August 3rd, 2011
여기 샘플 제한된 양의 작업 특히, microRNA (miRNA) 표현 수준에 대해 비용과 시간 효율 높은 처리량 검사 도구로 microfluidic 플랫폼와 함께 최적화된 멀티 플렉스 반전 transcriptase 정량 PCR (qRT - PCR) 프로토콜을 설명합니다.
이 절차의 전반적인 목표는 멀티플렉스 정량적 R-T-P-C-R을 미세유체 플랫폼과 결합하여 최소한의 시작 물질로 효율적이고 저렴하게 마이크로 RNA 발현을 프로파일링하는 것입니다. 이는 추출된 RNA를 농축하는 것으로 시작하여 multiplex 역전사 및 multiplex 사전 증폭으로 이어집니다. 다음 단계는 과도한 프라이머를 정제하는 것입니다.
마지막으로, singleplex micro RNA 발현은 미세유체 플랫폼을 사용하여 프로파일링됩니다. 그 결과 관심 샘플에서 정확하고 재현성이 높은 micro RNA 발현 수준을 얻을 수 있습니다. 기존 방법의 이 기술의 주요 장점은 pre-EMP 증폭 후 추가 정제 단계가 멀티플렉스 Q-R-T-P-C-R 방법의 정확도와 재현성을 향상시킨다는 것입니다.
혈청에서 추출한 RNA로 시작하십시오. RNA 정제 키트 또는 트리올과 같은 균질화된 조직에서 추출한 페놀 클로로포름 기반 RNA 방법을 사용하여 모든 추출은 세척 단계를 거쳐야 하며 모든 보관은 섭씨 영하 80도에서 수행됩니다. RNA 용액을 농축합니다.
혈청과 같이 제한된 양의 샘플로 시작하는 경우 먼저 MicroCon 샘플 저장소를 바이알에 삽입한 다음 RNA 용액을 저장소로 피펫팅하고 피펫 팁으로 멤브레인을 만지지 않도록 매우 주의합니다. 이제 균열 밴드가 로터 쪽으로 향하도록 바이알과 필터를 원심분리기에 놓고 약 3시간 동안 원심분리를 실행합니다. 3시간 후, RNA는 멤브레인에 완전히 농축되어 RNA를 용리시킵니다.
멤브레인에 원하는 양의 RNA 자유수를 추가하고 저장소를 뒤집어 새 바이알에 넣습니다. 그런 다음 xpl 역 줄기 루프 프라이머를 사용하여 RNA에 RT 반응을 수행한 후 필요할 때까지 농축된 RNA를 G.Store 최대 3000배로 섭씨 4도에서 3분 동안 회전시킵니다. microRNA는 CD NA 가닥으로 표시됩니다.
이를 프리 PCR 산물이라고 합니다. 다가오는 QPCR을 참조합니다. pre PCR 산물은 10% 폴리 아크릴아미드 겔에서 정제해야 하며, 10개의 염기 쌍을 이룬 DNA 사다리 부하와 함께 각 레인에 5.5마이크로리터의 6 x 주황색 G와 27.5마이크로리터의 사전 PCR 산물을 결합해야 합니다.
젤을 150볼트에서 55-60분 동안 실행합니다. 로모 페놀 블루는 20 염기쌍 영역의 이 겔에서 실행됩니다. 젤이 실행된 후 빛에 노출되지 않고 염색된 젤의 셰이커에 25분 동안 사이버 골드로 염색합니다.
pre PCR 산물 밴드를 60 - 80 염기쌍으로 잘라내고 겔 블록을 표지된 튜브로 옮깁니다. 제품 농도가 낮으면 눈에 보이지 않을 수 있지만 젤에는 여전히 남아 있습니다. 이제 튜브 원심분리에서 튜브를 사용하여 겔 밴드를 부수고 300마이크로리터의 TEN 버퍼를 추가합니다.
완충 젤 혼합물을 교반과 함께 섭씨 37도에서 4시간 동안 배양합니다. 4시간 후, 유체를 새 튜브로 옮기고 300마이크로리터의 TEN 버퍼를 더 추가합니다. 이 혼합물을 섭씨 4도에서 밤새 교반하면서 배양합니다.
다음날, 튜브 내용물을 다시 옮기고 pre PCR 산물의 에탄올 침전을 진행하십시오. 패키지에서 칩을 열 때는 24시간 이내에 프라이밍해야 하며 프라이밍 후 60분 이내에 로드해야 합니다. 칩의 각 어큐뮬레이터에 150마이크로리터의 제어 라인 유체를 주입하여 어레이를 프라이밍하기 시작합니다.
칩이나 입구에 액체를 흘리지 않도록 주의하면 칩을 사용할 수 없게 됩니다. 그런 다음 칩을 통합 유체 회로 또는 IFC 컨트롤러에 놓고 컨트롤러의 프라이밍 스크립트를 실행합니다. 프로그램이 시작되자마자 샘플 준비를 시작합니다.
pres 샘플을 준비하는 것으로 시작합니다.Tack man, universal master mix 및 loading 시약의 조합을 혼합합니다. 그런 다음 96 웰 로딩 형식을 사용하여 각 샘플 2.25마이크로리터를 2.75마이크로리터의 프레스 샘플 혼합물과 결합하여 로드된 유체를 수집합니다. 잠시 소용돌이치고 섭씨 4도에서 플레이트를 빠르게 원심분리합니다.
이제 샘플 플레이트가 준비되었습니다. 이제 새로운 96 웰 플레이트를 사용하여 13 x 농도의 분석 혼합물을 준비합니다. 이는 웰당 하나의 범용 프라이머, 전방 프라이머 및 유전자 특이적 tac man 프로브를 혼합하여 수행됩니다.
1 X 농도는 범용 및 전방 프라이머의 경우 1 마이크로 몰이고 tac man 프로브의 경우 0.2 마이크로 몰입니다. 그런 다음 5마이크로리터의 최종 웰 부피에서 0.25%트윈의 최종 농도를 위해 충분한 트윈을 추가합니다. 거품을 피하고 잘 섞고 접시를 짧게 돌려 액체를 모으십시오.
이것은 분석 플레이트입니다. 칩을 로드하여 96.96 Q-R-T-P-C-R을 시작합니다. 먼저 샘플을 로드한 다음 주입구당 5마이크로리터의 최종 부피로 분석을 IFC에 로드합니다.
둘째, 로드 믹스 스크립트를 실행하여 샘플과 어세이를 칩에 로드합니다. 스크립트가 끝나면 로드된 칩에서 보호 필름을 벗겨내고 접착 테이프를 사용하여 칩 표면의 먼지 입자나 부스러기를 제거합니다. 이제 바이오 시스템 증폭 프로그램을 설정하십시오.
칩을 시스템에 로드하고 프로그램을 실행합니다. 결과는 유체 다임 소프트웨어로 분석하여 각각에 대한 증폭 곡선, 전체 칩 히트 맵 및 CT 값을 제공할 수 있습니다. 잘 천연 폴리 아크릴아미드 겔, 야생형 DG CR 8 및 ER null 돌연변이체에 크기 분리에 의해 정제된 사전 PCR 제품을 사용합니다.
RNA는 이전 프로토콜과 비교하여 준비되었습니다. 정제 단계 덕분에 DGCR 8개의 null 및 ER null 배경 모두에서 더 많은 microRNA와 거짓 양성 신호의 손실이 발생합니다. 또한 수정된 QR TPCR R 접근법을 통해 희귀 D gcr 8개의 독립적인 다이서 의존성 small RNA를 적절하게 분류할 수 있습니다.
여기서, 환자와 대조군의 48개 세라를 384개의 서로 다른 microRNA의 발현 변화에 대해 스크리닝했습니다. 데이터는 각 샘플에 대해 해당 중앙값을 빼고 대조군에서 스파이크를 사용하지 않고 정규화되었습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 독감 라인 플랫폼의 멀티플렉스 Q-R-T-P-C-R을 사용하여 매우 제한된 입력인 RNA로 시작하는 경우에도 여러 샘플에 걸쳐 수백 개의 마이크로나제를 동시에 프로파일링하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
이 기사는 미세 유체 플랫폼과 통합된 최적화된 다중 역전사 중합효소 정량 PCR(qRT-PCR) 프로토콜을 소개하며, 이는 마이크로RNA(miRNA) 발현 수준의 효율적인 프로파일링을 위해 설계되었습니다. 이 방법은 특히 제한된 시료량을 포함하는 연구에 유리합니다.
Accurate microRNA profiling is critical for target validation and biomarker discovery in early drug development, particularly when working with limited clinical samples. This optimized multiplex qRT-PCR method on microfluidic platforms enhances data reliability while reducing reagent consumption, supporting cost-effective high-throughput screening. The purification step addresses a key limitation in existing methods, improving confidence in downstream mechanistic and translational decisions.
The method fits within the discovery continuum from early target hypothesis testing through lead optimization, where reliable miRNA expression data informs target prioritization and mechanism of action studies.