January 6th, 2011
수술을하기 전에, 새로운 외과 수술의 기본 기술과 개념의 교육이 있어야합니다. 이 문서는 설치류에 대한 강조와 함께 기본적인 수술 고려 사항을 제시합니다.
이 절차의 전반적인 목표는 설치류의 무균 수술과 관련된 원칙과 관행을 설명하는 것입니다. 이는 먼저 멸균 분야의 개념을 도입함으로써 달성됩니다. 다음으로, 멸균 영역의 원활한 작업 흐름과 유지 관리를 가능하게 하는 작업 영역의 올바른 준비가 입증됩니다.
그런 다음 설치류에 대한 환경 오염 물질의 도입과 통증을 최소화하기 위해 동물과 외과 의사를 준비시키는 데 필요한 단계를 설명합니다. 마지막으로, 수술 대상자의 조직 취급 및 수술 후 관리와 같은 간단한 수술 고려 사항에 대해 논의합니다. 일반적으로 수술을 처음 접하는 연구자들은 무균 기술과 기술적으로 까다로운 수술 절차를 동시에 배우기 때문에 어려움을 겪을 것입니다.
무균 기술의 시각적 시연은 종종 이러한 기술이 공식적인 의료 교육을 받지 않은 개인에게 생소하기 때문에 중요합니다. 수술 절차를 시작하기 전에 현지 법률 또는 윤리 당국의 승인을 받아야 합니다. 여기에는 기관 동물 관리 및 사용 위원회, 윤리 위원회 또는 내무부가 포함될 수 있습니다.
이 비디오는 기관에서 제공하는 실습 교육에 대한 소개 또는 보충 자료입니다. 설치류에 대한 수술 절차의 목표는 패혈증 또는 수술 후 감염이 없는 것입니다. 이를 위해서는 외과 의사의 손을 소독하고, 기구를 소독하고, 수술 부위를 소독해야 합니다.
뛰어난 무균 기술을 사용하더라도 환자에서 유래한 박테리아가 여전히 상처에 유입될 수 있습니다. 적절한 무균 기술은 감염원, 주로 박테리아가 상처와 수술 부위에 유입될 위험을 제한합니다. 멸균 영역은 기구가 배치되는 영역과 수술을 위해 동물에 준비된 영역을 포함합니다.
멸균 영역은 외과 의사의 앞면과 수술에 필요한 모든 용품 및 장비를 포함하는 동물의 위, 아래 및 주변 영역입니다. 장비, 재료 또는 외과의가 멸균 영역을 벗어나는 경우, 외과의는 감염 위험을 피하기 위해 즉시 기술 중단을 중지하고 해결해야 합니다. 설치류 수술에는 전용 수술실이 필요하지 않지만 이상적으로는 후드 또는 얇은 판 흐름 캐비닛에서 수행됩니다.
지역은 깔끔하고 조명이 밝으며 교통 흐름이 없어야 합니다. 실험실 벤치 탑에서 수술을 수행하는 경우 소독제로 잘 청소해야 합니다. 수술 부위를 설정하기 전에 세 개의 뚜렷한 구역이 있도록 수술 부위를 정렬하십시오.
준비 부위에 대한 준비, 수술 및 회복, 윤활제, 안과 연고, 이발기 또는 지우개와 같은 필요한 용품 및 수술 부위에 대한 수술용 스크럽 용액을 조립하고 설치류를 따뜻하게 유지하기 위한 재순환 온수 가열 패드 및 멸균 방수 패드와 같은 필요한 용품을 조립 및 배치합니다. 한 세션에서 연속적인 수술을 수행해야 하는 경우 핫 비드 살균기와 같은 기구 살균기도 사용할 수 있어야 합니다. 마지막으로, 외과적 절개 부위, 봉합사 및 바늘, 스테이플 애플리케이터 스테이플 또는 조직 접착제를 봉합하는 데 필요한 재료를 조립합니다.
정위 기구, 임플란트 또는 작동 현미경과 같은 기타 필요한 장비도 준비해야 합니다. 회복 영역에는 발열 패드 위에 놓인 큰 케이지가 있어야 하며, 일반적으로 수술 시작 시 평평한 종이 침구를 깔아야 합니다. 모든 기구는 깨끗하고 멸균되어야 합니다.
이것은 종종 오토클레이브인 완전한 수술 팩을 만들어 수행됩니다. 입체택시. 기구는 수술 사이와 부위 사이, 귀나 앞니와 같은 동물과 접촉하거나 외과의가 사용해야 합니다(예: 손잡이는 사용 전과 동물 사이에서 소독해야 합니다). 손잡이는 수술 중 멸균 상태를 보장하기 위해 멸균 랩으로 덮을 수 있습니다.
기구는 고압멸균 및 재포장 없이 한 번 이상의 설치류 수술에 사용할 수 있지만 뜨거운 구슬과 같이 설치류 간에 세척 및 멸균해야 합니다. 멸균기는 멸균 후 기구가 조직에 접촉하기 전에 식을 시간을 허용합니다. 다시 말하지만, 기구는 멸균 물에 담그어 호출할 수 있으며 알코올은 sterrett이 아닙니다.
일반적으로 수술 전에 설치류에 투여되는 약물은 마취제, 진통제 및 항생제의 세 가지 유형입니다. 마취는 흡입제 또는 주사로 투여할 수 있습니다. 설치류에서 사용되는 가장 일반적인 흡입 마취제는 불소입니다.
일반적인 주사 가능한 마취제에는 케타민과 자일라진이 포함되며, 다른 진정제를 첨가하거나 첨가하지 않습니다. 많은 마취제는 눈 깜빡임 반사를 없애줍니다. 시술을 시작하기 전에 항상 눈을 보호하기 위해 멸균 안과 연고를 사용하십시오.
선제적 진통제가 권장되며 독감 닉슨과 같은 비스테로이드성 항염증제와 부프레노르핀 또는 모르핀과 같은 오피오이드가 포함됩니다. 수술 부위를 준비하려면 먼저 수염을 면도합니다. 모발은 수술 절개 부위로 오염을 옮길 수 있으므로 예상되는 절개 부위보다 넓은 여백을 두고 면도합니다.
예를 들어, 1cm 절개의 경우 3cm 부위가 준비되는 경우가 많습니다. 이것은 동물의 크기 또는 해부학적 영역에 의해 제한될 수 있습니다. 수술용 스크럽과 70% ISA 프로파일 알코올을 원형 패턴 또는 단방향 끝단으로 번갈아 가며 세 번 번갈아 가며 수행하고 알코올이 아닌 스크럽 용액을 최종적으로 도포합니다.
다음으로, 수술 부위가 위쪽을 향하도록 동물을 배치합니다 외과의는 마지막으로 발가락 꼬집기를 수행하여 동물이 깊이 마취되었는지 확인합니다. 외과 의사의 준비는 외과 의사가 멸균 영역 안팎의 모든 움직임을 인식해야 하는 특별한 활동이 일어날 것임을 강조해야 합니다. 머리카락과 얼굴은 일반적으로 각각 모자와 마스크로 덮여 있습니다.
이들은 수술 세션을 시작할 때 새것이어야 하지만 동물 간에 변경할 필요는 없습니다. 수술 전에 손을 잘 씻어야 합니다. 수술에는 멸균 수술용 장갑을 사용해야 합니다.
장갑은 동물 간에 또는 시술 중 손상되거나 오염된 경우 교체해야 합니다. 이상적으로는 외과의가 일회용 수술 가운을 착용해야 하지만 일회용이거나 최근에 세탁한 깨끗한 실험복은 허용됩니다. 실험복은 동물 간에 갈아입을 필요는 없지만 수술 세션 사이에 교체해야 합니다.
수술을 시작하려면 멸균 방수 드레이프로 드레이프를 드레이프하십시오. 적절한 산소 공급과 마취 깊이를 위해 동물을 주기적으로 모니터링하십시오. 마취 깊이를 모니터링하는 것이 무균 상태의 중단과 관련된 경우, 외과 보조원이 이 작업을 수행해야 합니다.
무균 상태의 단절은 즉시 수정해야 합니다. 절차의 일반적인 중단에는 얼굴을 긁거나 광원과 같은 멸균 영역 밖의 물건을 만지는 것이 포함되며, 멸균 상태가 경과한 경우 즉시 장갑을 교체해야 합니다. 동물에 대한 추가 지원에는 표준 축산 침구가 아닌 종이 타월 또는 기타 평평한 종이 침구가 깔린 따뜻한 케이지에서 동물을 회수하는 0.9% 염화나트륨과 같은 따뜻하고 멸균되며 생리학적으로 균형 잡힌 용액의 복강내, 피하 또는 정맥 투여가 포함되어야 합니다.
회복 케이지는 가열 패드에 절반을 놓을 수 있으므로 동물이 이동식 귀환 후 더 시원한 곳으로 이동할 수 있습니다. 수술 후 동물은 수술 후 케이지 주위를 정상적으로 움직일 수 있게 된 후에만 동물을 안고 있습니다. 음식과 물에 더 쉽게 접근할 수 있도록 합니다.
동물이 더 쉽게 먹을 수 있도록 음식을 부드럽게 하기 위해 음식에 물을 첨가합니다. 동물에게 통증 징후가 있는지 모니터링해야 하며 수술 후 진통제가 필요할 수 있습니다. 또한 수술 상처에 염증이나 감염이 있는지 모니터링한다.
상처 봉합은 수술 후 10-14일 후에 제거해야 합니다. 성공적인 수술은 감염이 없는 수술입니다. 통증이 경미하고 수술을 수행하는 연구원의 목표가 충족됩니다.
구체적인 수술과 그 목적은 검사실마다 다르지만 무균 기술은 항상 표시됩니다. 수술 및 기술 배우기. 더 많은 수술을 수행할수록 무균 기술 유지에 대한 자신감과 성공이 커집니다.
이 비디오를 시청한 후에는 무균 기술의 원칙이 설치류 수술에 어떻게 적용되는지 알 수 있을 것입니다. 모든 수술에는 고유한 기술적 요구 사항이 있지만 무균 상태의 원칙은 항상 적용됩니다.
이 기사는 설치류 절차에 대한 기본 수술 기술에 중점을 두고 신규 수술의사를 위한 필수 교육을 제공합니다. 수술 중 감염 위험을 최소화하기 위한 무균 관행의 중요성을 강조합니다.
For biopharma R&D, establishing robust aseptic technique in rodent surgery is foundational for generating reliable preclinical data. Infection or procedural variability can confound study outcomes, undermining target validation and mechanistic de-risking efforts. Standardized surgical practices enhance reproducibility across discovery and translational workflows, supporting confident go/no-go decisions.
Aseptic rodent surgery integrates into discovery biology by enabling reliable model generation, into screening through consistent tissue preparation, and into translational research by supporting survival-based endpoints.