2009년 9월 15일
이 프로토콜은에 microinjection과 고해상도 이미지의 사용에 대해 설명합니다 Drosophila melanogaster syncytial 배아.
이 절차는 30-60분 동안 신선한 포도 주스 플레이트에 배아를 채취하는 것으로 시작됩니다. 호수 케이지에서 플레이트를 제거한 후 젖은 브러시로 배아를 집어 이중 접착 테이프에 붙입니다. 코리온이 터질 때까지 핀셋의 절반을 사용하여 테이프 위로 배아 하나를 부드럽게 굴립니다.
배아를 집어 덮개에 부드럽게 놓습니다. het 접착제 층을 미끄러 뜨립니다. 배아가 충분할 때까지 이 과정을 반복합니다.
탈수 후 배아는 주입할 준비가 됩니다. 안녕하세요, 저는 캘리포니아 대학교 데이비스 캠퍼스 분자 및 세포 생물학과의 조나단 스컬리 박사 실험실의 잉그리드 브루스 머셔입니다. 오늘은 초파리 세포융합 배아를 마이크로 주입하는 절차를 보여드리겠습니다.
우리는 이 절차를 사용하여 유사분열에서 마이크로 ttes 및 승모판 기반 모터의 역할을 연구합니다. 예를 들어, 우리는 항체 또는 특정 유사 분열 단백질의 다른 억제제를 마이크로 주입합니다. 유사분열에 대한 억제제 효과를 분석함으로써 표적 단백질의 기능을 결정할 수 있습니다.
시작하겠습니다. 실험 2-3일 전에 준비를 시작하려면 플라스틱 병의 반대쪽에 약 1cm의 제곱미터로 두 개의 작은 구멍을 잘라 레이 케이지를 설정합니다. 면 조각으로 구멍을 채워 공기가 흐르도록 합니다.
파리를 병에 두드린 다음 포도 주스 접시로 덮습니다. 효모를 사용하면 다리 케이지를 실온에 보관하면 파리는 실험 하루 전에 최소 10일 동안 알을 낳습니다. 주사를 위해 바늘을 당기고 섭씨 4도로 유지하십시오.
실험 당일에는 바늘을 준비하고 로드합니다. 먼저 라벨이 붙은 튜불린을 냉동실에서 꺼내 얼음 위에 5-15분 동안 넣습니다. 다음으로, GPEM 버퍼로 희석한 다음 섭씨 13, 000 RPM에서 10-15 분 동안 원심 분리합니다.
마지막으로 바늘에 1-2마이크로리터를 넣고 섭씨 4도로 유지합니다. 바늘에서 온도에 의한 중합을 방지합니다. 커버 슬립을 설정하기 전에 이중 접착 테이프를 등록하고 100ml 병에 넣어 헵탄 접착제를 만드십시오.
약 50ml의 헵탄가를 넣고 병을 밀봉하고 며칠 동안 흔듭니다. 배아를 준비하기 전에 주입 전에 배아를 놓을 탈수 챔버를 만드십시오. 이렇게하려면 35mm 페트리 접시 안에 100mm 접시의 한 부분을 넣어 건조기 오른쪽의 높이가 테이블과 덮개보다 높지 않도록 테이블에 건조기 (오른쪽)를 추가합니다.
배아 준비를 시작하려면 먼저 매시간 포도 주스 플레이트를 효모로 교체하여 호수 케이지에서 배아를 채취하고, 채취 시작 후 약 2시간 후에 배아를 이미지화해야 합니다. 커버 슬립을 준비하려면 현미경의 한쪽에 놓고 네 모서리를 밀어 테이프로 붙여서 움직이지 않도록 합니다. 면봉 어플리케이터를 사용하여 헵탄 접착제 한 겹을 커버 슬립에 일렬로 놓습니다.
접착제는 점성이 없어야 하며 몇 초 안에 건조되어야 합니다. 너무 두꺼우면 헵탄을 더 넣으십시오. 마지막으로 덮개 옆의 슬라이드에 이중 접착 테이프를 붙입니다.
젖은 브러시로 미끄러지십시오. 포도 주스 접시에서 배아를 조심스럽게 집어 슬라이드의 이중 접착 테이프에 놓습니다. 다음으로, 핀셋의 절반을 사용하여 코리온이 끊어질 때까지 이중 접착 테이프 위로 배아를 굴립니다.
배아를 코리안 위로 부드럽게 굴려 핀셋에 달라붙도록 하고 덮개의 헵탄 접착제 위에 올려 놓습니다. 배아의 긴 쪽이 덮개 슬립의 긴 쪽과 평행하게 미끄러지도록 미끄러집니다. 10-20개의 배아를 한 줄로 놓습니다.
커버 슬립을 제거하고 탈수실에 3-8분 동안 넣습니다. 시간은 현지 습도와 주입할 양에 따라 다릅니다. 다음으로, 진공 그리스가 있는 금속 챔버에 커버 슬립을 놓습니다.
마지막으로, 추가 탈수를 방지하기 위해 배아를 헤일로 카본 오일로 덮습니다. 이제 배아를 주입할 준비가 되었습니다. 먼저, 16 x 대물렌즈 아래에서 배아를 찾습니다.
배아를 멀리 옮기고 초점면을 움직이지 않고 바늘을 찾습니다. 바늘을 중앙에 놓고 X 또는 Y 방향으로 움직이지 않고 위로 이동합니다. 바늘을 열려면 덮개 슬립의 가장자리를 시야에 넣되 바늘이 있을 위치는 안 됩니다.
그리고 바늘을 동일한 초점면으로 내립니다. 바늘에 닿을 때까지 커버 슬립을 매우 조심스럽게 움직여 부드럽게 부러뜨립니다. 바늘을 위로 움직입니다.
이제 배아를 시야에 가져와라. 바늘을 오일에 넣고 바늘에서 좋은 액체 방울이 나오도록 합니다. 배아를 바늘 속으로 꾸준히 이동시키고, 배아에 한 방울을 주입한 다음, 배아를 멀리 이동시킨다.
모든 배아를 주입한 후에는 60 또는 100 x 대물렌즈가 있는 컨포칼 현미경으로 관찰할 준비가 됩니다. 대조군 배아는 이 영화에 나오는 것과 같아야 합니다. 이것은 회전 디스크 컨포칼 현미경에서 100 x 대물렌즈로 이미지화된 GFP 튜불린 및 RFP 히스톤을 발현하는 배아입니다.
표시된 총 시간은 8분입니다. 극 간 거리의 플롯은 재현성이 매우 높으며 대조군 배아의 성공에 대한 신뢰할 수 있는 척도입니다. 주기 11에서 13에 대해 여기에 표시된 것과 같아야 합니다.
이 영화에는 또 다른 대조군 배아가 나와 있습니다. 이것은 KLP 61 FGFP를 발현하고 r Domine tubulin을 주입합니다. 이것은 또한 회전하는 디스크 컨포칼에서 100 x 대물렌즈로 이미지화되었으며 총 시간은 7분입니다.
이 필름은 Microinjection 직후에 획득되었으며 r Domine tubulin의 농도 구배는 영화 시작 부분에서 명확하게 볼 수 있습니다. 이러한 배아는 Klp 61 F 항체의 미세주입 후 Klp 61 F의 억제를 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 스핀들에서 Klp 61 FGFP가 손실되는 것을 볼 수 있습니다.
방금 초파리 절개 배아를 마이크로 주입하는 방법을 보여드렸습니다. 이 절차를 수행할 때 제어를 수행하고, 먼저 완충액 또는 루틴을 단독으로 주입하는 연습을 하고, 세포를 통해 유사분열이 정상적으로 진행되는지 확인하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 모든 주사가 신뢰할 수 있고 손상을 일으키지 않으면 억제제를 주입하고 특정 억제의 효과를 연구할 수 있습니다.
그게 다야. 시청해 주셔서 감사드리며 실험에 행운을 빕니다.
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이 프로토콜은 분열을 연구하기 위해 초파리(Drosophila melanogaster) 동수체 배아에 미세 주입 및 고해상도 이미징을 사용하는 방법을 설명합니다. 이 절차는 성공적인 이미징 및 분석을 보장하기 위해 배아를 주의 깊게 취급하는 것을 포함합니다.
This protocol enables functional interrogation of mitotic proteins in a rapid, synchronous in vivo system, supporting target validation through phenotypic readouts of protein inhibition. The syncytial Drosophila embryo provides a disease-relevant system for mechanistic de-risking of mitotic targets, allowing assessment of protein function prior to lead identification. Quantitative imaging of spindle dynamics offers predictive confidence in target essentiality and pathway involvement.
The method fits within early discovery to validate mitotic targets before assay development and lead identification stages, leveraging in vivo functionality.