 측면2 개 x 깊이 1mm)를 얻었습니다. 이러한 이미지를 획득하기 위해, 직교 간섭계를 기반으로 하는 앞서 설명된 스윕 소스 OCT 시스템이사용되었다 23. OCT 이미지는 측면으로 인접한 두 개의 3 x 6mm2 FOV 스캔을 스티칭하여 획득했습니다. 각 B-스캔은 400개의 A-스캔으로 구성되었으며 이전 작업24에서 설명한 대로 정확한 스페클 분산 처리를 가능하게 하기 위해 위치당 24번(25ms 간격) 수행되었습니다.

MRI 데이터 세트를 미세혈관 svOCT 데이터 세트에 공동 등록하기 위해 몇 가지 단계를 수행했습니다. 첫 번째 단계는 5.12단계에서 수행되었으며 그림 4에 나와 있.......

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

이 작업에서는 동일한 동물에서 생체 내 현미경 검사와 임상적으로 적용 가능한 이미징(CT, MRI 및 PET)을 모두 수행할 수 있는 워크플로우를 개발했습니다. 이는 생체 내 현미경 검사와 MRI와 같은 임상 영상 양식의 직접적인 상관 관계를 통해 전임상 현미경 검사 결과를 클리닉에 적용하는 것을 목표로 수행되었습니다. 기존의 DSFC 설계는 금속 2,3으로 만들어졌지만, 생체 적합성 플라스틱 수지로 만든 3D 프린팅 윈도우 챔버를 사용하여 DSFC를 MR과 호환되도록 조정했습니다. 양식의 등록은 임상 이미징 양식에 대한 기준 마커를 사용하고 DSFC의 기준 마커 위치를 광시야 현미경 이미지 및 고해상도 생체 내 현미경 미세혈관 이미지에서 볼 수 있는 혈관 랜드마크와 일치시키는 광시야 현미경 이미지를 획득하여 수행되었습니다. 모달리티를 공동 등록하기 위한 MATLAB 코드가 개발되었으며 보충 파일 2

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.

감사의 글

종양 세포 배양 및 접종 프로토콜 개발에 도움을 주신 Carla Calçada 박사(Princess Margaret Cancer Centre 박사후 연구원)와 Timothy Samuel 박사(Princess Margaret Cancer Centre 박사 과정 학생)에게 감사드립니다. Kathleen Ma 박사, Anna Pietraszek 박사, Alyssa Goldstein 박사(Princess Margaret Cancer Centre 동물 연구 센터)가 수술 프로토콜 개발을 도왔습니다. 제이콥 브로스케(Jacob Broske, 프린세스 마가렛 암 센터(Princess Margaret Cancer Centre) 의료 엔지니어링 기술자)와 웨인 켈러(Wayne Keller, TriMech 그룹 회사 자벨린 테크놀로지스(Javelin Technologies) 하드웨어 클라이언트 책임자)는 창문 챔버를 3D 프린팅했습니다. James Jonkman(Advanced Optical Microscopy Facility, University Health Network)은 명시야 및 형광 현미경 이미지 획득에 대한 귀중한 지침을 제공했습니다.

....

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Cell Culture Materials
BxPC-3 Human Pancreatic Cancer CellsATCC (American Type Culture Collection)CRL-1687
Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, LDEV-free, 10 mLCorning354234
Ultra Pipet ControllerCorning07-202-350
칼슘, 마그네슘 또는 페놀이 레드가 없는 Dulbecco Phospphate 완충 식염수, 500mLGibco14190144
소 태아 혈청(캐나다), 500mLSigma-AldrichF1051-500ML
페니실린-스트렙토마이신 100x(액체, 안정화, 멸균 필터링, 세포 배양 테스트)Sigma-AldrichP4333-100ML
RPMI Medium 1640(1x), 액체, L-글루타민 포함, 500mLGibco
TrypLE Express Enzyme, 500 mLGibco12605028
Window Chamber Materials
12 mm Glass CoverslipHarvard Apparatus   CS-12R No. 1.5
Connex 500 3D 프린터StratasysN/A
생체 적합성 클리어 MED610 수지Stratasys  RGD810
록타이트 AA 3105 UV 경화형 접착제록타이트LCT1214249
윈도우 챔버 백 프레임Trimech IncN/A
윈도우 챔버 기준 마커Trimech IncN/A
윈도우 챔버 프론트 프레임Trimech IncN/A
윈도우 챔버 지지 클립Trimech IncN/A
접종 및 수술 재료
BD SafetyGlide 인슐린 주사기와 영구적으로 부착된 바늘, 0.5 mL, 29 G x 1/2"BDCABD305932
Betadine SolutionBetadineAP-B002C2R98U
Cidex OPA 14 Day Solution 3.8 LASPJOH20394
일회용 수술용 언더패드 23 인치 x 24 인치Kendall7134
눈 윤활제   Optixcare50-218-8442
제모 크림Nair‎
061700222611 Halstead 헤모스태틱 펜치Almedic7742-A12-150
난방 패드선빔 
아이리스 가위Almedic7601-A8-690
이소플루란시그마792632
Metacam  Boehringer Ingelheim Animal Health USA IncNDC 0010-6015-03
끄덕임. Cg-rag1tm1엄마  Il2rgtm1Wjl/SzJ 마우스잭슨 연구소7799
땅콩 가위 & 트리머Wahl8655-200
  SOFSILK 비흡수성 수술용 봉합사 #5-0 3/8" 테이퍼 포인트 바늘 (17 mm) (왁스 코팅, 브레이디드 블랙 실크, 멸균)   시네처   VS880
파편 집게Almedic7725-A10-634
MR 이미징
3D 인쇄 창 챔버 고정 장치.맞춤형 3D 인쇄, 자세한 내용은 그림 3을 참조하십시오.
대류 난방 장치3M Bair Hugger70200791401
약물 주입 시스템하버드 장치   PY2 70-2131PHD 22/2200 MRI 호환 주사기 펌프
Gadovist 1.0Bayer2241089
호흡기 모니터링 시스템SAII모델 1030MR 호환 모니터링 및 게이트 시스템.
꼬리 정맥 카테터(27G 0.5")Terumo Medical Corp15253
Optical Imaging
3D printed imaging stage, 자세한 내용은 보충 그림 3 참조.
12 V 7 W 유연한 폴리이미드 히터 플레이트 얇은 접착제 PI 난방 필름 25 mm x 50 mmBANRIA B09X16XCVS마우스 본체 온도 조절에 사용되는 발열체.
DC 전원 공급 장치BK Precission1761발열체에 전원을 공급하는 데 사용됩니다.
Leica MZ FLIIILeica Microsystems15209
svOCT 이미징 시스템자체 제작 이미징 시스템. 자세한 내용은 참고 문헌 23에서 확인할 수 있습니다.
소프트웨어
MATLAB 소프트웨어MathWorksR2020A
Corning Stripettor 11875093B086MCN59R

참고문헌

  1. Fukumura, D., Duda, D. G., Munn, L. L., Jain, R. K. Tumor microvasculature and microenvironment: Novel insights through intravital imaging in pre-clinical models. Microcirculation. 17 (3), 206-225 (2010).
  2. Demidov, V., et al.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

더 많은 논문 탐색

다중 모드 영상화광간섭 단층촬영종양 미세환경종단적 영상화미세혈관 영상화방사선 치료 바이오마커