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방법 논문

전혈에서 매우 생존 가능한 인간 말초 혈액 단핵 세포의 분리 및 냉동 보존: 초보자를 위한 가이드

7.6K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/66794

⸱

2024년 10월 25일

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiology, Department of Medicine, University of California San Diego, 2Department of Medical Biochemistry, Amsterdam Immunity and Infection: Inflammatory diseases; Amsterdam Cardiovascular Sciences: Atherosclerosis and Ischemic Syndrome, Amsterdam UMC location University of Amsterdam, 3Department of Cellular and Molecular Medicine, University of California San Diego, 4Division of Clinical Immunology & Rheumatology, Department of Medicine, Heersink School of Medicine, University of Alabama at Birmingham, 5Comprehensive Arthritis, Musculoskeletal, Bone and Autoimmunity Center, Heersink School of Medicine, University of Alabama at Birmingham, 6Department of Medicine, University of California San Diego

이 논문에서

요약

이 프로토콜은 유세포 분석 및 RNA 염기서열분석과 같은 다운스트림 분석 및 워크플로우에 적합한 말초 혈액 단핵 세포를 수집, 보관 및 해동하기 위한 접근 가능한 가이드를 제공합니다. 플라즈마와 버피 코트 컬렉션도 시연됩니다.

초록

말초 혈액 단핵 세포(PBMC)는 면역 체계와 질병 및 병원체에 대한 면역 체계의 반응에 대한 생물 의학 연구에 일반적으로 사용됩니다. 이 상세 프로토콜은 유세포 분석 및 RNA 염기서열분석과 같은 다운스트림 응용 분야에 적합한 전혈구에서 고품질의 생존 가능한 PBMC를 분리, 동결 보존 및 해동하기 위한 장비, 공급품 및 단계를 설명합니다. 전혈에서 혈장 및 버피 코트를 PBMC와 병렬로 동시에 처리하는 프로토콜도 설명되어 있습니다. 밀도 구배 원심분리를 활용하여 PBMC를 분리하는 이 따르기 쉬운 단계별 프로토콜에는 공급품, 장비 및 준비 단계에 대한 체크리스트가 함께 제공됩니다. 이 프로토콜은 실험실 기술에 대한 사전 경험이 있는 개인에게 적합하며 임상 또는 연구 실험실에서 구현할 수 있습니다. 고품질 세포 생존율 및 RNA 염기서열분석은 이 프로토콜을 사용한 실험실 경험이 없는 작업자가 수집한 PBMC에서 비롯되었습니다.

서론

이 프로토콜은 전혈에서 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)를 분리하기 위한 접근 가능한 방법과 워크플로우를 보여줍니다. 이 프로토콜은 특히 실험실 기술에 대한 사전 교육을 받지 않고 PBMC의 수집 및 냉동 보존을 용이하게 하기 위한 목적으로 초보 연구 기술자, 학생 및 임상 실험실 직원을 대상으로 합니다.

이 프로토콜은 원심분리를 사용하여 밀도에 따라 전혈 성분을 분리합니다. 전혈은 적혈구/적혈구(부피의 ~45%), 백혈구(부피의 <1%), 혈소판(부피의 <1%), 혈장(부피의 ~55%)1,2,3,4,5,6의 4가지 주요 성분으로 구성됩니다. 백혈구는 핵 특성에 따라 원형 또는 다핵6의 두 가지 범주로 나눌 수 있다. PBMC는 둥근 핵을 가진 백혈구로 정의되며 림프구(T 세포, B 세포, NK 세포), 수지상 세포 및 단핵구로 구성됩니다6. 다핵 백혈구에는 과립구가 포함되며, 과립구는 호중구, 호염기구, 호산구 등의 세포 유형으로 구성된다6. 다핵 백혈구는 PBMC보다 밀도가 높다6. 전혈의 각 성분의 밀도는 표 1에 자세히 나와 있습니다.

이 프로토콜에서는 전혈이 밀도 구배 원심분리 튜브에 수집됩니다. 이 튜브에는 밀도가 1.077g/mL인 사전 충전된 밀도 구배 매체가 포함되어 있습니다. 원심분리 후, 다핵 백혈구 및 적혈구를 포함한 밀도가 높은 세포는 밀도 구배 배지에 의해 PBMC 및 혈소판에서 분리됩니다(그림 1A)6,7. 그런 다음 PBMC 및 혈소판 분획을 수집, 세척 및 원심분리하여 혈소판을 제거합니다. 생성된 정제된 PBMC는 -80°C 또는 액체 질소에서 수집 및 보관됩니다. 동결 보존된 PBMC는 실행 가능하게 해동하여 다운스트림 분석에 직접 사용하거나 특정 구성 세포 유형을 분리하기 위해 추가로 처리할 수 있습니다.

이 프로토콜은 생존율이 높은 PBMC의 고품질 RNA 염기서열분석에 최적화되었습니다. 이 기사에서는 PBMC를 외래 환자 클리닉에서 환자로부터 분리하고 냉동 보존했습니다. 그 후, FACS에 의해 PBMC에서 단핵구를 분리하고 RNA 시퀀싱을 통해 분석했습니다. 그러나 프로토콜은 세포 배양, 유전자 편집, 생체 외 기능 연구, 단일 세포 분석, 유세포 분석에 의한 표현형 분석 또는 비행 시간에 의한 세포 분석, DNA/RNA 또는 단백질의 분리, 면역조직화학을 위한 슬라이드 등과 같은 다른 실험적 요구에 널리 적용될 수 있습니다 8,9,10,11,12,13,14,15, 16,17,18.

밀도 구배 원심분리 튜브에서 PBMC 수집 외에도 이 프로토콜은 EDTA 튜브를 사용하여 원심분리를 통해 플라즈마 및 버피 코트를 수집하는 방법을 검토합니다. 원심분리 후 전혈은 혈장, 적혈구 및 백혈구를 포함하는 버피 코트(buffy coat)라고 하는 얇은 계면층으로 분리됩니다(그림 1B)6. 버피 코트는 일반적으로 DNA 추출 및 후속 게놈 분석에 사용됩니다19,20. 형질층은 전혈의 cell-free 성분을 포함하며 바이오마커 분석에 사용할 수 있습니다21,22.

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프로토콜

이 연구 프로토콜은 UCSD와 KUMC Human Protections Program의 승인을 받았으며 헬싱키 선언을 준수합니다. 모든 개인은 참여 및 혈액 채취에 대해 정보에 입각한 동의를 제공했습니다.

1. PBMC의 처리 및 냉동 보존

  1. 채혈 하루 전에 표 2 에 나열된 재료 및 시약의 체크리스트를 인쇄하고 그에 따라 준비하고 라벨을 부착합니다.
    참고: 이 프로토콜은 6개의 밀도 구배 원심분리 튜브를 수집하기 위해 설계되었습니다. 각 튜브는 약 1,200만 개의 PBMC를 생성하며, 그 중 약 50%와 20%는 각각 살아있는 림프구와 단핵구입니다. 실험적 요구 사항에 따라 확장할 수 있습니다. 세포의 절대 수는 환자 또는 치료 조건에 따라 크게 다를 수 있습니다.
  2. 표준 정맥 절개술 기법을 사용하여 6개의 밀도 구배 원심분리 튜브와 1개의 EDTA 튜브에 약 6mL의 부피가 채워질 때까지 전혈을 수집합니다.
    참고: 여러 환자 또는 치료 조건의 샘플이 필요한 경우 수집된 튜브를 최대 4시간까지 보관한 다음 동시에 처리할 수 있습니다.
  3. 채취 후 모든 튜브를 1,800 x g 에서 실온에서 20분 동안 원심분리합니다.
    알림: 원심분리기 작동 방법에 대한 데모는 추가 비디오 1 을 참조하십시오.
  4. 원심분리 후 밀도 구배 원심분리 튜브를 조심스럽게 엽니다. 전사 피펫을 사용하여 플라즈마가 포함된 반투명 노란색 층을 제거하고 폐기합니다. 밀도 구배 매체 바로 위에 있는 흐릿한 세포 층을 방해하지 마십시오. PBMC를 버리지 않고 과도한 플라즈마를 남겨 두는 것이 좋습니다. 모든 튜브에 대해 반복합니다.
    참고: 밀도 구배 매체를 포함하는 튜브의 원심분리 후 플라즈마 및 PBMC는 밀도 구배 매체 위에 있습니다. 적혈구와 과립구는 바닥에 가라앉습니다. 시각화에 대해서는 그림 1A 를 참조하십시오.
  5. 새로운 전사 피펫을 사용하여 각 튜브에 세포와 잔류 혈장을 포함하는 나머지 부피를 밀도 구배 매체 위로 여러 번 부드럽게 위아래로 피펫팅합니다.
  6. 재현탁 후, 튜브의 재현탁 내용물을 라벨이 부착된 50mL 코니컬 튜브에 피펫팅합니다. 모든 튜브에 대해 반복합니다.
  7. 용액 1(RPMI 배지)을 50mL 라인에 도달할 때까지 50mL 튜브에 붓습니다.
  8. 필요에 따라 각 환자 또는 치료 상태에 대해 1.4-1.7단계를 반복합니다.
    알림: 다른 샘플이 혼합되지 않았는지 확인하고 오염을 방지하기 위해 새 이송 피펫을 사용하십시오.
  9. 50mL 튜브를 300 x g 에서 실온에서 10분 동안 원심분리합니다.
    참고: 섹션 2에 자세히 설명된 혈장 및 버피 수집 프로토콜은 이 시간 동안 완료될 수 있습니다.
  10. 가능한 한 많은 상층액을 버리십시오. 필요에 따라 탭하여 잔여 방울을 제거합니다.
    참고: 원심분리 후 펠릿에는 PBMC가 포함되고 상층액에는 혈소판과 잔류 혈장이 포함됩니다.
  11. 용액 2(RPMI 배지 + 12.5% 인간 혈청 알부민 + 1μM 플라보피리돌) 15mL 튜브를 PBMC 펠릿이 들어 있는 50mL 원뿔형 튜브에 붓습니다. 튜브를 부드럽게 뒤집어 세포 펠릿을 재현탁시킵니다.
  12. 전사 피펫을 사용하여 용액 3(RPMI 배지 + 11.25% 인간 혈청 알부민 + 1μM 플라보피리돌 + 10% DMSO) 15mL를 흡입합니다. 50mL 튜브에 적하에 추가합니다.
    참고: 솔루션 3에는 실온에서 세포에 독성이 있는 DMSO가 포함되어 있습니다. 즉시 처리할 준비가 될 때까지 솔루션 3을 추가하지 마십시오.
  13. 튜브를 부드럽게 3번 뒤집어 섞습니다.
  14. 다중 분주 피펫을 사용하여 사전 라벨링되고 사전 냉각된 각 cryovial을 1mL의 PBMC로 채웁니다.
    참고: 다중 분주 파이펫을 작동하는 방법에 대한 데모는 추가 비디오 2 를 참조하십시오.
  15. 미리 냉각된 냉동 용기에 극저온을 넣습니다. 그런 다음 용기를 -80 °C 냉동고로 옮깁니다.
  16. 필요에 따라 각 환자 또는 치료 상태에 대해 1.9-1.13단계를 반복합니다.
  17. 냉동 용기 내부에 극저온을 최소 12시간 동안 보관한 다음 -80°C의 라벨이 부착된 보관 상자로 옮깁니다.
    알림: 또는 장기 보관을 위해 냉동 극저온을 액체 질소(<-135 °C)로 옮기십시오.

2. EDTA 튜브의 플라즈마 및 버피 코트 처리

  1. 실온에서 1,800 x g 으로 10분 동안 원심분리합니다.
    참고: 원심분리 후 최상층은 혈장으로 구성되고 하단층은 적혈구가 포함되며 계면은 버피 코트가 됩니다. 시각화에 대해서는 그림 1B 를 참조하십시오.
  2. 새로운 전사 피펫을 사용하여 버피 코트 층을 방해하지 않고 가능한 한 많은 플라즈마를 흡입합니다. 그런 다음 0.5mL 분취액을 사전 라벨링된 극저온 저장고에 분주합니다. 버피 코트 층을 흡인하고 적절하게 라벨이 지정된 cryovial로 옮깁니다.
    참고: 일부 혈장과 적혈구는 버피 코트 컬렉션을 오염시킬 수 있습니다.
  3. 필요에 따라 각 환자 또는 치료 상태에 대해 2.2단계를 반복합니다.
  4. 채취 후에는 극저온을 -80°C 냉동고에 보관하십시오.
    알림: 또는 장기 보관을 위해 액체 질소(<-135 °C)에 보관하십시오.

3. PBMC 해동

  1. 해동 하루 전에 표 3 에 나열된 재료 및 시약의 체크리스트를 인쇄하고 그에 따라 준비하고 라벨을 붙입니다.
    참고: 이 프로토콜은 1mL의 PBMC를 포함하는 1.5mL 튜브 1개의 해동을 위해 설계되었습니다. 각 튜브는 약 200만 개의 PBMC를 생성하며, 그 중 약 50%와 20%는 각각 살아있는 림프구와 단핵구입니다. 실험적 요구 사항에 따라 확장할 수 있습니다. 세포의 절대 수는 환자 또는 치료 조건에 따라 크게 다를 수 있습니다.
  2. 드라이아이스를 사용하여 냉동 PBMC를 보관에서 옮기고 37°C 인큐베이터에서 4분 동안 또는 마지막 얼음 결정 해동 직전에 해동합니다.
    참고: 원하는 경우, 섹션 4에 자세히 설명된 대로 세포 계수 및 생존도 측정을 위해 부분 표본을 채취할 수 있습니다.
  3. 해동 후 각 극저온 1mL에 용액 4(PBS + 2mM EDTA)를 추가합니다. 그런 다음 해동된 모든 PBMC 튜브에 대해 10mL의 용액 4가 들어 있는 사전 라벨이 부착된 50mL 튜브에 내용물을 붓습니다. 탭하여 잔여 방울을 제거합니다.
  4. 빈 50mL 튜브에 세포 여과기를 놓고 세포 여과기를 통해 세포 현탁액을 붓습니다.
    알림: 필요한 경우 가볍게 두드려 표면 장력을 끊습니다.
  5. 변형된 세포가 포함된 각 튜브를 실온에서 400 x g 에서 7분 동안 원심분리합니다.
  6. 원심분리 후 DMSO가 함유된 상층액을 붓습니다. 필요에 따라 탭하여 잔여 방울을 제거합니다.
  7. 다운스트림 실험 요구 사항(예: 세포 배양 배지, 유세포 분석 항체 칵테일 등)에 적합한 원하는 배지에 세포 펠릿을 재현탁시킵니다.

4. 세포 계수 및 생존력

  1. 3.2단계에서 동결 PBMC를 해동한 직후 20μL의 세포를 1.5mL 튜브에 피펫팅합니다. 동일한 부피의 0.4% Trypan Blue 용액을 추가하고 피펫을 위아래로 부드럽게 3-4회 추가하여 혼합합니다.
  2. 자동화된 세포 계수기를 사용하여 제조업체의 프로토콜에 따라 세포를 계수하고 생존 가능성을 평가합니다. 희석 계수 2가 고려되었는지 확인합니다.
    주의: 다른 곳에서 기술된 바와 같이, 혈구측정기는 세포 수 및 생존율을 평가하기 위한 대체 방법으로 사용될 수 있다23.

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결과

PBMC 수집 및 동결 보존 후, 56개의 고유한 샘플에서 해동된 PBMC, 단핵구 및 림프구의 생존력을 제조업체의 지침에 따라 표 4에 나열된 시약을 사용하여 유세포 분석으로 평가했습니다(그림 2A-F). PBMC, 단핵구 및 림프구의 평균 ±SD 생존율은 각각 94± 4.0%, 98± 1.1%, 93± 5.6%로 달성되었습니다(그림 2G). Trypan Blue 배제에 의한 생존도 측정은 평균 생존율이 88 ± 7.5%이고 세포 수가 2.3 x 106 ± 1.9 x 106이었습니다. 유세포 분석 분석은 또한 살아있는 단핵구가 17 ± 5.9%를 차지하고 림프구가 전체 PBMC의 53 ± 13.0%를 구성한다는 것을 보여주었습니다.

이어서, 유세포 분석에 의해 59개의 고유...

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토론

PBMC 수집 및 동결 보존을 위한 이 프로토콜은 사전 연구 실험실 교육을 받은 개인에 관계없이 개인에 의해 성공적으로 구현되었습니다. 당사의 응용 분야에서는 저장된 PBMC에서 정제된 생존력이 높은 단핵구의 FACS 및 RNA 염기서열분석을 통해 고품질 염기서열을 도출했습니다.

이 프로토콜의 가장 큰 장점은 접근성입니다. 프로토콜에 제시된 기술은 고체 밀도 그래디언트 매체로 사전 충전된 튜브를 사용합니다. 그 결과, 전혈을 튜브에 직접 채취한 후 즉시 처리하여 PBMC를 분리할 수 있습니다. 상대적으로 적은 수의 사전 제작된 솔루션과 특수 장비가 필요하며, 이는 시약을 준비할 수 있는 연구 실험실과 샘플을 수집하고 처리하는 임상 실험실 간의 협업을 용이하게 합니다. 서면 및 비디오 프로토콜은 모든 수준의 교육을 받는 작업자를 대상으로 합니다.

이 프로토콜은 PBMC를 ...

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공개 사항

저자는 공개할 관련 재정적 또는 비재정적 이해관계가 없습니다.

감사의 글

자발적으로 동의와 시간, 혈액 샘플 기증을 해주신 환자들께 감사드립니다. 또한 Kansas University Medical Center의 Patrick Moriarty, Julie-Ann Dutton 및 Mark McClellen 박사의 협력과 원격 사이트에서 이 프로토콜을 구현한 것에 감사드립니다. CY는 NIH 보조금 1K08HL150271로부터 연구 지원을 받았습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
1000 &마이크로; L TipsGilsonF174501PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection
15 mL tubeBiopioneeerCNT-15To hold Solutions 2/3
2 needed per patient/treatment condition for PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection
2 mL CryovialsGlobe Scientific3012에 대한 환자/치료 조건 당 2 팁 필요PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection 20 µ에 대해 환자/치료 조건당 약 40개의 cryovials
가 필요합니다. L TipsGilsonF174201세포 계수에 사용; 필요한 부피는 사용된 세포 계수 방법에 따라 다릅니다. 해동할 풀링되지 않은 냉동 PBMC 1mL당 팁
50mL Conical TubeCEM Corporation50-187-7683PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection
해동될 풀링되지 않은 냉동 PBMC 1mL당 3개가 필요합니다.
CD14 항체Biolegend325621
CD16 항체Biolegend360723
CD19 항체Biolegend363007
CD3 항체Biolegend300405
CD56 항체Biolegend318303
CD66b 항체Biolegend305103
세포 여과기BiopioneeerDGN258367해동될 풀링되지 않은 냉동 PBMC 1mL당 1
필요 CPT 단핵 세포 준비 튜브BD Biosciences362753PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection Cryo Freezer Box에 대한 환자/치료 조건당 6개의 튜브 필요
Southern LabwareSB2CC-81PBMCBuffy Coat Collection
05-669-4550개의 cryovial 보유
DMSOInvitrogen15575020PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection에 대한 환자/치료 조건당 약 2.5mL 필요
DNase/RNase-Free 증류수Invitrogen10977015PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection의 환자/치료 조건당 약 2mL 필요
해동
할 냉동 PBMC 1mL당 약 9mL 필요EDTA 튜브BD Biosciences366643PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection에 대한 환자/치료 조건당 1개의 튜브 필요
FlavopiridolSigma-AldrichF3055-5MG
HLA-DR 항체Biolegend307609
Human Serum AlbuminGeminiBio800-120PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection에 대한 환자 또는 치료 조건당 약 25mL 필요
Human Trustain FcXBiolegend422301
IsopropanolSigma-AldrichW292912-1KG-KMr. Frosty
라벨 프린터PhomemoM110-WH
Live-Dead StainBiolegend423105
Mr. FrostyThermo Scientific5100-0001에 사용최대 18개의 튜브를 수용할 수 있습니다.
PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection의 환자/치료 조건에 따라 2개의 Mr. Frostys가 필요합니다.
Multidispense PipetteBrandtech705110
Multidispense Pipette TipsBrandtech705744PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection
P1000 PipetteGilsonF144059M
P20 PipetteGilsonF144056M세포 계수에 사용; 필요한 부피는 사용된 세포 계수 방법에 따라 다릅니다.
프린터 라벨PhomemoPM-M110-3020PBMC/Plasma/Buffy Coat Collection
해동될 풀링되지 않은 냉동 PBMC 1mL당 약 5개의 라벨 필요
RNase-Free EDTA (0.5 M)InvitrogenAM9260G약 40 &마이크로; L 해동할 냉동 PBMC 1mL당 필요
RNase-Free PBS (10X)InvitrogenAM9625해동할 냉동 PBMC 1mL당 약 1mL 필요
RNasinPromegaN2111
RPMICorning10-040-CVPBMC/Plasma/Buffy Coat Collection Transfer Pipettes Fisherbrand에 대한 환자 또는 치료 조건당 약 80mL 필요
13-711-7MPBMC/Plasma/Buffy Coat 수집 튜브 홀더에 대한 환자/치료 조건당 약 5개 필요
Endicott-Seymour14-781-15최대 80개의 CPT/EDTA 튜브 보유
1개가 필요합니다. 개 Cryotube Rack Fisherbrand에 대한 환자/치료 조건당 1개 필요 최대 에 대해 환자/치료 조건당 약 3개의 팁이 필요합니다.

참고문헌

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