Name: 활성 골수 - 유래 Macrophages과 Bradyzoite Toxoplasma gondii 약관의 낭종의 벽 형성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-12T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: 배우세요 Toxoplasma gondii의 낭종 벽 형성을 유도하고 형광 렉틴을 이용한 면역형광 현미경으로 시각화하는 방법을 배우세요. 이 기술은 숙주-기생충 상호작용 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 위스콘신 - 매디슨 허먼 I. 샤피로 탁월한 연구 원정대 (CMT), NIH 수상 AI072817 (AMP)와 미국 심장 협회 수상 0840059N (LJK)의 대학에 의해 지원되었다.

1. 인간의 포피의 섬유아 세포 (HFF) 코팅 coverslips의 준비 <ol><li> 24 잘 조직 문화 판의 우물의 바닥에 살균 둥근 유리 coverslip를 놓습니다. </li><li> 합류 150cm 두 플라스크에서 HFFs을 수확하려면, 1X PBS로 두 번 술병을 씻어 0.025 % 트립신 - EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 2.5 ML를 추가합니다. ° C 50~10분에 대한 37 휴대용 술병을 품어. </li><li> 손바닥에 대한 술병의 측면을 감청하는 것은 술병에서 세포를 분리에 도움하실 수 있습니다. 일단 세포가 술병에서 발표했습니다 HFF 중간 150 ML (Dulbecco의 수정된 이글 매체 [DMEM]이 10% FBS와 2 MM L - 글루타민,, 1 % 페니실린 - 스트렙토 마이신)과 그 술병을 씻어 수집 매체를 사용을 추가 세포. </li><li> coverslips 잘 당 세포의 1 ML 하는걸. </li><li> 세포가 37 ° C 5 % CO 2 합류가 될 수 있습니다. </li></ol> 2. BMC 개발 L929 에어컨 매체 (CM)를 준비 <ol><li> L929은 confluency 오랜 기간 후에 요소를 자극 대식 세포 콜로니를 secretes murine fibrosarcoma aneuploid의 셀 라인이다. 이 분비는 세포 배양 1 macrophages에 마우스 골수 세포를 개발하는 데 사용할 L929 세포에서 CM 수 있습니다. </li><li> L929 세포가 합류되면, 그들은 구형 나타나고 술병을 리프팅 시작할 때까지 그들이 추가 7~9일에 대해 품어 보자. 뜨는 및 펠렛 10 분 425 XG든지 분리된 세포를 수집합니다. 이 뜨는은 CM입니다. </li><li> L929 세포 중 하나는 150cm이 플라스크는 BMC 매체 150 ML를 생성 CM 30 ML을 산출. BMC 매체 10% FBS, DMEM에 20 %의 CM, 1 % 페니실린 - 스트렙토 마이신,, 1 % L - 글루타민으로 구성되어 있습니다. </li></ol> 3. 골수 및 BMCs의 세포 배양의 분리 <ol><li> CO 2 질식 및 표면 70 % 에탄올로 소독 한 C57BL / 6 마우스를 희생. </li><li> 다리 근처의 복부 피부를 리프팅과 가위로 절단하여 복막을 폭로. 복막 구멍을 펑쳐링하지 마십시오. 발목 부분의 경골과 대퇴골을 폭로하기 위해 다리 아래로 잘라. 가위를 사용하여 다리의 뼈가 근육 조직을 잘라 버릴거야. </li><li> 대퇴골을 제거하려면 한 번 무릎 아래와 한번 엉덩이 근처 컷. 차가운 1X PBS를 포함하는 세균 배양 접시에있는 뼈를 놓습니다. BMCs 영구적으로 준수하기 때문에 다음 단계를위한 페트리 요리를 대접 조직 문화를 사용하지 마십시오. 추가 근육 조직을 긁어 메스를 사용합니다. 그냥 골수를 노출하기 위해 무릎 위의 뼈를 잘라. </li><li> 단계를 반복 (B) 그리고 (c) 두 번째 대퇴골의 골수를 수집합니다. </li><li> 차가운 1X PBS와 50 ML 원뿔 관에 골수를 이동시키다하는 25 게이지 바늘로 가득한 10cc 주사기를 사용하십시오. 뼈를 새하얀 한 골수이 제거됩니다 나타납니다. </li><li> 모든 골수 집계를 깨고 22 게이지 바늘을 통해 PBS / 골수 혼합물 패스. </li><li> 10 분 425 XG에서 혼합 스핀, 그리고 표면에 뜨는를 제거합니다. </li><li> BMC 매체 8 ML에서 펠렛을 Resuspend. 8 세균 배양 접시에 세포 현탁액 9 ML BMC 매체 1 ML을 추가합니다. </li><li> 37 품어 ° C 5 % CO 2. </li><li> 5 일째, 각 접시 10 ML BMC 매체를 추가합니다. 일 7.2으로 전지가 완전히 개발됩니다. BMCs는 성숙 후 1-2주에 대한 passaged 수 있습니다. </li><li> BMCs을 분할하려면 미디어를 제거하고 각 페트리 접시에 차가운 1X PBS의 5 ML를 추가합니다. 4 품어 ° 세포 리프트 시작까지 30 분 C. 멸균 전송 피펫과 접시에서 BMCs을 씻어. </li><li> 50 ML 원뿔 관 및 펠릿 10 분 425 XG에 수영장에서 BMCs합니다. </li><li> 10 ML BMC 매체와 hemocytometer 의지의 펠렛을 Resuspend. 바닥에 둥근 유리 coverslips로 24 잘 플레이트에 잘마다 씨앗 2x105 BMCs. T.과 감염 전에 BMCs가 밤새 준수합시다 gondii. 초과 BMCs는 나중에 사용하기 위해 배양 접시에 reseeded 수 있습니다. </li></ol> 4. T.과 감염 세포 gondii <ol><li> 2x10 6 T.과 합류 HFFs의 25cm 두 플라스크를 감염 세포 (2-3 일 정도) lyse 시작할 때까지 gondii하고 성장합니다. </li><li> 조직 문화 플라스크에서 감염된 숙주 세포의 monolayer를 제거하는 세포 스크레이퍼를 사용하여 다음 27 게이지 바늘을 통해 dislodged monolayer를 전달하여 호스트 세포에서 기생충을 놓습니다. </li><li> 매체에 기생충의 수를 결정하는 hemocytometer를 사용합니다. </li><li> 프로토콜 1 또는 프로토콜 3 BMCs에서 HFF monolayers의 coverslip 잘 당 10 5 기생충 감염. 기생충, 37에서 3 시간 동안 침략 ° C 5 % CO 2를 보자. </li></ol> 5. T.을 시작 환경 스트레스에 의해 gondii bradyzoite 개발 <ol><li> 중간 산도 증가와 CO 2 기아와 HFFs에 Bradyzoite 개발 <ol class="lalpha"><li> 개발 매체를 준비합니다. 개발 매체 RPM을 포함I 중탄산염없이 1640, 1 % FBS, 1 % 페니실린 - 스트렙토 마이신, 42 MM HEPES. 8.0 산도와 필터 소독. </li><li> 감염된 HFFs에서 DMEM 제거 1X PBS와 린스, 개발 매체 1ml를 추가합니다. </li><li> 주변 공기와 함께 37 삼일 ° C에 대해 숙고하다. </li></ol></li><li> BMCs의 활성화 <ol class="lalpha"><li> BMCs을 활성화하기 위해 매체를 준비합니다. 활성화 매체 100U/ml IFN - γ와 100 NG / ML LPS와 함께 보충 BMC의 매체입니다. 집계를 중단하기 위해 사용하기 전에 2 분 동안 물을 욕조에 LPS를 Sonicate. </li><li> 우물에서 BMC 매체를 제거하고 활성 매체 1 ML로 바꿉니다. </li><li> 37 품어 ° C, 5 % 3 일간 CO 2. </li></ol></li></ol> 6. Immunofluorescence 검출 <ol><li> 1X PBS에 감염된 우물을 세 번 씻어. </li><li> 20 분 3 % 포름 알데히드의 200ul와 monolayer을 수정. </li><li> 정착액을 제거하고 1X PBS로 우물을 씻어. </li><li> 우물에 0.1 M 글리신의 200μl를 추가하고 5 분 앉아 보자. </li><li> 글라 이신를 제거하고 1X PBS로 우물을 씻어. </li><li> 30 분 monolayer를 permeabilize하고 차단하는 3퍼센트 BSA/0.2 % 1X PBS에서 TritonX - 100 250 μl를 추가합니다. </li><li> 차단 솔루션을 제거하고 1X PBS로 우물을 씻어. </li><li> 3퍼센트에 rhodamine Dolichos biflorus agglutinin의 1:250 희석의 50 μl를 추가 BSA/0.2 % 트리톤 1X PBS에서 X - 100. </li><li> 1 시간 동안 실온에서 플랫폼에 쉐이크 판과 장소를 커버 </li><li> 0.2 %로 coverslips에게 3 번 씻어 튼과 각 플랫폼 쉐이크 5 분 1X PBS에서 X - 100. </li><li> 4'6 - diamidino - 2 - phenylindole (DAPI)를 포함하는 VectaShield 장착 매체를 사용하여 마운트 coverslips. </li><li> 스테인드 T. gondii는 100x의 확대에 rhodamine에 대한 필터를 적절한 형광 현미경을 사용하여 시각하실 수 있습니다. </li></ol> 7. 대표 결과 그림 1은 T.의 대표적인 DBA의 염색법을 보여줍니다 산도 응력 하에서 활성화 BMMs과 HFFs에 gondii. 기생충 주변 모두보기 DBA의 얼룩은 낭종 벽 구성 요소의 존재를 나타내는 vacuoles을 포함. 활성화 BMM 이미지는 공포의 표면과 일치 DBA 염색법을 보여줍니다. T.의 단면 gondii는 산도에 HFFs은 스테인드없이 내부 구조와 낭종 벽을 보여줍니다 강조했다. <img src="/files/ftp_upload/2091/2091fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 스트레스 T.의 DBA 염색법 스트레스 조건, 활성화 BMMs이나 산도에 따라 gondii. 세포내 기생충, HFFs 강조 rhodamine 복합 DBA (적색)와 스테인드되었습니다. 차동 간섭 대비 (DIC)은 낭종의 개요를 보여줍 검은 스케일 바는 2 μm의 같습니다. 동물 실험 동물 실험 위스콘신 애니멀 케어 및 사용위원회의 대학에 의해 명시된 지침과 규정에 따라 수행되었다.

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</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

T.의 bradyzoite 개발의 메커니즘은 완전히 이해되지 않지만, 분자 유전 분석 조직 문화 gondii 단계 변환 bradyzoite의 낭종 형성 2,3,4에 관련된 유전자의 발견되었다. 분석은 또한 일부 bradyzoite 마커가 활성화 macrophages 5,6 성장 등 다른 장기 응력 조건에서 표현되는 관찰되었다. 위의 방법은 T. 성장하는 방법을 설명합니다 gondii와 유도 발전 BMCs과 HFFs 모두에서 DBA 양성 낭종 벽 구조. 낭종 개발 경로가 다른 스트레스 자극에 의​​해 유도된 수 있습니다 이러한 결과는 강조 표시합니다. 때문에 T. gondii는 온혈 호스트에서 거의 모든 nucleated 셀에 성장할 수 많은 세포 유형은 T. 성장하는 데 사용할 수 있습니다 체외에서 gondii. 그들이 접촉 ...

<table><tbody><tr><td>소 혈청 알부민(Bovine serum albumin)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11960-051</td><td></td></tr><tr><td>태아 송아지 혈청 (FBS)</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11150</td><td>열 불활성화</td></tr><tr><td>Rhodamine &lt;em&gt;Dolichos biflorus&lt;/em&gt; 응집소</td><td>Vector Laboratories</td><td>RL-1032</td><td></td></tr><tr><td>포름알데히드 (16%)</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>18814</td><td></td></tr><tr><td>글리신(Glycine)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP381-5</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP310-1</td><td></td></tr><tr><td>IFN&amp;#947;</td><td>PeproTech Inc</td><td>315-05</td><td>1회 분량씩 분주하여 보관</td></tr><tr><td>L-글루타민 (200mM)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>지질다당류 (LPS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L4391-1MG</td><td>1회 분량씩 분주하여 보관</td></tr><tr><td>현미경 커버 글라스</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-80 12CIR-1</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>RPMI medium 1640 분말 (L-글루타민 함유, 중탄산염 제외)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>31800-022</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X-100</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151-500</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.25%)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>DAPI 함유 VectaShield 봉입제</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

활성 골수 - 유래 macrophages과 bradyzoite toxoplasma gondii 약관의 낭종의 벽 형성

Toxoplasma gondii Cyst Wall Formation in Activated Bone Marrow-derived Macrophages and Bradyzoite Conditions

Toxoplasma gondii는 온혈 동물의 nucleated 세포에 침입할 수있는 의무 세포내 기생충이다. 감염 동안, T. 빠른 복제 양식이 tachyzoite 전화로 gondii는 disseminates. Tachyzoites 잘 묘사되지 않은 신호 처리에 의해 bradyzoite라는 느린 성장 encysted 형식으로 변환합니다. 동물 내에서 bradyzoite의 cysts는 중추 신경계와 근육 조직에서 발견하고 감염의 만성 단계를 대표하고 있습니다. bradyzoites 전환은 높은 산도, 또는 인터페론 감마 (IFNγ)의 추가로 매체를 사용하여 CO 2 기아의 조직 문화에 시뮬레이션 할 수 있습니다. Bradyzoites는 렉틴가 Dolichos biflorus agglutinin (DBA)가 바인딩에 낭종 벽의 존재에 의해 특징입니다. 찬란 분류 DBA는 낮은 CO 2와 높은 산도 매체에 노출되었습니다 인간의 포피의 섬유아 세포 (HFFs) 재배 기생충에있는 낭종 벽을 시각화하는 데 사용됩니다. 마찬가지로, 기생충은 BMMs가 IFNγ와 lipopolysaccharide (LPS)로 활성화한 후 골수 파생 macrophages (BMMs)가 DBA에 의해 감지 낭종 벽을 표시 murine 뼈에 거주. 이 프로토콜은 T.의 전환을 유도하는 방법을 보여줍니다 것입니다 BMMs의 낮은 CO 2 및 활성화와 높은 산도 성장 매체를 사용하여 bradyzoites하는 gondii. 호스트 세포는 coverslips에 대한 교양 tachyzoites와 감염 중 IFNγ와 LPS (BMMs)를 추가로 활성이나 사흘 동안 높은 산도 성장 매체 (HFFs)에 노출됩니다. 감염 완료되면, 호스트 세포는 고정 per​​meabilized 및 차단됩니다. 낭종 벽은 형광 현미경과 rhodamine의 DBA를 사용하여 시각 것입니다.

Toxoplasma gondii는 조직 문화 모델 했었 수있는 환경 스트레스에 대한 응답으로 낭종 형태로 변환됩니다. 이 동영상은 골수 파생 macrophages 뼈를 활성화하거나 fibroblast 세포 성장 매체 산도를 변경하여 낭종 벽 형성을 검토하기 위해 기술을 보여줍니다.

활성 골수 - 유래 Macrophages과 Bradyzoite Toxoplasma gondii 약관의 낭종의 벽 형성

Toxoplasma gondii는 온혈 동물의 모든 유핵 세포에 침투할 수 있는 절대 세포 내 기생충입니다. 감염 과정 동안 T. gondii는 ...

본 절차의 전반적인 목표는 In vitro에서 Toxoplasma gondii의 낭종벽 형성을 유도하고 시각화하는 것입니다. 이는 먼저 대식세포와 섬유아세포를 배양함으로써 달성됩니다.그런 다음 이러한 호스트 세포에 기생충을 감염시켜 pH 충격으로 섬유아세포를 자극하거나 대식세포를 활성화함으로써 낭종 내에서 스트레스 반응을 유도할 수 있으며, 이는 모두 낭종벽 형성으로 이어집니다. 마지막으로, 낭종벽에 결합하는 형광 렉틴을 배양액에 첨가하여 면역형광 현미경으로 낭종을 시각화할 수 있습니다. 안녕하세요, 저는 위스콘신 대학교 매디슨 캠퍼스 의생명 미생물학 및 면역학과의 Laura Noel 박사 연구실의 Crystal Tobin입니다.저는 No Lab의 Angela Pollard입니다. 오늘은 시험관 내에서 Toxoplasma gondii 낭벽 형성을 유도하는 절차를 보여드리겠습니다. 저희 연구실에서는 기생충이 스트레스 조건에 어떻게 반응하는지 연구하기 위해 이 절차를 사용합니다.이제 시작해 보겠습니다. 고pH 및 이산화탄소 결핍 조건에서 인간 포피 섬유아세포 내의 Toxoplasma gondii를 bradyzoite로 전환시키기 위해, 24웰 조직 배양 플레이트의 각 웰 바닥에 멸균된 원형 유리 커버슬립을 배치하는 것으로 시작하십시오. 조직 배양 후드 아래에서 confluent 상태인 150 cm² 플라스크의 인간 포피 섬유아세포를 준비하십시오.합류된 human foreskin fibroblasts 플라스크를 1X PBS로 2회 헹군 후, 0.025% trypsin EDTA 2.5 milliliters를 첨가합니다. 플라스크를 37 degrees Celsius에서 5~10분 동안 배양합니다. 5~10분간의 배양 후, 플라스크를 여러 번 두드려 플라스틱 표면에서 세포를 분리합니다.다음으로, 150 milliliters의 HFF 배지 또는 보충된 delcos modified eagles 배지를 첨가합니다. 이 배지를 사용하여 플라스크를 헹구고 세포를 수집합니다. 커버 슬립이 있는 24-well 플레이트의 각 웰에 세포 1 milliliter씩을 분주하고, 37 °C, 5% carbon dioxide 조건에서 세포가 confluent 상태가 될 때까지 배양합니다.이제 세포를 Toxoplasma Gandhi 기생충으로 감염시킬 준비가 되었습니다. 조직 배양 후드 내에서, 합류(confluent) 상태의 인간 포피 섬유아세포(human foreskin fibroblasts)가 들어 있는 25 square centimeter 플라스크에 2 × 10⁶마리의 기생충을 감염시키고, 세포가 용해되기 시작할 때까지 37 °C에서 배양합니다. 약 2~3일 후, 세포 스크레이퍼를 사용하여 조직 배양 플라스크에서 감염된 포피 섬유아세포 단층을 제거합니다.그런 다음, 떨어져 나온 단층 세포를 27 gauge 바늘로 통과시켜 숙주 세포로부터 기생충을 분리합니다. 혈구계수기(hemocytometer)를 사용하여 배지 내 기생충 수를 결정한 후, 미리 준비된 합류된 인간 포피 섬유아세포(human foreskin fibroblasts)의 24개 웰 각각에 10⁵마리의 기생충을 감염시킵니다.기생충이 숙주 세포로 침투할 수 있도록 세포를 37°C, 5% carbon dioxide 조건에서 3시간 동안 배양합니다. 이어서 기생충이 Brady Zeolite 단계로 전환되도록 유도합니다. 감염된 인간 포피 섬유아세포에서 DMEM을 제거합니다.이를 1회 XPBS로 헹군 다음, 발색 배지 1 mL를 첨가합니다. 이는 중탄산염이 포함되지 않고 pH 8로 조정된 RPMI 기반 배지입니다. 세포를 상온의 공기 중에서 37°C로 3일 동안 배양합니다.이제 세포 내 Brady zos의 존재 여부를 분석할 준비가 되었습니다. Brady ZOS의 존재는 형광 표지된 렉틴 docos, 형광 글루테닌 또는 DBA를 사용하여 결정하며, 이는 Toxoplasma Gandhi의 시스트 벽에 결합합니다. 형광 이미징을 위해 감염된 세포를 준비하십시오. 1x PBS로 웰을 세 번 헹굽니다.다음으로, 3% formaldehyde 200 µL를 사용하여 세포 단층을 20분 동안 고정합니다. 고정액을 제거하고 XPBS로 웰을 헹굽니다. 0.1 M glycine 200 µL를 웰에 넣고 5분 동안 방치합니다.글라이신을 제거하고 웰을 XPBS로 한 번 헹구어 세포를 블록킹 및 투과화합니다. 블록킹 용액 250 µL를 첨가합니다. 세포를 30분 동안 배양합니다.블로킹 용액을 제거하고 웰을 XPBS로 1회 헹굽니다. 루민(rumine)과 접합된 DBA를 1:250로 희석한 용액 50 µL를 웰에 첨가합니다. 플레이트를 덮고 플랫폼 셰이커를 이용하여 실온에서 1시간 동안 흔들어 줍니다.배양 후, 플랫폼 쉐이커 위에서 0.2% Triton X 100이 포함된 1x PBS로 커버슬립을 5분씩 3회 세척하여 형광 표지된 DBA를 제거합니다. 마지막으로 dpi가 포함된 beta shield 마운팅 용액을 사용하여 커버슬립을 마운팅합니다. 염색된 결과는 rhodamine에 적합한 필터가 장착된 형광 현미경을 사용하여 100배 배율로 관찰할 수 있습니다. Brady zo 형성을 유도하는 대체 방법으로, 인터페론 감마(interferon gamma)와 리포폴리사카라이드(lipopolysaccharide) 또는 LPS를 사용하여 감염된 골수 유래 대식세포를 활성화할 수 있습니다. 이를 위해 먼저 L 9 29 조건화 배지를 준비하십시오.L 9 29은 장기간의 합류(confluency) 후 대식세포 콜로니 자극 인자를 분비하는 마우스 섬유육종 세포주입니다. 이 조건배지는 세포 배양 시 마우스 골수 세포를 대식세포로 분화시키는 데 사용될 수 있습니다. 조건배지를 준비하려면 L 9 2 9 세포를 150 cm² 플라스크에서 37 °C로 합류될 때까지 배양하십시오. 그 후, 세포가 구형으로 보이고 플라스크 표면에서 떨어지기 시작할 때까지 7~9일 동안 추가로 배양하십시오.배지와 분리된 세포를 50 milliliter 튜브에 수집하고 420 5G에서 10분 동안 원심 분리합니다. 이렇게 얻은 상층액이 조건화 배지입니다. L 9 29 세포가 배양된 150 square centimeter 플라스크 한 개에서 30 milliliters의 조건화 배지를 얻을 수 있으며, 이는 150 milliliters의 BMC 배지를 조제하는 데 필요한 부피입니다. BMC 개발에 사용될 L 9 29 cm를 포함하여 BMC용 DMEM을 준비하십시오.골수 세포 분리 방법을 설명하는 상세 비디오 프로토콜을 시청하십시오. 마우스 대퇴골의 경우, 수확한 BMC를 5일 동안 배양한 후 다음 비디오 프로토콜을 시청하시기 바랍니다. 세균학용 페트리 접시에 L 9 2 9 세포의 조건화 배지가 포함된 BMC 배지 10 milliliters를 각각 넣고 2일 더 배양하면 세포가 완전히 발달합니다.성숙한 골수 유래 대식세포(BMS)는 성숙 후 1~2주 동안 계대 배양할 수 있습니다. BMS를 분할하기 위해 배지를 제거하고, 4°C에서 30분 동안 배양한 차가운 1xPBS 5mL를 첨가하여 세포가 떨어지기 시작할 때까지 기다립니다. 멸균된 전송 피펫을 사용하여 플레이트에서 세포를 헹궈냅니다. BMS를 50mL 코니컬 튜브에 옮기고 420×g에서 10분 동안 원심 분리하여 세포 펠렛을 형성합니다.펠렛을 10 milliliters의 BMC 배지로 재현탁한 다음, 혈구계수기(hemocytometer)를 사용하여 세포 밀도를 결정합니다. 24웰 플레이트의 각 웰당 2 × 10⁵개의 BMC 세포를 분주합니다. 이때 플레이트 바닥에는 원형 블래스트 커버슬립이 놓여 있어야 하며, T. gondii를 감염시키기 전 세포가 하룻밤 동안 부착되도록 둡니다.남은 세포는 나중에 사용하기 위해 페트리 접시(Petri dish)에 보관할 수 있습니다. BMS를 활성화하려면 활성화 배지를 준비하고, 응집물을 제거하기 위해 LPS를 항온수조에서 2분 동안 초음파 처리하십시오. 그 다음 BMC 배지에 100 ng/mL의 LPS와 100 U/mL의 IFN gamma를 첨가하십시오.마지막으로, 웰에서 BMC 배지를 제거하고 활성화 배지로 교체합니다. 37°C, 5% CO₂ 조건에서 3일 동안 배양합니다. BMC는 이전에 포피 섬유아세포(foreskin fibroblasts)를 대상으로 보여준 것과 동일한 방법으로 염색할 수 있습니다.이 예시들에서, 인간 포피 섬유아세포 내의 toxoplasma Gandhi I Bradys는 형광 DBA로 표지되었습니다. pH 스트레스 하에서, IFN Gamma와 L-P-S-D-V-A로 활성화된 dms 내의 인비트로(in vitro) 낭종의 이 단면에서 보는 바와 같이 낭종 벽이 형광 표지되었습니다.여기에서 보는 바와 같이 액포 표면에서도 염색이 나타납니다. 지금까지 섬유아세포와 활성화된 대식세포 내의 in vitro Toxoplasma gondii 시스트를 염색하는 방법을 설명해 드렸습니다. 이 실험 절차를 수행할 때는 기생충과 호스트 세포가 같은 날에 준비될 수 있도록 계획하는 것이 중요합니다.이상입니다. 시청해 주셔서 감사하며, 귀하의 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

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Ultrastructural Expansion Microscopy in Three In Vitro Life Cycle Stages of Trypanosoma cruzi(트리파노소마 크루즈 의 3가지 체외 수명 주기 단계에서의 초구조 확장 현미경)

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배우세요 Toxoplasma gondii의 낭종 벽 형성을 유도하고 형광 렉틴을 이용한 면역형광 현미경으로 시각화하는 방법을 배우세요. 이 기술은 숙주-기생충 상호작용 연구에 활용됩니다.

활성 골수 - 유래 Macrophages과 Bradyzoite Toxoplasma gondii 약관의 낭종의 벽 형성

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