박테리아로부터 외막 유래 세포외 소포의 분리 및 농축

0 조회수3:53 • September 26th, 2025

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유전자 조작 박테리아 콜로니를 액체 배지에 접종하는 것으로 시작합니다.

이 박테리아는 외부 보호층인 외막에서 형광 융합 단백질을 발현합니다.

박테리아가 형광 단백질을 통합하는 세포간 통신에 관여하는 막 결합 나노 구조인 세포외 소포(EV)를 방출하도록 배양합니다.

배양액을 병에 옮기고 저속으로 원심분리하여 세포를 펠릿화합니다.

EV, 세포 단백질 및 세포 파편을 포함하는 상청액을 옮깁니다. 고속으로 원심분리하고 파편이 포함된 상청액을 제거합니다.

멤브레인을 통해 상청액을 걸러내어 남아 있는 박테리아와 잔해물을 제거합니다.

한천에 샘플을 접종하고 배양합니다. 박테리아 콜로니 형성이 없다는 것은 박테리아가 없음을 확인합니다.

용액을 반투막과 원심분리기가 있는 한외여과 장치로 옮겨 더 작은 단백질을 제거하면서 EV를 가둡니다.

다운스트림 분석을 위해 농축된 EV를 튜브에 수집합니다.

멸균 루프를 사용하여 대 장균 의 단일 콜로니를 250-1000밀리리터의 Luria-Bertani 또는 LB 국물에 접종하는 것으로 시작합니다. 그런 다음 교탕 인큐베이터에서 분당 300회전, 섭씨 37도에서 호기성 배양합니다. 배양 48시간 후, 세포 배양액을 500밀리리터 폴리프로필렌 원심분리기 병에 옮겨 섭씨 4도 및 5,000배G의 대용량 고정각 로터에서 15분 동안 원심분리하여 박테리아 배양 배지를 정화합니다.

상청액을 깨끗한 원심분리기 병에 옮겨 10,000배 G에서 15분 동안 원심분리합니다. 그런 다음 상청액을 적절한 크기의 0.2미크론 폴리에테르설폰 진공 구동 필터 장치로 옮기고 여과 장치를 진공 벽 공급 장치에 연결합니다. 여과율이 크게 떨어지면 여과되지 않은 재료를 새 장치로 옮기십시오.

여과된 배지는 섭씨 4도에서 밤새 보관하거나 즉시 추가 처리할 수 있습니다. 생존 가능한 세포의 완전한 제거를 확인하려면 여과된 상청액의 분취량을 적절한 한천 플레이트에 펴고 박테리아 균주에 대한 최적의 조건에서 배양한 후 콜로니가 없는지 확인합니다. 여과된 배지를 100밀리리터의 부피로 농축하기 위해, 90밀리리터의 여과된 배양 배지를 100킬로달톤 분자량 차단으로 원심 한외여과 장치의 저장소에 로드하고, 상단 저장소의 배지의 부피가 0.5밀리리터 미만으로 농축될 때까지 섭씨 4도 및 2,000배G의 스윙 버킷 로터에서 15 내지 30분 간격으로 배지를 원심분리한다.

남은 여과된 배양 배지로 저장소를 채우려면 장치 바닥의 흐름을 제거하여 균형을 재조정하십시오. 저장소에 있는 농축 배지의 점도가 눈에 띄게 증가하면 PBS로 배지를 희석하고 원심분리로 재농축하여 분자량 컷오프인 100킬로달톤보다 작은 비세포외 소포 또는 EV 단백질을 감소시킵니다. 그런 다음 농축된 배지를 저단백 결합 튜브로 옮겨 섭씨 4도에서 밤새 보관합니다.

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