백혈병 세포에서 Subcellular Fractions의 준비: 백혈병 세포에서 세포 및 핵 분획을 생성하는 방법

0 조회수4:25 • April 30th, 2023

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- 백혈병 세포에서는 핵과 세포질 사이의 몇 가지 종양 억제 단백질과 같은 거대분자의 왕복이 조절되지 않습니다. 이러한 단백질의 잘못된 국소화는 단백질을 비활성화하여 백혈병 세포의 통제되지 않은 성장을 초래합니다. 우리는 백혈병 세포에서 세포질 및 핵 분획을 생성함으로써 그러한 단백질의 비정상적인 위치를 결정할 수 있습니다.

마이크로분리 튜브와 원심분리기에 원하는 양의 백혈병 세포를 넣어 세포를 펠릿화하는 것으로 시작합니다. 펠릿을 hypotonic lysis buffer에 다시 현탁시킨 다음 원하는 농도의 세제를 첨가합니다. 시질상 용해 완충액은 세포가 팽창하여 원형질막을 파괴하여 핵막을 그대로 유지하여 세포질 분획을 분리하도록 합니다. 세제는 세포질 소기관에서 단백질을 추출하는 데 도움이 됩니다.

현탁액에서 용해된 세포를 원심분리하고 상층액을 새 튜브로 옮깁니다. 상등액은 세포의 세포질 분획을 포함합니다. 핵 분획을 준비하려면 완전한 용해 완충액에 남아 있는 펠릿을 재현탁하고 세제를 추가합니다. 원심분리기를 하고 상등액에 존재하는 핵 분획을 마이크로분리 튜브에 수집합니다. 추가 분석을 위해 세포질 및 핵 분획을 섭씨 영하 80도에서 보관하십시오. 다음 프로토콜에서는 백혈병 세포에서 세포 내 분획의 생성을 입증합니다.

자극 및/또는 약물 치료 배양이 완료된 후, 섭씨 4도에서 5분 동안 200배 g으로 원심분리하여 개별적으로 라벨링된 1.5ml 마이크로분리 튜브와 펠릿으로 세포를 옮깁니다. 상등액을 버린 후, 포스파타제 억제제가 함유된 얼음처럼 차가운 PBS 1ml에 세포 펠릿을 재현탁합니다. 섭씨 4도에서 5분 동안 200회 g의 원심분리기. 상층액을 제거하고 추가 준비를 위해 이러한 전체 세포 추출물 펠릿을 얼음 위에 보관하십시오.

세포질 분획을 준비하려면 50 μlit의 1 X hypotonic buffer에 세포 펠릿을 부드럽게 재현탁합니다. 세포가 부풀어 오르도록 얼음 위에서 15분 동안 배양합니다. 특정 세포 유형에 사용할 최적의 세제 농도를 결정하기 위해 세제 구배를 수행한 후 각 샘플에 0.8-2.5마이크로리터의 세제를 추가하고 가장 높은 설정에서 10초 동안 와류로 회전시킵니다.

세포 용해를 확인하려면 세제를 첨가하기 전과 후의 위상차 현미경으로 세포를 관찰하십시오. 모든 세포는 촘촘하고 어두운 핵을 가지고 있으며, 그 주위에는 밝은 후광으로 나타나는 세포질이 있습니다. 용해가 완료되면 섭씨 4도에서 30초 동안 14,000회 g으로 샘플을 원심분리합니다. 펠릿을 방해하지 않고 조심스럽게 상등액을 사전 냉각되고 라벨링된 마이크로퓨지 튜브로 옮기고 추가 분석이 있을 때까지 이 세포질 분획을 섭씨 영하 80도에서 보관합니다.

핵 분획의 오염을 방지하기 위해 세포질 분획을 완전히 제거하십시오.

핵 분획을 포함하는 나머지 펠릿에 50마이크로리터의 완전 용해 완충액을 추가하고 위아래로 피펫팅하여 재현탁합니다. 핵막과 관련된 단백질을 가용화하려면 2.5마이크로리터의 세제를 넣고 가장 높은 설정에서 10초 동안 와류를 일으킨 다음 얼음 위에서 30분 동안 배양합니다. 30초 동안 가장 높은 설정으로 소용돌이를 하고 원심분리기를 사용합니다. 그런 다음 상층액을 미리 냉각되고 라벨링된 마이크로퓨지 튜브로 옮기고 추가 분석이 있을 때까지 이 핵 분획을 섭씨 영하 80도에서 보관합니다.

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마지막 업데이트: 15 8월 2026