Name: Murine 배아 줄기 세포로부터 조혈 줄기 세포의 유도 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-02-25T00:00:00.000+00:00
Duration: 22 min 6 s
Description: 배우세요 마우스 배아 줄기 세포에서 조혈 줄기 세포를 유도하는 방법을. 배아체 형성, HoxB4 레트로바이러스 감염, OP9 기질 세포 배양을 통해 이식 가능한 세포군을 확보하고 치사량 방사선 조사 마우스의 조혈계를 재구성하는 프로토콜입니다.

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배아 줄기 세포의 분화 <ol><li> ESC 트립신과 치료를 통해 배아 줄기 세포 (ESC)의 근처에 합류 플라스크를 수집합니다. </li><li> 차별화 미디어 5 ML에서 세포를 Resuspend가 아닌 젤라틴 코팅 T25로 전송할 수 있습니다. 37 품어 ° C를 45 분 정도 사용합니다. 뜨는 회수하여 원심 분리를 통해 세포를 수집합니다. 참고 : ESC 문화에서 마우스 배아 섬유아 세포 (MEFs)가 아닌 젤라틴 코팅 T25에 쉽게 부착하고 있으므로이 도금 단계에서 문화 고갈됩니다. 당신이 MEFs에 culturing 귀하의 ESC를하지 않은 경우, 당신은 사전 플레이트를 건너뛸 수 있습니다. </li><li> 333,333 cells/50 ML에서 차별화 미디어에 Resuspend MEF - 고갈 ESC. 이 농도 100 ESC/15 ML 결과. </li><li> 를 사용하여 다중 채널 pipettor, 15cm이 배양 접시에 100 cells/15 ML 드롭에 플레이트 ESC. 8 채널 pipettor으로, 당신은 접시마다 방울의 18-22 행 (접시 당 5ml에 대한)에 대한 맞게 수 있어야합니다. 참고 :이 프로토콜의 경우, 방울 2-5 15cm이 요리 충분보다되며, 2-5 X 10 6 6 번째 EB - 파생 세포를 얻을 것입니다. </li><li> 부드럽게 방울을 반전하는 접시를 플립. ° C 5 % CO 2 48 시간 37 알을 품다. </li><li> 풀 부드럽게 15 ML 원뿔 관에 접시와 전송을 소용돌이로 방울. PBS의 4-6 ML과 접시를 씻어와 같은 15 ML 원뿔 추가할 수 있습니다. 참고 : 다섯 매달려 드롭 판까지 풀 수 있습니다. 그들이 차별을 계속하고 너무 집중되어있다면 그들은 큰 대단히 짧은 시간을 형성하는 경향으로 EBS는 자랄거야. </li><li> 풀링 EBS 중력 (약 10 분)에 의해 정착하도록 허용합니다. EBS 방해없이 뜨는을 대기음. 부드럽게 10 ML 차별 미디어와 10cm 비 점착 성의 배양 플레이트에 전송에 resuspend. </li><li> 37 50 RPM과 부화에 플레이트 흔드는 일에 배양 접시 ° C 5 % CO 2. </li><li> 24 시간 후에 (분화의 일 사), 소용돌이 모양의 접시는 페트리 접시의 중앙에 EBS를 집중. 조심스럽게 교환 5 ML 신선한 차별화 미디어와 미디어의 50 % (5 ML). 이틀 더 배양기에 플레이트를 반환합니다. </li></ol> MSCV - HoxB4 - IRES - GFP와 EB 해리와 감염 <ol><li> 분화의 6 번째에서 15 ML 원뿔 관에 EBS를 전송할 수 있습니다. 중력에 의해 해결하도록 허용합니다. </li><li> 10 ML PBS에서 미디어 및 resuspend을 대기음. EBS는 중력에 의해 다시 정착하도록 허용합니다. 대기음 PBS. </li><li> 250 ML 분리 효소 믹스 1 ML PBS를 추가합니다. 가끔 효소와 EBS를 섞어 관을 소용돌이, 20 분 동안 37 ° C의 물을 욕조에 품어. </li><li> 8 ML 효소 무료 분리 버퍼를 추가합니다. </li><li> EBS 완전히 dissociated 때까지 혼합물은 (; 과도한 pipetting는 EB - 유도 세포 준비 내에 사망 증가 10 번) 5 ML의 피펫을 사용하여 가루로 빻다. <ol><li> 혼합물은 EBS가 교제를 끊다로 세포 흐리고 될 것입니다. </li><li> 분쇄하는 동안 원뿔 튜브의 바닥에 대한 피펫 팁을 게재하면 크게 분리를 촉진하는 전단 힘을 만들어집니다. </li></ol></li><li> 원심 분리를 통해 세포를 수집합니다. </li><li> Resuspend 10 % IMDM 5 ML에서 세포를 EB - 파생와 trypan 파랑 배제를 사용하여 계산 참고 : 분화의 일 넷이서 6 번째 사이에, EBS cavitate있는가, 일 6 시에, apoptosis와 세포 death.Thus 많은 양의 결과 이상 EB - 파생 세포의 30 % trypan과 청색의 착색 수 있습니다. </li><li> Resuspend EB - 파생 100,000 세포에서 세포 / 2 ML 10% IMDM + 바이러스 뜨는 같은 것을 뫄 50-10의가 8 MG / ML의 최종 농도 프로타민 황산을 achieved.Add입니다. 참고 : 판 사 6 - 잘 접시 (물론이 ML / 가정) 정도 EB / 바이러스 뜨는 믹스를 준비합니다. </li><li> 플레이트 2 ML EB / 바이러스 뜨는 믹스 당 우물의 OP9 기질 세포 (아래 참조)로 사전 도금 사 육 잘 접시. </li><li> 90 분간 상온에서 2,500 rpm으로 번호판을 원심 분리기. 37 인큐베이터에 번호판을 전송 ° C 5% CO 2. </li><li> 4-6시간 후, 접시에서 뜨는 수확하고 원심 분리를 통해 정지에 남아있는 잠재적인 세포를 수집합니다. </li><li> 48 ML 10 % IMDM에 Resuspend 펠렛 (작은 수) + 크린 시토킨. 2 ML 하는걸 / 잘 감염이 수행되었으며 뜨는 수집어진 오리지널 사 6 잘 접시에 resuspension니다. 참고 : 항상 사용 시간에 신선한 10% IMDM + 크린 시토킨를 준비합니다. </li><li> ° C 5 % CO 2 이레 동안 37 번호판을 품어. 식민지 하루 푸르 포스트 감염 및 대형 및 7 일째에 의해 잘 형성에 의해 명확해야합니다. 강력한 확장 / 잘 일 7 40-60 식민지를 얻을 것입니다. </li><li> 7 일째 이후의 감염에 트립신과 치료의 모든 우물의 모든 세포를 (OP9 기질 포함) 수집 및 수영장. 참고 : 뜨는 또는 트립신 treatment.At 이때 문화 중에 고용 PBS 세척을 삭제하지 마십시오, 일부 식민지는 느슨하게 자기편 수 많은 세포가 floa있다suspension.Collect과 수영장 모든 세척 및 뜨는에서 팅은 잠재적으로 가치있는 세포가 폐기되지 않도록합니다. </li><li> 8 ML 신선한 10 % IMDM에 Resuspend 세포 + 크린 시토킨. 네 T75 flasks 2 개의 MLS / 플라스크를 배포합니다. 각 플라스크에 추가 13 MLS 10 % IMDM의 이상 크린 시토킨를 추가합니다. 37 품어 ° C 5% 사흘 동안 CO 2 (10 일 게시물 감염 총). </li></ol> 문화 OP9 기질의 도금 <ol><li> 20% - 멤의 표준 프로토콜에 따라 OP9 기질을 유지합니다. confluency로 성장하면 OP9 전지는 속성을 변경합니다. 항상 더 이상 1시 3분 이상의 분할에 confluency 80 % 분할. </li><li> 24 이전에 / 잘 20% - 멤 네 개의 6 - 잘 접시의 MSCV - HoxB4 - IRES - GFP, 플레이트 25,000 OP9 세포와 6 번째 EB - 파생 세포의 감염 시간. </li></ol> 수집, 분류 및 이식 <ol><li> 트립신과 치료를 통해 열흘 동안 OP9 기질에 대한 확장된 세포를 수집합니다. 세포를 세어보세요. 참고 : 뜨는 또는 PBS를 폐기하지은 트립신 처리하는 동안 고용 씻는다. 문화의이 시점에서, 일부 식민지는 느슨하게 자기편 수 있으며 suspension.Collect과 수영장에 잠재적으로 가치있는 세포가 폐기되지 않도록 모든 세척 및 뜨는을 부동 많은 세포가있다. 참고 : 좋은 확장 160-200 X 10 6 세포의 총, 40-50 X 10 6 세포 / 감염 원래 6 자 플레이트 사이에 양보해야합니다. </li><li> 세포는 프로토콜이 시점에서 표준 기술에 따라 자기 구슬 선택이나 외과 통해 fractionated 수 있습니다. </li><li> 이식의 경우, 방사선 조사 2.5 시간의 9.25 GY의 분할 선량의 대상이 Rag-2/gc 결함 수신자 (15~22g 사이 무게)로 역전사 궤도 또는 꼬리 정맥 주입을 통해 세포를 제공합니다. 분리. 참고 : 동물의 무게는 방사선 조사의 시간에 15~22그램 사이에 떨어질 것이 중요 좋습니다. 그들이 22g보다 큰 경우, 9.25 GY 해당 절제를 보장하고 세포가 치명적인 조사 및 / 또는 합치다 조혈 구획의 구조를 중재하지 않을 수 있습니다 방사선의 충분한 복용량되지 않습니다. 큰 동물을 이식하는 경우, 적절한 방사선 선량은 실험적으로 결정되어야합니다. </li><li> 2-5 X 10 6 세포 / 동물의 최소 복용은 치명적인 조사에서 구출을 보장하기 위해 필요합니다. 세포를 fractionating 경우, 2-5 X 10 6 세포에 해당하는 금액 (예 : 관심의 인구가 세포의 unfractionated 수영장의 10 %를 대표하는 경우, 2-5 X 10 5 세포 / 동물을 주사) 주사. 참고 :&gt; 2 주입하면 X 10 6 세포는 항상 세포의 높은 번호가 복고풍 - orbitally 전송하는 경우 발생할 수 있습니다 궤도에서 기형 종의 형성을 피하기 위해 꼬리 정맥을 통해 주입. </li><li> 유지 래그 - 2 - / - / GC - / - autoclaved 새장에 부족한받는 사람. 동물 시설의 &quot;청결&quot;에 따라 사후 이식 동물 치명적인 방사선 다음 5 주 동안 산성의 물 또는 Trimethiprim - Sulfasoxazole (Septra)의 관리를 요구할 수 있습니다. </li><li> 삼주 후 이식에서 말초혈에서&gt; 90 % GFP + ES - 파생 leukocytes 것으로 기대하고 있습니다. lymphocytes이 retroviral HoxB4 - IRES - GFP를 침묵하는 것으로 알려져 있지만 Engraftment는 멀티 혈통해야합니다. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>C57Bl/6 Rag-2/gamma-c 결핍 마우스</td><td>동물</td><td>Taconic Farm</td><td></td><td></td></tr><tr><td>플레이트 쉐이커</td><td>도구</td><td>VWR international</td><td>33998-360</td><td>Ikaworks사의 오비탈 쉐이커</td></tr><tr><td>멀티채널 피펫</td><td>도구</td><td>VWR international</td><td>15000-174</td><td>BioHit사의 ePet</td></tr><tr><td>ES 트립신</td><td>시약</td><td>Invitrogen</td><td>15090-046</td><td>PBS 내 0.25% Trypsin</td></tr><tr><td>표준 트립신</td><td>시약</td><td>Invitrogen</td><td>25300-062</td><td>0.05% Trypsin-EDTA</td></tr><tr><td>PBS</td><td>완충액</td><td>Invitrogen</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>효소 미포함 해리 완충액</td><td>완충액</td><td>Invitrogen</td><td>13151-014</td><td></td></tr><tr><td>해리 효소 믹스</td><td>완충액</td><td>Invitrogen</td><td>17104-019</td><td>500 mg Collagenase IV</td></tr><tr><td>히알루로니다아제</td><td>시약</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H2126</td><td>500 &amp;mu;L씩 분주하여 냉동 보관하고 반복적인 냉동 및 해동을 피하십시오.</td></tr><tr><td>DNAse</td><td>시약</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4527</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td></td><td>Invitrogen</td><td>10-017CV</td><td></td></tr><tr><td>프로타민 황산염</td><td>시약</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3369</td><td>8 &amp;mu;g/mL</td></tr><tr><td>EB 분화 배지</td><td>배지</td><td></td><td></td><td>첨부된 Protocol.doc의 레시피를 참조하십시오</td></tr><tr><td>10% IMDM</td><td>배지</td><td></td><td></td><td>첨부된 Protocol.doc의 레시피를 참조하십시오</td></tr><tr><td>10% IMDM+사이토카인</td><td>배지</td><td></td><td></td><td>첨부된 Protocol.doc의 레시피를 참조하십시오</td></tr><tr><td>20% anti-MEM</td><td></td><td></td><td></td><td>첨부된 Protocol.doc의 레시피를 참조하십시오</td></tr></tbody></table>

murine 배아 줄기 세포로부터 조혈 줄기 세포의 유도

Derivation of Hematopoietic Stem Cells from Murine Embryonic Stem Cells

줄기 세포가 수있는 능력을 가진 세포로 정의 모두 자기 갱신 여러 차별 자손을 생성합니다. 배아 줄기 세포 (ESC)은 초기 배아의 blastocyst에서 파생된 및 differentiative 능력 pluripotent입니다. 그들의 광대한 differentiative 가능성들을 임상적으로 유용한 세포 유형을 생성하기 위해 그들을 동축 케이블하는 방법 deducing을 중심으로 많은 연구의 초점이되었다. 마우스 ESC에서 조혈 줄기 세포 (HSC)의 성공적인 유도가 최근 완성되었으며이 비디오 프로토콜의 시각하실 수 있습니다. HSC, 거의 틀림없이 가장 임상적으로 악용 세포 인구는 조혈 malignancies 및 장애의 무수한를 치료하는 데 사용됩니다. 그러나, HSC 치료 혜택을 누릴 수 많은 환자가 적합한 기증자에 대한 액세스를 부족합니다. ESC는 이러한 환자 HSC의 대체 소스를 제공할 수. 다음 프로토콜은 ESC - HSC이 공부하고 인간 ESC에서 HSC를 격리하는 노력을 알려 될 수있는 기준을 설정합니다. 이 프로토콜에서는 ESC가 상용 혈청 사전 검사를 최적의 조혈 차별화 6 일 동안 embryoid 기관 (EBS)로 구별됩니다. EBS 다음 dissociated과 retroviral HoxB4에 감염됩니다. 마우스, 그리고 열흘 동안 크린 시토킨를 추진하고 조혈의 존재 공동 교양 - 감염된 EB - 파생 전지 OP9 기질, M - CSF - /의 calvaria에서 파생된 골수 stromal 세포 라인에 도금입니다. 이 공동의 문화 중에 감염된 세포는 세대 세포의 수백만의 100s의 이기종 수영장 결과 크게 확장합니다. 이러한 전지는 다음 구조와 reconstitute lethally 조사 마우스로 사용할 수 있습니다.

이 프로토콜 세부 마우스 배아의 줄기 세포 (ESC)와 lethally 조사받는 마우스에 그들의 이후의 주입에서 transplantable 조혈 줄기 세포의 유도. 간단히, ESC는 다음 retroviral HoxB4 및 OP9 stromal 세포와 조혈 크린 시토킨 공동 양식에 감염된 embryoid 단체로 구별됩니다.

Murine 배아 줄기 세포로부터 조혈 줄기 세포의 유도

줄기세포는 자가 재생 능력과 다양한 분화 후손 세포를 생성하는 능력을 모두 갖춘 세포로 정의됩니다. 배아줄기세포(ESC)는 ...

가장 먼저 수행할 작업은 합류(confluent) 상태의 T 25 플라스크에 담긴 umsl을 준비하는 것입니다. 우선 PBS로 세척한 후, Trypsin을 몇 방울 첨가하고 수 분 동안 그대로 둡니다. 이제 세포들이 플레이트에서 떨어져 나오는 것을 확인할 수 있으며, 준비가 거의 완료되었습니다.이제 트립신 처리된 세포를 수집하겠습니다. 콜로니 덩어리를 분해하여 UN 플레이트에 옮기기 위해 트립신 처리된 세포를 잠시 동안 파이펫팅하는 것이 좋습니다. 그리고 이를 인큐베이터에 약 30분에서 45분 동안 둡니다. 이제 세포를 수집하기 위해 원심 분리한 후, 상층액을 흡입하겠습니다.이제 수 분 후에 재현탁하여 세포 수를 측정하겠습니다. 세포를 재현탁한 후 수를 측정하였으며, 이제 일부 분취액을 취해 50 mL로 희석하겠습니다. 이는 세포의 상태를 확인하기 위해 한 방울당 100개의 세포가 들어가도록 적절한 농도를 맞추기 위함입니다. 이제 준비된 리저버가 있습니다.다시 한번 가볍게 흔들어 준 다음, 이 용액들을 리저버에 붓습니다. 좋습니다, 이미 프로그래밍이 되어 있습니다. 됐습니다.이제 꽤 곧게 펴졌습니다. 뒤집어서 잠시 놓아둡니다. 플레이트를 몇 개마다 한 번씩 살짝 기울여서 내용물이 약간 섞이도록 합니다.좋습니다, 이렇게 다섯 개의 플레이트가 준비되었습니다. 이제 이것들을 인큐베이터에 넣겠습니다. 이것들은 우리가 이틀 전에 준비한 현탁 방울(hanging drops)입니다.따라서 수집을 위해 플레이트를 흔들어 방울들을 모읍니다. 모든 것을 수집하되, EV가 너무 많이 손상되지 않도록 부드럽게 진행하겠습니다. PBS 5~6 mL를 취해 플레이트를 세척합니다. 그런 다음 이를 최소 10분 동안 방치하면 EV가 중력에 의해 침강합니다.EBS가 안정적으로 가라앉은 것을 육안으로 확인한 후, 상층액의 대부분을 제거합니다. 이때 세포층이 흐트러지지 않도록 완전히 모두 제거하지는 않습니다. 이제 6일째까지 배양하며 흔들어 줍니다. 이것들은 6일 전로 배아줄기세포로부터 준비된 배아체들로, 보통 플레이트를 가볍게 회전시켜 수집합니다.플레이트를 회전시키면 엣지(eds)가 디시 중앙으로 모이게 되어 교정하기가 조금 더 수월해집니다. 이제 엣지가 중력에 의해 튜브 바닥으로 가라앉도록 둡니다. 그런 다음 배지를 제거하고 10~12 mL의 PBS로 한 번 세척합니다. 이제 잠시 기다리겠습니다.이제 P를 제거하겠습니다. 효소 혼합물 250 µL와 1 mM을 첨가한 후, 37 °C 항온 수조에 넣습니다. 그리고 가끔, 두어 번 정도 튜브를 톡톡 쳐서 섞어주는데, 이는 EDTA가 가라앉기 때문입니다. 이제 gpro에서 제공하는 효소가 포함되지 않은 세포 해리 버퍼를 준비했습니다.각 튜브에 이 용액을 약 8 mL씩 추가합니다. 그런 다음 5 mL 피펫으로 반복해서 섞어 세포를 분리합니다. 반복적으로 섞어 분리하면서 용액이 매우 탁해질 것입니다. 이는 세포가 배지 속으로 분산되고 있다는 시각적 신호입니다. 이제 Trypan blue 배제법으로 세포 수를 측정하겠습니다. 감염 실험을 수행하거나 MOI를 계산하려는 경우, 세포 수를 측정하는 것이 매우 중요합니다.따라서 적절한 농도의 바이러스, 배지, 세포, 그리고 황산단백질을 혼합하여 대량으로 준비하겠습니다. 그리고 다시 한번 말씀드리지만, 저는 세포가 부유 상태에서 벗어나는 것에 매우 민감하므로 세포 상태를 확실히 확인합니다. 그래서 항상 소량의 용기를 사용하며, 튀는 현상이 너무 많이 발생하지 않도록 주의하면서 2,500 rpm으로 원심 분리합니다.이제 10일 차 세포를 수집하겠습니다. 모든 세척액은 따로 보관합니다. 이전에는 PI(프로피디움 요오드화물)를 사용했으나, 7-AAD는 밝기가 덜하기 때문에 다른 채널로의 간섭이 적어 훨씬 더 깨끗합니다.이제 변수를 가져오겠습니다. 이는 볼륨으로 인해 니들 내에서 손실이 발생하는 것을 방지하는 좋은 방법입니다. 저는 Boston 어린이 병원의 George Families Life Attorney에서 박사후 연구원으로 재직 중인 Shannon McKinney Freeman입니다.오늘은 마우스 배아줄기세포로부터 이식 가능한 세포군, 즉 조혈 시스템의 이식 가능한 세포군을 유도하는 방법에 대해 알아보겠습니다. 이 실험을 수행하는 이유는 무엇일까요? 이 시스템을 사용하면, 우선 치사량의 방사선 조사 후 마우스를 회생시키고, 유기체의 수명 동안 말초 혈액의 모든 계통에서 조혈 시스템을 재구성할 수 있는 조혈줄기세포 활성을 가진 세포군을 배아줄기세포로부터 유도할 수 있다는 점이 입증되었기 때문입니다.이것이 바로 해당 프로토콜이 개발된 이유입니다. 이제 저희는 이렇게 유도된 확장 세포군 내에서 실제 조혈모세포 활성을 매개하는 세포군의 표현형을 이해하기 위해 추가 실험을 진행하고 있습니다. 왜냐하면 저희는 이 세포군이 매우 이질적이라는 점과, 실제로 마우스를 회복시키는 세포는 이 세포군 내에서 극도로 희귀하다는 점을 알고 있기 때문입니다.따라서 우리는 이 세포의 표현형을 기본적으로 정의하여, 매우 이질적인 세포들로부터 이를 정제하고자 합니다. 그런 다음, 골수 전체에서 유래한 실제 조혈모세포와 기능적으로 어떻게 비교되는지 이해하는 데 가장 큰 관심을 두고 있습니다. 발달 과정에서 동일한 재구성 능력을 갖추고 있는지, 그리고 성인 골수 HSC를 반영하는 것으로 보이는지 확인하고자 합니다.또는 아마도 조혈 줄기세포와 더 비슷할 수도 있습니다. 초기 발달 단계의 세포를 GM이나 태아 간에서 찾을 수 있을 것입니다. 이것이 궁극적으로 우리가 이해하려는 바이며, 이러한 질문들을 해결하고자 하는 이유는 이 프로토콜이 우리가 관심을 가지고 있는 인간 배아 줄기세포를 이용한 유사한 연구에 정보를 제공하기를 원하기 때문입니다.또한 우리는 수학적 시스템을 통해 학습한 정보가 향후 실험들에 큰 도움이 될 것이라고 생각합니다. 몇 가지 이유가 있을 것 같습니다. 우선, 이것은 훌륭한 in vitro 모델이며, 발달 과정에 대한 훌륭한 in feature 모델이기도 합니다.우선 우리는 조혈모세포의 발달 과정을 이해하고자 합니다. 따라서 이는 이소성 유전자 발현을 매우 최소한으로 구현하여 이러한 요인들이 조혈모세포 발달에 어떤 영향을 미치는지 살펴볼 수 있는 훌륭한 시스템입니다. 이는 기초 과학 관점에서 매우 유용합니다.하지만 궁극적으로 저희는 인체 세포로부터 이식 가능한 대사 줄기세포를 유도하여 임상적으로 사용할 수 있는 일종의 세포 기반 치료법을 도출하고자 합니다. 하지만 그것은 아마도 미래의 일이 될 것입니다. 사실 저희는 세포 자체를 유도하는 것보다 더 어려운 부분이 있다는 것을 발견했습니다. 세심한 실험을 통해, 유도된 세포가 수용 동물 내에서 재구성이 되지 않아 어려움을 겪었던 시기가 있었음을 확인했습니다.그리고 우리가 결과적으로 발견한 점은 수혜자의 제거(ablation) 과정에 매우 세심한 주의를 기울여야 한다는 것이었는데, 이는 이 세포들이 능력이 없기 때문입니다. 일반적으로 골수 유래 HSC를 이용해 마우스 이식을 수행할 때, 마우스를 처리하기 위해 10 또는 11 Gy의 방사선을 조사하며, 골수 HSC는 동물들을 회복시킬 능력이 충분합니다. 하지만 우리가 확장시킨 이 세포 집단은 그렇게 높은 선량의 방사선으로부터 동물을 회복시킬 능력이 없다는 것이 밝혀졌습니다.따라서 우리는 동물의 크기에 주의를 기울이며 조사 선량을 매우 세심하게 조절해야 했습니다. 동물의 크기가 너무 큰 상태에서 동일한 선량을 사용하면 효과적으로 절제되지 않는다는 것을 발견했기 때문입니다. 하지만 반대로 동물에게 충분한 조사를 하지 않으면, 세포가 더 강한 저항성을 가진 숙주와 경쟁할 수 없게 됩니다.결국 이것이 주요 변수라는 점을 파악하여 세포의 ab 활성을 관찰하는 데 어려움이 있었다는 것을 알게 되었고, 조사 선량을 적정화하며 동물의 연령과 체중이 매우 중요하다는 사실을 깨달았을 때 비로소 실험 결과가 매우 재현성 있게 나오기 시작했습니다. 저희가 발견한 것은 약 20g, 즉 15~20g 정도의 동물을 사용하여 9.25 gray로 절제했을 때, 이 세포들이 마우스의 체내 재구성에 필요한 우위를 점할 수 있게 하는 최적의 선량이 된다는 점입니다. 네, 이것이 가장 중요한 변수 중 하나였다고 생각합니다.또 다른 중요한 사항은 주입하는 세포의 수입니다. 우리는 모델 생물을 방사선 조사하기 위해 이러한 특정 조건을 사용하여 역가를 측정했습니다. 또한 마우스에 주입한 분획되지 않은 이질적 세포 풀의 수에 대해서도 역가를 측정했습니다.기본적으로 동물을 회복시키기 위해서는 최소 약 200만 개에서 500만 개의 세포가 필요하다는 것을 발견했습니다. 그보다 적은 양을 주입하면 동물들이 회복되지 않습니다. 이는 아마도 이 이질적인 구획 내에서 회복을 매개하는 세포의 희소성과 관련이 있다고 생각합니다.따라서 저는 가장 중요한 변수가 주입하는 세포의 수라고 생각하며, 사용하는 이식 모델이 무엇이든 세포가 재생하는 데 필요한 이점을 얻을 수 있을 만큼 충분히 처리하되, 세포가 구조(rescue)를 수행할 수 없을 정도로 과하게 처리하지 않는 것이 중요하다고 봅니다. 이러한 요소들이 주요한 변수였습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

자기 갱신과 신체의 모든 세포 유형으로 차별화하는 인간 배아 줄기 세포의 능력은 그들이 모두 의료 어플 리케이션을위한 개발과 질병의 근본적인 질문을 해결하기위한 연구 도구로 큰 약속을 개최하는 것이 좋습니다. 여기서 우리는 내부 세포 질량 immunosurgical 절연에 의해 배아에서 인간 배아 줄기 세포의 유도에 대한 간결한, 단계별 절차를 제공합니다.

Immunosurgery에 의해 인간 배아 줄기 세포의 유도

유동세포계측법의 골수 조혈 progenitors의 유통뿐만 아니라 효율적으로 분리 고도 정화 조혈 줄기 세포 (HSCs)를 분석하는 방법을 설명합니다. 분리 절차는 본질적으로 세포 및 분자 연구를위한 HSCs를 정화 정렬 C-키트 + 세포와 세포의 자성 농축에 근거한다.

Murine 조혈 줄기 세포와 리니지 - 헌신 Progenitors의 Phenotypic 분석 및 절연

배아줄기세포(ESC)를 분화할 때 시간적 유전자 발현을 조작하는 것은 유도성 유전자 시스템을 사용하여 달성할 수 있습니다. 그러나 이러한 세포주를 생성하는 데는 비용과 시간이 많이 듭니다. 이 프로토콜은 ES 유래 세포를 분화시키고 다운스트림 조혈 분화에 대한 후속 분석에서 전이유전자의 빠른 발현을 달성합니다.

쥐과 배아의 레트로 바이러스 감염은 조혈 분화 분석을위한 세포 유래 배아 바디 줄기 세포

이 프로토콜에서는 마우스 및 인간 배아 줄기 세포 모두에서 심장 전구 세포의 유도가 설명됩니다. 이 프로토콜의 주요 전략은 배아 줄기 세포주에 조작된 형광 리포터를 사용하여 유세포 분석으로 심장 전구 세포를 풍부하게 하는 것입니다.

배아 줄기 세포에서 심장 전구 세포의 유도

마우스 배아 줄기 세포는 OP9-DL1 공동 배양 시스템을 사용하여 in vitro에서 T 세포로 분화할 수 있습니다. 이 절차를 성공적으로 수행하려면 시약/세포 유지 관리 및 주요 기술에 민감한 단계에 세심한 주의를 기울여야 합니다. 여기에서는 이러한 중요한 매개변수에 대해 논의하고 이 기술의 채택을 장려하기 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다.

T 세포의 유도 체외 마우스 배아 줄기 세포에서

조혈 줄기 및 전구 세포 (HSPC)는 아직 작은 일부 내피 세포는 혈액이 형성되기 위해 지정하는 과정에 대해 알려진, 개발 과정에서 전문 (hemogenic) 내피 세포에서 파생. 우리는 뮤린 배아 조직으로부터 hemogenic 내피 세포 HSPC 동시에 아이솔레이션을 허용하는 유동 세포 계측법 기반 방법을 보여준다.

쥐 배아 Hemogenic 내피 세포의 분리

여기에 설명된 프로토콜은 최소 전사 인자 세트의 과발현을 통해 마우스 배아 섬유아세포에서 혈액 프로그램의 유도를 자세히 설명합니다. 이 기술은 조혈, 혈액 질환 및 조혈 줄기 세포 이식에 대한 향후 연구를 위한 플랫폼을 제공하기 위해 인간 시스템으로 변환될 수 있습니다.

전사 인자와 마우스 배아 섬유 아 세포를 재 프로그램하는 것은 Hemogenic 프로그램을 유도하는

여기, 우리는 인간의 만능 줄기 세포 (hPSC) 문화 프로토콜, hPSCs CD34로 차별화 하는 데 사용 현재+ 조 혈 창시자. 이 방법은 단계 특정 조작 정식 WNT 신호 독점적으로 프로그램 중 하나는 확실 한 또는 원시 조 혈 세포를 지정 하려면 사용 합니다.

기본 및 확실 한 조 혈 창시자 인간 만능 줄기 세포에서의 감독

이 문서는 효율적으로 파생 하 고 만능 마우스 배아 줄기 세포 라인 blastocyst 단계에서 문화 프로토콜을 설명 합니다.

마우스 Preimplantation 배아에서 줄기 세포 라인의

여기 우리 murine 배아 개발 하는 동안 조 혈 줄기 세포 선구자의 클론 분석을 위한 방법론을 제시. 우리는 내 피 세포 공동 문화 및 phenotypic 속성 및 단일 조 혈 일어나 engraftment 잠재력 하 이식 배아 대동맥-생식-mesonephros 지역에서 단일 셀의 인덱스 정렬 결합.

단일 셀 인덱스 정렬 내 피 세포 틈새 공동 문화 결합을 사용 하 여 배아 조 혈 줄기 세포 선구자의 클론 분석

여기에 제시된 것은 약 1 주일 내에 인간 다 능성 줄기 세포로부터 혈구 내피 세포의 유도 분화를위한 간단한 프로토콜이다.

인간 만능 줄기 세포로부터 혈구 내피 세포의 유도 분화

배우세요 마우스 배아 줄기 세포에서 조혈 줄기 세포를 유도하는 방법을. 배아체 형성, HoxB4 레트로바이러스 감염, OP9 기질 세포 배양을 통해 이식 가능한 세포군을 확보하고 치사량 방사선 조사 마우스의 조혈계를 재구성하는 프로토콜입니다.

Murine 배아 줄기 세포로부터 조혈 줄기 세포의 유도

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