Name: Microprism를 사용하여 딥 두피 레이어의 생체내 이미징에서 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-27T16:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 45 s
Description: 배우세요 마이크로프리즘을 이용한 생체내 뇌 피질 심층 이미징 기법을 통해 모든 피질층을 동시에 관찰하는 방법을 익히세요. 이 기술은 수지상 돌기 분석과 신경과학 연구에 활용됩니다.

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우리는 YFP 마우스를 제공 앤소니 J. Koleske, 박사 학위를 주셔서 감사합니다.

1 부 : Microprism의 광학 현미경 설정 <ol><li> 우리가 사용하는 마이크로는 Optosigma 공사 (그림 1)에서 구입한 BK7 유리로 만든 1 mm, 오른쪽 - 각도 프리즘입니다. 마이크로가 가능한 집게를 사용하여 처리됩니다. </li><li> 2,000 NM - microprism의 hypotenuse 400에서 이상 97%의 반사율을 제공하기 위해 향상된 은으로 코팅됩니다. 이것은 레이저 여기 광과 형광 방출 모두의 내부 반사를 제공합니다. </li><li> 마이크로 항상 가능하면 집게를 사용하여 처리됩니다. 장갑은 프리즘을 더럽히지 않으 항상 착용하고 있습니다. </li><li> 우리는 작은 동물 이미징 수있는 맞춤식 두 광자 현미경을 사용합니다. stereotactic 장치에 부착된 동물은, 3 축 전동 무대에서 배치됩니다. </li><li> 현미경은 ScanImage 소프트웨어를 실행하는 윈도우 PC에 연결됩니다. ScanImage는 Pologruto 외 1 Matlab로 작성된 이미지 수집 소프트웨어입니다. </li><li> microprism 이미징 위해, 우리는 1024 X 1024 512 X 512 픽셀의 해상도로 이미지를 수집합니다. 또한, 우리는 일반적으로 2 MS / 라인 또는 4 MS / 라인에서 스캔. </li><li> 목표의 두 가지 유형이 실험에서 사용됩니다 : <ul><li> 다양한 뷰 필드 이미징을위한 낮은 수치 구경 (NA) 공기 목적 (시약 및 장비의 표 참조). </li><li> 0 유발 구형 aberrations을 최소화 수있는 유리 보정 칼라와 높은 NA 공기 목적 - 유리 2mm (시약 및 장비의 표 참조). </li></ul></li><li> 동물이 낮은 배율 목적에 따라 이미징을위한 준비가되면, microprism 상단으로 레이저의 제곱 래스터 스캐닝 패턴을 맞춥니다. 이것은 동양에게 이미지를 도움 레이저 파워를 효율적으로 사용할 수 있도록합니다. </li><li> 유리 보정 칼라와 높은 NA의 목표를 사용하여 유리의 약 1mm에 대한 해결하기 위해 보정 칼라를 설정합니다. 형광 이미지가 실험 도중 나타나면, 하나주의 깊게 이미지 해상도를 극대화하기 위해 보정 칼라를 최적화하기 위해 현미경 내부에 도달할 수 있습니다. </li></ol> 2 부 : 비 생존 동물 수술과 Microprism 삽입 <ol><li> 전체 프로 시저의 길이는 초기 절개에서 이미지의 완성까지, 실험의 목표에 따라 달라집니다. 완료 40 분 - 그러나, 이외의 생존 수술과 microprism 게재는 약 30을 기대하실 수 있습니다. </li><li> 마우스 (P30 - P60)은 무게가 있고 anesthetized 적절하게 수술 절차에 적합 비행기에 마취제 (100 MG / kg)과 xylazine (10 MG / kg)의 IP 주사를 사용합니다. </li><li> 전체 실험을하는 동안, 동물은 마취 자사의 수준을 평가하기위한 모든 15~20분을 확인하여야한다. 동물에 반응하는 경우 회사 발가락 - 찔러봐, 마취제 / xylazine의 추가 복용이 필요합니다. 일반적으로 보완 복용량은 초기 복용량의 1 세번째이며 필요한 경우 즉각적인 IP 주사 주사기에 미리 준비하실 수 있습니다. </li><li> 마우스가 제대로 anesthetized되면​​, 동물의 머리에있는 머리카락의 대부분은 # 40 블레이드와 트리머를 사용하여 해제 면도 있습니다. </li><li> 나이르 ®은 이미징 동안 microprism의 방법으로 얻을 수 머리카락 무료로 표면을 만들 수 있도록 머리에 남아있는 머리카락이 적용됩니다. 5 분 후에, 나이르 ®은 목화 - 스쳐 면봉을 사용하여 닦아입니다. </li><li> anesthetized 동물이 제대로 마우스 stereotactic 장치에 배치됩니다. 수술 절차 및 이미징 세션 동안 동물은 섭씨 36 도에 설정 물이 채워진 가열 패드에 보관됩니다. </li><li> 제대로 자리에 고정 동물의 머리를 한 깨끗한 절개는 피부를 분리 두개골의 중간 라인 아래 메스를 사용하여 이루어집니다. </li><li> 3 % 과산화수소의 소량은 목화 - 스쳐 면봉에 위치하고 두개골과 피부 사이의 세포막을 치워로 두개골에 적용됩니다. </li><li> 과산화수소는 bregma, craniotomy을 수행하고 microprism를 삽입할 위치를 파악하는 주요 랜드마크를 공개하는 데 도움이됩니다. </li><li> craniotomy이 시작되기 전에, 귀 바, 물린 표시줄이 올바르게 그것은 테이블과 기본적으로 수준 그러한 노출된 두개골을 기울 조정됩니다. 이것은 craniotomy을위한 더 나은 플랫폼을 제공합니다. 또한, 이것은 들어오는 여기 빛이 프리즘 직각의 상단 표면을합니다. 이것은 이미징하는 동안 광학 aberrations을 최소화하는 데 도움이됩니다. </li><li> 작은 치과 버는 (~ 0.8 mm의 머리 크기) 유연한 확장 팔을 사용하여 Dremel ® 도구에 연결되어 있습니다. craniotomies 위해, 우리는 약 7,000 만 RPM으로하는 속도를 설정합니다. </li><li> 광장 홈이 뼈 설립 때까지 치과 버는 두개골을 따라 미끄러져입니다. 광장의 양쪽 길이가 약 2~3mm하고 1.5 mm의 꼬리와 bregma하는 측면 1mm를 중심으로. </li><li> 작은 오프닝이 두개골을 통해 만들어진 때까지 뼈를 벗겨 계속. 포셉 CA의 쌍N 떨어져 두개골의 뼈 떼어 리프트. </li><li> 두라는 microprism가 피질에 삽입하기 전에 삭제해야합니다. 출혈이 가장 피가 몇 분 동안 표면에 응고시키는에 의해 제어됩니다. 그 후, coagulated 혈액은 microprism를 삽입하기 전에 수술 스폰지를 사용하여 제거됩니다. </li><li> 피질과 프리즘의 정렬을 지원하기 위해, microprism의 수직 얼굴 포셉의 처리에 평행하게 줄지어있다. </li><li> 프리즘의 상단이 neocortical 표면 플러시 때까지 제대로 개최 프리즘으로 전체 microprism가 삽입됩니다. </li><li> 제대로 삽입되면, microprism는 적절한 위치에 유지됩니다. 그 결과 모든 출혈이 최소화되고 작은 수술 스펀지로 흡수 수 있습니다. 프리즘은 장소에 일단 동물 이미징을위한 준비가 된 것입니다. </li><li> microprism가 동물에 사용되고 나면, 그것은 여러 번 다시 사용할 수 있습니다. 그러나, 그것은 제대로 남아있는 생물 학적 물질을 제거하는 청소해야 없습니다. 이것은 메탄올에 물놀이 다음 HCL 산의 작은 볼륨으로 프리즘 디핑하여 수행할 수 있습니다. 청소 microprism 그런 다음 나중에 사용하기 전까지는 렌즈 종이에 싸서 수 있습니다. </li></ol> 파트 3 : 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1 : 오른쪽 앵글 microprism 이미지. 본 실험에 사용되는 프리즘은 여기 및 방출 빛의 내부 반사를 허용하도록 hypotenuse에 고급 실버 코팅 한 mm, BK7 유리 프리즘입니다. <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2 : 레이어 V YFP 피라미드의 뉴런 이미지. 대뇌 피질의 표면에서 깊이 900 μm의 - microprism과 함께 다양한 현장의 뷰 영상은 피라미드 세포 기관 ~ 800의 큰 인구를 보여줍니다. 또한, 계층으로까지 확대 혀끝의 dendrites는 I도 해결할 수 있습니다. 스케일 바 = 200 μm의. <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig3.jpg" alt="그림 3" /> 그림 3 : microprism 공간적 해상도 레이어 V 피라미드의 뉴런에 혀끝의 dendrites에 돌기 쪽이를 해결하는 데 충분한 제공과 함께 사용 높은 수치 조리개 목적. 스케일 바 = 10 μm의. <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig4.jpg" alt="그림 4" /> 그림 4 : microprism와 형광 염료의 꼬리 - 정맥 주사를 사용하여 얻은 이미지. 이미지가 대뇌 피질을 통해 볼륨에서 분기 깊은 두뇌 지역 및 작은 모세 혈관의 확장 수직, 구경이 큰 선박을 보여줍니다. 스케일 바 = 200 μm의. <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig5.jpg" alt="그림 5" /> 그림 5 : 높은 수치 조리개 목표를 사용하여 네크로 텍스의 모세 혈관의 네트워크는보다 세부 군데하실 수 있습니다. 스케일 바 = 50 μm의. <img src="/files/ftp_upload/1509/1509fig6.jpg" alt="그림 6" /> 그림 6 : 마이크로는 또한 혈관을 통해 흐르는 영상 붉은 혈액 세포 (RBCs)에 있습니다. RBCs은 형광 염료를 흡수하지 않으며 따라서 선박에 걸쳐 어두운 줄무늬로 볼 수 있습니다. 그릇에 걸쳐 라인 스캔하여, 하나는 RBC 유량 및 속도의 측정을 얻을 수 있습니다. 스케일 바 = 10 μm의 (상단 및 하단 이미지 가로 막대) 250 MS (아래 이미지에 수직 막대).

<ol><li>Pologruto, T. A., Sabatini, B. L., Svoboda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ScanImage%3A+flexible+software+for+operating+laser+scanning+microscopes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Eng+Online%22%5BJournal%5D)">ScanImage: flexible software for operating laser scanning microscopes.</a> Biomed Eng Online. 2, 13-13 (2003).</li>
<li>Feng, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+neuronal+subsets+in+transgenic+mice+expressing+multiple+spectral+variants+of+GFP%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP.</a> Neuron. 28 (1), 41-41 (2000).</li>
<li>Kleinfeld, D., Mitra, P. P., Helmchen, F., Denk, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluctuations+and+stimulus-induced+changes+in+blood+flow+observed+in+individual+capillaries+in+layers+2+through+4+of+rat+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Fluctuations and stimulus-induced changes in blood flow observed in individual capillaries in layers 2 through 4 of rat neocortex.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (26), 15741-15741 (1998).</li>
</ol>

동물 실험은 예일 대학의 IACUC에 의해 명시된 지침과 규정에 따라 수행되었다.

이미징 실험에서 microprism를 사용하면 비교적 간단하고 네크로 텍스의 생체내 연구에 많은 장점을 제공합니다. 이 기술을 사용하는 대표적인 예는 레이어 V 피질 뉴런에 노란색 형광 단백질을 표현하는 유전자 변형 생쥐에서 찍힌 사진을 포함합니다. 마이크로 사용하여 하나는 레이어 V 대형 피라미드 세포 기관의 집합, 대뇌 피질의 표면 아래 약 1mm를 볼 수 있습니다. 또한 플로팅 (그림 2)에 diverging하기 전에 모든 표면 레이어를 통해 연장 혀끝의 dendrites 있습니다 보았다. 이러한 실험에 사용되는 마우스는 계층 V 뉴런 (YFP - H 2) YFP을 표현하기위한 유전자 변형 동물입니다. 이러한 YFP - H의 마우스와 유리 보정 칼라와 높은 수치 조리개 목표를 사용하여 이미지보다 세부 dendrites을하는 것도 가능하고 돌기 쪽이 (그림 3)을 해결합니다. 하나는 또한 플루오레신 - dextran은 설립 꼬리 - 정맥 주사 기법을 사...

<table><tbody><tr><td>강화 은 반사 코팅 포함-(R77)</td><td>OptoSigma Corp. (Santa Ana, CA)</td><td>055-0010</td><td>강화 은 반사 코팅 포함-(R77)</td></tr><tr><td>Fluorescein-dextran</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>FD70</td><td>70 kDa </td></tr><tr><td>0.28 NA, 4x 공기 대물렌즈</td><td>Olympus Corporation</td><td>XLFLUOR 4x/340</td><td></td></tr><tr><td>0.60 NA, 40x 공기 대물렌즈</td><td>Olympus Corporation</td><td>LUCPLFLN</td><td>0-2 mm 커버글라스 보정 포함</td></tr></tbody></table>

microprism를 사용하여 딥 두피 레이어의 생체내 이미징에서

In vivo Imaging of Deep Cortical Layers using a Microprism

우리는 microprism 모양의 깊은 두뇌 이미징 프로브를 사용하여 대뇌 피질의 조직의 생체내 이미징에 대한 프로토콜을 제시한다. 마이크로의 크기는 1 mm이며, 여기 및 방출 빛의 내부 반사를 허용하도록 hypotenuse에 반사 코팅 있습니다. 관점 microprism 프로브가 동시에 이미지를 여러 피질 층은 일반적으로 전용 슬라이스 준비 모습. 이미지가 크고 회수 필드 -보기 (~ 900 μm의). 또한, 우리는 아닌 생존 수술에 대한 자세한 내용 및 현미경 설정을 제공합니다. 대표 결과는 표면 피질 층을 통해 확장하고 플로팅에 걸쳐 자신의 혀끝의 dendrites를 보여주는 뜻이 - 1 YFP - H 마우스에서 레이어 V 피라미드의 뉴런의 이미지가 포함되어 있습니다. 해상도 계층 V의 뉴런의 소마 근처 이미지 돌기의 쪽이하기에 충분했다. 형광 염료의 꼬리 - 정맥 주입은 피질의 혈관의 복잡한 네트워크를 보여줍니다. 모세 혈관을 통해 흐르는 적혈구 (RBCs)의 라인 스캔은 RBC 속도 및 유량 속도를 얻을 수를 보여줍니다. 이 소설 microprism 프로브 깊은 세포 구조와 생체내에서 대뇌 피질의 기능을 시각화의 우아한 아직 강력한 새로운 방법입니다.

마우스를 네크로 텍스에 삽입 마우스 오른쪽 단추로 각도 마이크로 일반적으로 통에 발견 관점 여러 피질 레이어의 깊은 화상을 허용합니다. 원 - mm 마이크로는 다양한 현장의 전망 (~ 900 μm의)와 돌기 쪽이를 해결하기 위해 충분한 공간 해상도를 제공합니다. 우리는 계층 V의 연결 이미지와 마이크로를 사용하여 neocortical 혈관 영상을 보여줍니다.

Microprism를 사용하여 딥 두피 레이어의 생체내 이미징에서

마이크로프리즘 형태의 심부 뇌 영상 프로브를 이용한 피질 조직의 생체 내(in vivo) 영상 촬영 프로토콜을 제시합니다. 마이크로프리즘의 크기는 1mm이며...

형광 현미경 기술은 조직 내부 깊숙한 곳에 있는 구조, 특히 뇌 조직과 같이 빛 산란이 심한 물질을 이미지화하는 능력이 제한적입니다. 다광자 현미경의 경우에도 신피질 표면에서 500 µm보다 깊은 곳에 위치한 신경 구조의 고품질 생체 내(in vivo) 이미지를 얻는 것은 매우 어려울 수 있습니다. 여기서 녹색 선은 500 µm의 깊이를 나타냅니다.일반적으로 신피질의 4층, 5층 및 6층은 표면으로부터 500 µm 이상의 깊이에 위치합니다. 본 영상에서는 신피질에 삽입된 1 mm 유리 마이크로 프리즘이 어떻게 표층 및 심층 피질층으로 빛을 전달하고 다시 밖으로 유도하는지 보여드리겠습니다. 마우스에 이 기술을 적용하면 1 mm의 시야각을 확보할 수 있으며, 일반적으로 뇌 절편 조직에서만 볼 수 있는 이미지 관점에서 6개의 피질층 전체를 동시에 시각화할 수 있습니다.마이크로 프리즘은 수지상 돌기 가시와 미세 모세혈관을 통한 적혈구 흐름을 분해할 수 있는 공간 해상도를 유지하면서, 긴 정단 수지상 돌기를 가진 5층 피라미드 세포체와 신피질의 복잡한 혈관 네트워크를 시각화할 수 있는 넓은 시야를 제공합니다. 저는 예일 대학교 생명공학과 마이클 레빈(Michael Levine) 교수 연구실의 대학원생 토마스 치아(Thomas Chia)입니다. 이번 영상에서 다룰 프로토콜은 1mm 직각 유리 마이크로 프리즘을 사용하여 생쥐 신피질 1mm 깊이에 있는 구조의 형광 이미지를 생성하는 방법에 관한 것입니다.사용되는 마이크로 프리즘은 Opto Sigma Corporation에서 구입한 BK7 유리의 1mm 직각 프리즘입니다. 마이크로 프리즘은 가능한 한 핀셋을 사용하여 취급합니다. 마이크로 프리즘의 빗변은 400에서 2000 nanometers 범위에서 97% 이상의 반사율을 제공하도록 강화 은으로 코팅되어 있습니다.이는 레이저 여기광과 입사된 형광 모두의 내부 반사를 제공합니다. 당사는 소동물 이미징이 가능한 맞춤 제작된 이광자 현미경을 사용합니다. 정위 고정 장치에 고정된 동물은 3축 전동 스테이지 위에 배치됩니다.현미경은 scan image 소프트웨어가 실행 중인 Windows PC에 연결되어 있습니다. scan image 소프트웨어는 Polo Gudo 등이 MATLAB으로 작성한 이미지 획득 소프트웨어입니다. 마이크로 프리즘 이미징을 위해 1024 x 1024 픽셀 또는 512 x 512 픽셀의 해상도로 이미지를 수집합니다.또한, 일반적으로 라인당 2밀리초 또는 4밀리초의 속도로 스캔합니다. 이 프로토콜의 중요한 측면은 마이크로 프리즘과 함께 사용하는 현미경 대물렌즈의 종류입니다. 실험에는 두 종류의 대물렌즈가 사용됩니다.왼쪽의 대물렌즈는 넓은 시야 이미징을 위한 저개구수 공기 대물렌즈로, 이 경우에는 4x 0.28 NA Olympus 대물렌즈입니다. 오른쪽의 대물렌즈는 0에서 2mm 두께의 유리로 인해 발생하는 구면 수차를 최소화할 수 있는 유리 보정 칼라가 장착된 40x 0.60 고개구수 공기 대물렌즈입니다. 마우스 수술 및 마이크로 프리즘 삽입을 준비하기 위한 첫 번째 단계는 동물을 수술 절차에 적합한 수준으로 적절히 마취시키는 것입니다.먼저, 설정된 투여량에 따라 동물의 체중을 기록합니다. 적절한 양의 케타민 및 자일라진 혼합액을 주사기에 흡입합니다. 28 gauge 바늘을 사용하여 마취제를 IP 주사로 투여합니다.마우스가 수술 절차에 적합한 마취 수준에 도달하면, 40번 날이 장착된 트리머를 사용하여 동물의 머리에 있는 털의 대부분을 깎아냅니다. 그 후 머리에 남은 털에 Nair를 도포하여 마이크로 프리즘의 방해가 될 수 있는 털이 없는 표면을 만듭니다. 이미징 중 5분이 지나면 면봉을 사용하여 NA를 닦아내고, 마취된 동물을 마우스 정위 고정 장치에 적절히 배치합니다.수술 절차 및 영상 촬영 세션 동안, 동물은 36°C로 설정된 수냉식 가열 패드 위에 유지됩니다. 동물의 머리를 적절하게 고정한 후, 두개골의 정중선을 따라 한 번에 깨끗하게 절개합니다. 피부를 분리하기 위해, 면봉에 3% Hydrogen peroxide를 소량 묻혀 두개골에 도포함으로써 두개골과 피부 사이의 막을 제거합니다.과산화수소는 또한 두개골 절개술을 수행하고 마이크로 프리즘을 삽입할 위치를 파악하는 데 중요한 지표인 BMA를 확인하는 데 도움을 줍니다. 두개골 절개술을 시작하기 전에, 노출된 두개골이 기본적으로 테이블과 수평이 되도록 귀 고정 바와 바이트 바를 적절히 조정합니다. 이렇게 하면 두개골 절개술을 위한 더 나은 기반을 확보할 수 있습니다.두개골 절개술을 위해 소형 치과용 버(burr)를 드레멜(Dremel) 툴에 연결합니다. 속도는 약 7,000에서 10,000 RPM으로 설정합니다. 뼈에 정사각형 홈이 형성될 때까지 치과용 버로 두개골 표면을 얇게 깎아냅니다.정사각형의 각 변은 약 2~3 mm 길이이며 중앙에 위치합니다. 1.5 mm의 coddle과 1 mm의 lateral rema 부위의 뼈를 계속해서 얇게 깎아 두개골에 작은 구멍이 생길 때까지 진행합니다. 포셉을 사용하여 골편을 들어 올릴 수 있습니다.마이크로 프리즘을 피질에 삽입하기 전에 경막을 제거해야 합니다. 출혈은 혈액이 표면에서 몇 분 동안 응고되도록 두어 조절하는 것이 가장 좋습니다. 그 후, 수술용 스펀지를 사용하여 응고된 혈액을 제거함으로써 프리즘과 피질의 정렬을 돕습니다.마이크로 프리즘의 수직면을 포셉의 손잡이와 평행하게 맞춥니다. 프리즘을 제대로 잡은 상태에서, 프리즘의 상단이 신피질 표면과 일치할 때까지 마이크로 프리즘 전체를 삽입합니다. 여기서 신피질에 거치된 프리즘을 확인할 수 있습니다.마이크로 프리즘이 올바르게 삽입되면 적절한 위치에 유지되어야 합니다. 이때 발생하는 출혈은 극소량이며, 작은 수술용 스펀지로 흡수할 수 있습니다. 프리즘이 제자리에 배치되면, 동물 영상 촬영 준비가 완료됩니다.저배율 대물렌즈 하에서 레이저가 뇌 표면의 마이크로 프리즘 위를 래스터 스캔하는 것을 확인할 수 있습니다. 다음은 황색 형광 단백질을 발현하는 형질전환 생쥐로부터 얻은 대표적인 이미지 예시입니다. 마이크로 프리즘을 사용한 피질 5층 뉴런의 경우, 피질 표면에서 거의 1mm 아래의 5층에 모여 있는 커다란 피라미드 세포체들을 관찰할 수 있습니다.또한, 모든 표층을 통해 뻗어 나가다가 다발(Tufts) 형태로 갈라지는 정단 수지상 돌기들이 보입니다. 유리 보정 칼라가 있는 고개구수 렌즈를 사용하면, 이 경우 수지상 돌기 가시(dendritic spines)를 분해하여 관찰할 수 있습니다. 5층 파라메탈 뉴런(parametal neurons)의 정단 수지상 돌기에서 수지상 돌기 가시는 서브 마이크론 구조이며, 이미지 상에서 여러 개가 노란색 화살표 머리로 표시되어 있습니다. 또한 확립된 꼬리 정맥 주사법을 이용하여 플루오레세인 덱스트란(fluorescein dextran)과 같은 형광 염료로 피질 혈관을 염색할 수 있습니다.이 기술을 사용하면 심층부에서 PIA를 향해 뻗어 나와 미세 모세혈관 네트워크를 형성하는 더 큰 구경의 혈관들을 관찰할 수 있습니다. 신피질의 이러한 섬세한 미세 모세혈관 네트워크는 높은 개구수 대물렌즈를 사용할 때 가장 잘 보입니다. 또한, 라인 스캐닝을 통해 신피질 심층 모세혈관의 적혈구 속도와 유량을 측정하는 것이 가능합니다.빨간색 선은 마이크로 프리즘을 통한 모세혈관 이미지상의 라인 스캐닝 패턴을 나타냅니다. 적혈구는 형광 염료를 흡수하지 않으므로 어두운 줄무늬로 나타납니다. 하단의 이미지는 한쪽 차원은 공간적 치수로, 다른 쪽 차원은 시간적 치수로 설정하여 라인 스캔을 수행한 결과입니다.이것으로부터 얻은 AE를 통해 모세혈관을 통과하는 적혈구의 플럭스와 속도를 계산할 수 있습니다. 마이크로 프리즘은 동물에게 사용한 후 여러 번 재사용할 수 있습니다. 다만, 남아 있는 생물학적 물질을 제거하기 위해 적절히 세척해야 합니다.이는 프리즘을 소량의 염산에 담근 후, 이어서 메탄올에 담가 수행할 수 있습니다. 세척된 마이크로 프리즘은 사용 전까지 렌즈 페이퍼로 감싸 보관합니다. 이것으로 생체 내 마우스 피질 이미징을 위한 마이크로 프리즘 사용 프로토콜을 마칩니다.이미징 실험에서 마이크로 프리즘을 사용하는 것은 비교적 간단하며, 신피질에 대한 생체 내(in vivo) 연구 시 많은 장점을 제공합니다. 본 영상이 여러분에게 흥미로운 기술이 되었기를 바라며, 향후 여러분의 실험실에서 유용하게 활용하시길 바랍니다. 시청해 주셔서 감사합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

네크로 텍스의 microcircuits의 네트워크 역학을 이해하기 위해서는 동시에 뉴런의 다수의 활동을 기록하는 것이 필수적입니다. - 생체내에서 두 광자 칼슘 이미징 하나는 단일 셀 해상도 고밀도의 연결 인구의 활동을 기록하는 수있는 유일한 방법입니다.

레이어의 VIVO에서 2 광자 칼슘 이미징 마우스의 2 / 3

이 비디오 및 보충 자료에서 우리는 만성에 대한 프로토콜을...

Thinned - 해골 준비를 사용하여 마우스 시각 피질의 만성 이미징

뉴런의 경험에 의존하는 분자 변화는 행동 문제에 대한 응답으로 적응하는 뇌의 기능에 필수적입니다.

두피 뉴런에서 생체 내 두 - 광자의 영상은 경험에 의존 분자 변경

살아있는 동물의 타임랩스 영상은 온전한 뇌의 구조적 재구성에 대한 귀중한 정보를 제공합니다. 여기에서는 이광자 현미경으로 살아있는 쥐 피질의 형광 표지된 시냅스 구조를 경두개 이미징할 수 있는 얇은 두개골 제제를 소개합니다.

두 광자<em&gt; 생체</em&gt; 시닝 두개골 준비를 사용하여 마우스 피질 돌기 쪽의 영상

여기서는 자유롭게 움직이는 마우스에서 여러 피질 층에 걸쳐 세포 - 해상도로 대규모 Ca 2+ 영상을 수행하는 절차를 제시합니다. 이식 프리즘 프로브와 결합 된 소형 헤드 장착 현미경을 사용하여 수백 개의 활성 세포를 동시에 관찰 할 수 있습니다.

다층 피질 칼슘<sup&gt; 2+</sup&gt; 프리즘 프로브 및 소형 형광 현미경으로 자유롭게 움직이는 마우스에서 이미징

여기 우리는 지우기, 형광 라벨, 조직과 마우스 뇌 조직, 종류는 피 질에서의 3 차원 조직의 시각화를 가능 하 게의 대규모 영상에 대 한 절차를 설명 합니다.

마우스 피 질 세포 조직의 대형 3-차원 영상

우리는 현재 vivo에서 2 광자 영상 이미징 신생아 쥐의 대뇌 피 질에 대 한 프로토콜. 이 메서드는 대뇌 피 질의 뉴런, 신경 역학 및 질병 모델에서 신경 역학에 변화를 제어 하는 분자 메커니즘의 발달 역학 분석에 적합 합니다.

Vivo에서 신생아 쥐에 있는 대뇌 피 질의 뉴런의 두 광자 영상

이 논문은 정밀하게 제어된 수술과 이광자 현미경을 사용하여 마우스 해마 CA1에서 휴식 미세아교세포를 만성적으로 생체 내에서 관찰하는 방법을 설명합니다.

생체 내 마우스 해마에서 미세아교세포의 만성 이광자 이미징

헤드 플레이트 및 단일 광자 및 이광자 현미경과 호환되는 광학 설계와 통합될 경우, 마이크로프리즘 렌즈는 머리가 고정된 상태에서의 잘 제어된 실험이나 자유롭게 움직이는 동물의 자연스러운 행동 작업을 포함하여 다양한 조건에서 수직 컬럼의 신경 반응을 측정하는 데 상당한 이점을 제공합니다.

자유롭게 움직이고 머리가 고정된 동물에서 마이크로프리즘을 사용하여 식별된 신경 집단의 장기 이미징

이 프로토콜은 형광 스티렌 미세구를 이용한 생 체 내 2광자 현미경 영상에 최적화된 만성 두개골 창문 및 미세혈관 색전증 마우스 모델에 대한 단계별 접근법을 상세히 설명하고 있습니다.

형광 폴리스티렌 미세구를 이용한 생체 내 2광자 현미경용 미세혈관 색전증 마우스 모델

이 프로토콜은 사회적 상태 조작(사회적 고립 및 사회적 재결합) 중 마우스의 소형화된 현미경(미니스코프)을 이용한 시상하부 신경세포의 생체 내 칼슘 이미징을 상세히 다룹니다. 이 방법은 사회적 욕구와 사회적 포만을 나타내는 시상하부 활동을 단일 뉴런 해상도로 영상화할 수 있게 하여 사회적 항상성의 기전적 연구를 가능하게 합니다.

생체 내 쥐의 사회적 행동 이해를 위한 시상하부 내 소형 현미경으로 칼슘 영상 촬영

배우세요 마이크로프리즘을 이용한 생체내 뇌 피질 심층 이미징 기법을 통해 모든 피질층을 동시에 관찰하는 방법을 익히세요. 이 기술은 수지상 돌기 분석과 신경과학 연구에 활용됩니다.

Microprism를 사용하여 딥 두피 레이어의 생체내 이미징에서

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