2010년 8월 24일
이 문서는 인간의 암 세포 라인의 전이성 잠재력을 결정하는 데 사용되는 실험적인 전이 분석의 절차를 설명합니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 꼬리 정맥 주사로 인간 암세포의 전이 능력을 테스트하는 것입니다. 면역 결핍 마우스에서는 세포가 주사를 위해 준비됩니다. 그런 다음 세포를 면역 결핍 마우스에 주입하면 1-2개월 후에 폐 전이
가 발생합니다.마우스를 절개하고 폐 전이를 정량화하고 배양합니다. 이러한 유형의 분석 결과는 특정 유형의 암세포의 전이 정도를 나타냅니다. 안녕하세요, 저는 로체스터 대학교 의생명 유전학과 Dr.LE 연구실의 Sonali Mohanty입니다.
오늘은 실험적 전이 분석을 수행하는 절차를 보여 드리겠습니다. 우리는 암 전이를 연구하기 위해 실험실에서 이 절차를 사용합니다. 시작하겠습니다.
플레이트에서 약 70%Co 플루언시 흡입 배지로 성장한 세포로 시작하고 하나의 XPBS로 한 번 부드럽게 세척합니다. 다음으로, 0.05%트립신 반전 2밀리리터를 첨가합니다. 세포 분리를 용이하게 하기 위해 플레이트를 부드럽게 흔듭니다.
세포가 분리될 때 현미경으로 세포를 관찰하십시오. FBS가 포함된 충분한 양의 미디어를 추가하여 활동의 이동을 줄입니다. 그런 다음 50ml 튜브로 옮깁니다.
혈류 세포 분석기를 사용하여 세포를 계수합니다. 농도가 결정되면 세포 펠릿을 방해하지 않고 약 200배 중력에서 3분 동안 원심분리합니다. 조심스럽게 배지 Resus를 제거하고 적절한 부피의 Hank's balance buffer 용액 또는 HBSS를 현탁시켜 밀리리터당 6개 세포에 대해 약 5배의 10의 최종 농도에 도달합니다.
다음으로, Falcon의 70마이크로미터 셀 스트레이너를 통해 필터링합니다. 큰 세포 응집체를 제외하려면 피펫의 끝을 5ml 배양 튜브 위에 놓은 필터에 직접 놓습니다. 필터를 통해 현탁액을 튜브로 빠르게 배출합니다.
trian blue를 사용하여 세포를 다시 세어 생존 가능성을 확인합니다. 생존력은 주입 전에 90% 이상이어야 합니다. 그런 다음 밀리리터당 6개의 세포에 2.5 곱하기 10의 최종 농도로 희석합니다.
얼음 위에 보관하십시오. 면역 결핍 마우스의 꼬리를 부드럽게 잡고 등을 슬릿에 대고 꼬리를 뒤쪽의 작은 구멍으로 내민 상태로 마우스 억제기로 당깁니다. 슬릿을 따라 링을 안쪽으로 천천히 밉니다.
링이 마우스의 입에 걸리면 제자리에 잠급니다. 마우스는 자유롭게 움직일 수 없어야 하지만 호흡 속도는 정상이어야 합니다. 주요 꼬리 정맥을 찾으십시오.
쥐 꼬리에는 4개의 주요 혈관이 있습니다. 동맥은 꼬리의 등쪽과 복쪽에 있습니다. 정맥은 측면에 있습니다.
준비된 세포 중 최소 200마이크로리터를 1밀리리터 주사기에 뽑습니다. 30 게이지 반 바늘을 부착하고 기포를 밀어냅니다. 주사기의 최종 부피는 200마이크로리터여야 합니다.
꼬리의 말단 끝에 주입할 준비를 합니다. 따라서 첫 번째 시도가 실패하면 꼬리의 더 가까운 부위를 두 번째 시도에 사용할 수 있습니다. 주입 부위를 70% 에탄올로 닦은 후 꼬리를 똑바로 당깁니다.
엄지손가락으로 팁을 잡고 집게 손가락으로 주입 지점을 지지합니다. 바늘을 정맥에 삽입하고 세포를 주입합니다. 주사하는 동안 바늘과 주사기가 정맥과 평행한지 확인하십시오.
그렇지 않으면 바늘이 혈관 벽을 뚫고 세포가 인접한 꼬리 조직에 주입됩니다. 절차가 성공적으로 진행되면 바늘을 빼십시오. 주사 부위에서 혈액이 관류되어야 합니다.
깨끗한 면봉을 눌러 치실을 쉽게 사용하고 꼬리를 위쪽으로 촉진하여 잔여 샘플을 순환시킵니다. 구속기에서 마우스를 풀고 케이지로 다시 넣습니다. 주입 시도 횟수와 주입된 세포 수를 실험실 노트에 기록합니다.
주입 후 세포의 생존력을 결정합니다. 이전과 마찬가지로 이 단계는 주입 과정 전반에 걸쳐 세포가 살아 있다는 확신을 줍니다. 주입 실험이 끝나면 세포의 생존율이 감소하지만 80% 이상으로 유지되어야 합니다.선택 단계로 남은 세포를 스핀다운하고 펠릿을 PBS로 한 번 헹굽니다.
그런 다음 웨스턴 블로팅(western blotting)과 같은 향후 분석을 위해 펠릿을 섭씨 영하 80도에서 동결합니다. 넉다운에서 유전자 발현을 확인하려면 1-2개월 후 마우스를 해부하여 전이 위치를 확인합니다. 안락사된 쥐를 해부장에 놓는 것으로 시작합니다.
마우스에 에탄올을 넉넉하게 뿌립니다. 흉곽을 잘라 폐와 심장을 노출시킵니다. 그런 다음 조심스럽게 절제하여 PBS에 넣습니다.
폐는 세포가 만나는 첫 번째 모세혈관층을 포함하고 있기 때문에 전이의 주요 부위입니다. 혈액 순환계에 들어간 후 심장을 제거하고 PBS로 폐를 헹군 다음 해부 현미경으로 폐의 각 엽을 관찰합니다. 폐의 양쪽에서 검출 가능한 전이의 수를 세고, 4개의 엽 모두에서 폐 전이의 수를 함께 계산하여 총 폐 전이 수를 계산합니다.
다음으로, 가위를 사용하여 절제하여 개별 폐 전이를 분리합니다. 각 전이를 70마이크로미터 세포 여과기로 옮기고 멸균 바늘 뚜껑 끝을 사용하여 다집니다. 세포 여과기를 몇 밀리리터의 배지로 헹구고 필터를 통과하는 세포를 수집합니다.
배양 접시에서 각 접시에는 하나의 전이로 인한 세포가 들어 있습니다. 섭씨 37도에서 최소 4일 동안 방해받지 않고 세포를 배양합니다. 처음에는 암세포와 섬유아세포가 모두 판에서 자라지만 점차 섬유아세포가 죽고 암세포로 대체됩니다.
암세포가 약물 내성 유전자를 가지고 있는 경우 해당 항생제가 있는 세포를 선택하십시오.3일 후 PBS로 접시의 혈액이나 조직 찌꺼기, 찌꺼기를 씻어내고 새 배지를 추가합니다. 여기에서 인간 특이적 단백질에 대한 항체로 면역 염색하여 유래 세포의 순도를 평가하고 약물 선택이 없는 경우에도 항인간 정신 항체가 사용됩니다. 세포의 99% 이상이 사람이어야 합니다.
이제 새로 유래한 세포를 면역결핍 마우스에 다시 주입하여 이 분석이 끝날 때 전이 능력을 테스트할 수 있습니다. 전이성이 높은 암 세포주는 일반적으로 많은 폐 전이를 일으키는 반면, 전이가 심한 암 세포주에서 발생하는 폐 전이는 극히 적습니다. 이 이미지는 인간 흑색종 세포주 주입 후 2개월 후 폐 전이를 보여줍니다.
ᅡ 3 7 5 sm. 이 방법을 사용하여 파생된 세포는 일반적으로 테스트 시 부모 라인보다 더 많은 전이를 일으킵니다. 다시 이 분석을 사용하여 실험적 전이 분석을 수행하는 절차를 보여드렸습니다.
이 절차를 수행할 때 세포가 꼬리 정맥에 주입되지만 꼬리 조직과 꼬리 조직에 주입되지 않도록 하는 것이 매우 중요합니다. 그게 다야. 지켜봐 주셔서 감사드리며 실험에 행운을 빕니다.
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이 기사는 면역결핍 마우스의 꼬리 정맥 주사를 통해 인간 암 세포주의 전이 잠재력을 평가하는 데 사용되는 실험적 전이 분석법을 설명합니다.
The experimental metastasis assay provides a quantitative in vivo model to assess the metastatic potential of human cancer cell lines, supporting target validation and mechanistic de-risking in oncology drug discovery. By enabling the isolation and propagation of highly metastatic derivatives, the assay facilitates the identification of genes and pathways regulating metastatic progression, thereby informing lead identification and preclinical prioritization. This approach enhances predictive confidence in downstream therapeutic development by linking in vitro findings to functional metastatic outcomes in a disease-relevant system.
The assay functions as a discovery-stage tool that bridges target hypothesis testing with phenotypic validation, informing decisions on compound progression and mechanistic follow-up in oncology pipelines.