2010년 1월 18일
electrophysiologic 연구 신생아 마우스 척수의 고립의 데모.
안녕하세요. 저는 Salk 연구소 faf 실험실의 연구원 Alan Meyer입니다. 오늘은 마우스의 척수를 분리하기 위해 복측 척추궁 절제술(ventral laminectomy)을 수행하는 방법과 척수의 신경 활동을 기록하기 위해 이를 전극에 연결하는 방법을 보여드리겠습니다. 이를 위해 척수용 용액 두 가지, 즉 해부용 용액과 기록 욕조용 용액을 준비해야 합니다.
두 용액의 유일한 차이점은 염화칼슘의 농도입니다. 먼저 10 X-A-C-S-F 용액을 준비해야 합니다. 이를 위해 아래에 나열된 시약들이 필요합니다.
먼저 1L 용량 플라스크에 10X AC SF 100milliliters를 넣습니다. 그다음, 넘치지 않도록 여유 공간을 남겨둔 채 플라스크를 물로 채웁니다. 가스 처리를 할 때는 5%CO2 및 95%O2 가스 농도의 용액을 사용합니다.
pH를 낮추고 용액에 산소를 공급하기 위해 1 M 황산마그네슘 1 mL를 첨가합니다. 다음으로, 해부 용액에 1 M 염화칼슘 용액 1 mL를 첨가하고, 기록 용액에는 1 M 염화칼슘 2 mL를 첨가합니다. 이 실험에는 E 16.5에서 P 4 단계의 생쥐를 사용할 수 있습니다.
먼저 날카로운 가위로 마우스의 머리를 빠르게 절단하여 해부를 시작합니다. 다음으로 꼬리에 닿을 때까지 복부 정중선을 따라 절개합니다. 그 후 핀셋을 사용하여 마우스의 내장을 적출하고, A CSF 용액으로 헹굽니다.
1 mM 염화칼슘 A CSF를 사용하여 해부를 수행합니다. 마우스를 해부 접시에 놓고 네 발과 꼬리 기저부에 핀을 꽂아 고정합니다. 이 단계의 목표는 빨간색 점선을 따라 절개하여 척수 기둥을 척수를 둘러싸고 있는 척추궁(lamina)으로부터 분리함으로써 척수를 단리하는 것입니다.
이를 통해 척수를 노출시킬 수 있습니다. 다음으로, 선을 따라 절개하여 뇌막과 척수 신경근을 잘라내어 척수를 분리합니다. 척주를 찾아 한 손으로는 핀셋으로 척주를 단단히 잡고, 다른 한 손으로는 소형 가위를 사용합니다.
척수를 제거하려면 가위를 낮은 각도로 유지하십시오. 가위 끝으로 척수를 찌르는 것을 방지하기 위해 이제 척수를 박리하겠습니다. 빨간색 선을 따라 수막과 척수 신경근을 절단하십시오.
척수를 제거하려면 척수 양측을 따라 절개한 후 복측 정중선을 따라 절개하십시오. 척수를 찌르지 않도록 가위의 각도를 낮게 유지하는 것이 중요합니다. 신경근을 척수에 너무 가깝게 절단하지 않도록 주의하십시오.
다음으로, 척수를 기록조로 옮기고 전극을 척수 신경근에 연결합니다. 전극을 신경근 근처에 배치합니다. 그런 다음 흡입기를 사용하여 신경을 전극 안으로 부드럽게 끌어당깁니다.
시청해 주셔서 감사합니다. 이 영상이 귀하의 향후 실험에 도움이 되기를 바랍니다.
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본 논문은 전기생리학적 연구를 위한 신생 마우스 척수 분리 방법을 보여줍니다. 이 절차에는 복측 층판절제술 수행과 신경 활동 기록을 위한 전극에 척수를 부착하는 과정이 포함됩니다.
본 프로토콜은 신경근 질환의 타겟 검증 과정에서 기전적 리스크를 낮추기 위해, 중앙 패턴 생성 회로의 전기생리학적 평가를 위한 신생 쥐 척수 분리 방법을 제공합니다. 이 방법은 보행 네트워크 기능을 조사하고 신경 신호 전달에 미치는 화합물의 효과를 평가할 수 있는 질환 관련 시스템을 제공합니다. 또한, 검증된 전임상 모델로부터 전기생리학적 출력값을 정량적으로 측정함으로써 초기 발굴 단계의 예측 신뢰도를 높여줍니다.
이 방법은 신경근 타겟에 대한 가설 검증 및 경로 명확화를 지원하는 분리된 척수 표본을 제공함으로써 초기 발견 워크플로우에 통합됩니다.