Name: 유동세포계측법에 의해 피해를 입은 척수 조직에서 면역 세포의 양적 평가 : 세포 정제 방법에 대한 소설을 사용 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-09T11:00:00.000+00:00
Duration: 8 min
Description: 학습하세요 유동세포계측법을 이용한 척수 손상 조직의 면역 세포 정량 분석 방법입니다. 지질 미엘린 잔해를 제거하여 염증 반응을 정확히 평가하고 신경면역학 연구에 활용할 수 있습니다.

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우리는 레베카 니시, MS, 그리고 동물 수술에서 도움을 UC 어바인에있는 크리스토퍼 &amp; 데이나 리브 재단​​ 동물 핵심 시설의 기술자 감사합니다. 우리는 또한 기술 지원, 원고 및 비디오 촬영 준비 및 애니메이션을위한 가브리엘 Funes, 우샤 Nekanti 및 Denisse 모레노 감사드립니다. 이 연구는 NINDS (AJA에 RO1 NS43428 - 01), 미국의 마비 프로젝트 (HXN에 PPA - 32574) 및 재생 의료에 대한 캘리포니아 연구소 (CIRM) 줄기 세포 교육 수상 HXN에 T1 - 00008에 의해 지원되었다. KDB는 UC 어바인 (T32 NS007444)에서 분자 및 세포 신경 과학의 훈련 프로그램에 의해 지원되었다.

1. 척수 조직의 분리 <ol><li> 척수 세그먼트 부상 아닌 부상이나 타박상 척수의 T8 - T10 (T9에서 부상) 스프 라그 돌리 쥐가를 해부하고 실온에서 HBSS에 좋은 가위로 기계 dissociated 있었는처럼 이전 1 설명했다. 조직 분리하기 전에, 전체 척수 컬럼은 코드 세그먼트 T8 - T10의 추출하기 전에 5 분 드라이 아이스에 보관했다. </li><li> 조직 비트는 원심 분리 (1 분, 1000 RPM, 상온) 및 2.5 MG 트립신 37 20 분 5 ML DME (Dulbecco의 수정된 이글의 미디어) 5 MG의 collagenase ° 분쇄하기 전에 C (와 효소 dissociated에서 검색되었습니다 ~ 10 회 상온에서) 유리 파스퇴르 피펫 (9 인치)와 함께. </li><li> DME + 10% 태아 소 혈청의 10 ML는 효소 활동을 억제하고 다음 40 μm의 셀 스트레이너를 통해 필터링되었습니다 세포에 추가되었습니다. 빠른 스핀 후, 세포 펠렛은 HBSS 6 ML의 resuspended되었으며 OptiPrep 기울기 솔루션 아래에 설명된에 overlayed. </li></ol> 2. OptiPrep 경사도 솔루션을 만들기 <ol><li> 희석 OptiPrep는 걸레의 버퍼 (0.15 M NaCl, 10 MM 걸레, 산도 7.4)와 OptiPrep 1시 1분을 diluting에 의해 건설되었습니다. </li><li> 푸르 OptiPrep 기울기 솔루션은 혼합 350, 250, 200, 또는 1 ML (표 1)의 최종 볼륨 HBSS 150 μl 희석 OptiPrep에 의해 만들어졌다. </li><li> 네 가지 솔루션은 천천히 그리고 조심스럽게 바닥에 최소 희석 및 상단 (그림 1A)에서 가장 희석과 15 ML 원뿔 관에 레이어에 배치했다. </li></ol> 3. 세포에서 지질 / myelin 파편을 분리 <ol><li> HBSS에 dissociated 척수 세포 6 ML은 신중하게 OptiPrep 기울기 솔루션의 위에 계층되었습니다. </li><li> 튜브가 들어있는 셀 및 기울기 솔루션은 지질과 별개의 레이어에 셀 솔루션을 분리, 스윙 - 버킷 로터 (A - 4 - 62)와 함께 Eppendorf의 원심 분리기의 5810R을 사용하여 (15 분, 1900 rpm 또는 726 RCF, 20 ° C) centrifuged되었습니다 / 펠렛에 염증 세포, glia, 그리고 적혈구와 뉴런의 3 레이어, 다음 myelin의 파편 (상단 7 관 ML). monocytes, macrophages, PMN의 granulocytes 및 lymphocytes를 포함한 대부분의 염증 세포, 펠렛에서 발견 되었으나, 일부 대형 - 활성화 macrophages은 펠릿 위의 레이어에서 찾을 수 있습니다. </li><li> 지질 / myelin 파편 레이어 (상단 7 ML)는 신중하게 aspirated 및 제거되었습니다. 전지는 다음 세탁 및 2.5 ML의 HBSS에 resuspended 아래 immunolabeling 사용되었습니다. </li></ol> 4. 유동세포계측법 특정 면역 세포의 Immunolabeling <ol><li> 척수 준비에서 수집한 전지 (500 μl) pelleted되었으며 적혈구를 lyse 5 분 0.85 %의 암모늄 염화물 (증류수에 희석)에 resuspended. </li><li> 셀 500 μl HBSS로 씻어 후 실온에서 정상 토끼 또는 마우스 혈청에서 30 분 차단되었습니다. </li><li> 또는 희석 isotype IgG 솔루션 세포는 1 항체와 시간 (;, 마우스 안티 쥐 ED1 알렉사 488, Serotec 또는 마우스 방지 새앙쥐 인 경우에는 3 번 CD를 알렉사 488 래빗 방지 PMN FITC 정확한 화학 및 과학)에 대한 세탁과 실온에서 incubated되었습니다 HBSS는 (1:100 희석 모든)로 이전 한 설명했다. </li><li> 세포는 최종 단계 이후에 300 μl HBSS에 resuspended 위에 그리고 각 단계 이후에 두 번 씻어했다. </li></ol> 5. 유동세포계측법에 의해 세포 양적 평가 <ol><li> 샘플은 세포 퀘스트 소프트웨어를 사용하여 외과 Calibur (백톤 - 디킨슨) 흐름 cytometer에 분석했다. 샘플 5,000 이벤트는 모두 샘플에 대해 읽고 있었고, 데이터 분석 서밋 (DakoCytomation)에 완성되었다. </li><li> 흐름 cytometric 게이츠는 이전에 다음 ID로 한 설명된 바와 같이 시간이 지점에 걸쳐 정상화에 대한 기본 값을 설정하는 제어 IgG isotype 표시 셀 또는 손상되지 않은 컨트롤 동물의 척수에있는 세포를 사용하여 설정되었다. 적극적으로 분류 세포의 평균 값은 전체 샘플의 퍼센트 (± SEM)로 표현했다. </li></ol> 6. 대표 결과 : myelin 파편을 제거하고 유동세포계측법에 의해 면역 세포 검출을 향상시키기 위해 OptiPrep 기울기의 기능은 1 척추 PMNs를 quantifying에 의해 평가되었다 DPI (그림 1B), SCI 1-3 이후 PMN의 침투 이전에 보고된 정상. 또는 동일 해부 척추 코드는 myelin 파편 OptiPrep - 제거하지 않고 효소 dissociated되었으며 마찬가지로 유동세포계측법하여 PMN의 침투에 대한 병렬로 평가되었다. 우리가 이전에 하나보고 있으므로, 그대로 myelin의 부스러기와 샘플에서 검색된 PMNs의 비율을 보여주는, 단지 소수 (0.5 %) 혼자 효소 분해에 비해 OptiPrep 기울기 정화 방식과 격리 샘플에서 이벤트의 위치에 변화가 있었어 OptiPrep purif에서 검색된 PMNs의 비율 (5.1 %)의처음엔 샘플 (그림 1B). 이러한 데이터는 조직의 준비에서 myelin 파편이 흐름 cytometric 신호가 불분명한 수있는 제안하고, myelin의 파편의 제거가 부상 척수 조직에서 면역 세포 검출의 감도를 향상 보여줍니다. 부상 척수의 세포 검출을위한 OptiPrep 기울기 시스템의 감도를 설립하는 데, 우리는 2 시간에서 180 DPI에 이르는 기간 동안 세포 침윤의 변화를 특징 및 PMNs, macrophages을 포함 SCI 후 세포 염증의 소설 multiphasic 응답을 설립 / microglia 및 T - 세포. 1-3으로 이전 연구에 의해 확인, PMNs 먼저 2 시간 이후 부상에서 코드를 입력하고 1 DPI를 (그림 2 및 4) 만족. 반면 1,4,5에 Macrophages / microglia는 3 DPI까지 부상 척수에서 발견, 7 DPI (그림 3 및 4)에 처음 만족되지 않았습니다. 놀랍게도, 우리는 macrophages / microglia 두 번째 시간을 60 DPI에 대한 만족을 180 DPI (그림 3 및 4)을 통해 고가 남은 처음으로 표시됩니다. macrophages / microglia, 마찬가지로 T - 세포 침투는 7 DPI 5-7을 최대로 예측했다 있지만, 유동세포계측법는 T - 세포의 높은 번호가 감지되었습니다 불구하고, 첫 번째 7 DPI에서 T - 세포 번호 변경 사항을 감지하지 않았 9 DPI (1.6 %) (그림 4). T - 세포 숫자는 10 DPI, 영구적인 T 세포 반응은 세포의 4.4 %가 인 경우에는 3 번 CD에 들어 (그림 4)로 분류되었던 당시, 180 DPI를 통해 관찰되었다하여 감소하고있는 동안. 함께, 이러한 데이터는 SCI 후 세포의 염증 (그림 4)의 시간 의존 multiphasic 반응을 보여, 세포 염증의 초기 단계는 DPI는 ED1의 피크 + macrophages / microglia 7 DPI와 T에 의해 다음 PMNs 1 초에 최대로 구성되었습니다 - 전지 9 DPI, 나중에 단계 60 DPI에서 macrophages / microglia의 주목할만한 초 피크와 14 DPI 후 상승 180 DPI를 통해 저항을 세 세포 인구의 구성 동안. 이 timecourse 연구 및 유동세포계측법에 의해 생성되는 양적 데이터는 immunolabeled 척수 섹션 1 양적 stereology에서 수집된 데이터 비교 결과를 보여주는, 이전에 검증되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698table1.jpg" alt="표 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="표 1"> 표 1. myelin의 파편의 제거를위한 OptiPrep 기울기의 작성. 네 OptiPrep 기울기 솔루션은 HBSS와 희석 OptiPrep (OptiPrep와 걸레의 1시 1분 희석)을 사용하여 만들어집니다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. OptiPrep 기울기 밀도 별도의 대부분의 myelin / 부상 척수 조직 / 세포에서 파편과 유동세포계측법에 의해 면역 세포 평가를 향상시킵니다. (A) Myelin / 파편은 myelin / 파편 계층의 열망 다음 OptiPrep 기울기를 통해 dissociated 척수 조직의 원심 분리 후 세포 (뉴런, glia 및 면역 세포)에서 분리되었다. 부상 척수에서 (B) PMN 번호, 파편 제거 후 PMNs를 감지 증가 감도 (학생의 T - 테스트, P는 = 0.0001)를 보여주는. n은 그룹당 = 5, ± SEM을 의미, 모든 흐름 cytometric 게이츠는 손상되지 않은 동물의 분류 세포를 사용하여 설정되었다. 샘플 5,000 이벤트는 모두 샘플에 대한 읽을 수 있었고, 긍정적으로 표시된 세포의 평균 값은 전체 샘플의 퍼센트 (± SEM)로 표현했다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 유동세포계측법으로 부상 척수에 PMN 침투 감지. T9에서 중간 (200 KD) 타박상 부상 후, PMNs 신속하게 2 시간 (B) 후 부상을 시작하고 1 DPI (C)를 peaking 척수를 입력했습니다. 모든 흐름 cytometric 게이츠는 손상되지 않은 동물에서 표시된 세포를 (A)를 사용하여 설정되었다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. macrophages / 유동세포계측법으로 부상 척수에서 microglia의 침투 감지. T9에서 중간 (200 KD) 타박상 부상 후 ED1 + 대식 세포 / microglial 번호 3 DPI (D)에서 시작 부상 척수 증가 7 DPI (E)에서 심하게 만족, 14 DPI (F)에서 낮은 수준으로 떨어졌다 전에는 60 DPI (G)에 두 번째 피크로 상승하고, 최대 180 DPI (H)로 부상 척수에 남아. 7 DPI 척수 세포의 IgG isotype 관리 라벨 (B)는 최소한의 항체 - 라벨 배경과 2 시간에서 항체 - 레이블 셀이 후 부상 (C) 또는 손상되지 않은 (A) 동물 어떠한 차이가 없음을 보여 줬다. 모든 흐름 cytometric 게이츠는 손상되지 않은 동물의 분류 세포를 사용하여 설정되었다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698table2.jpg" alt="표 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="표 2"> 표 2. timecourse 실험에서 동물 샘플. 각 시점 (0 HR 180 DPI)의 경우, 다섯 동물, T9에서 중간 (200 KD) 타박상의 상처를 받았습니다및 척수 조직이 PMNs, ED1 + macrophages / microglia, 그리고 인 경우에는 3 번 CD + T - 세포의 숫자 유동세포계측법에 의해 평가되었다. 그러나, 모든 동물의 샘플 PMN (4-5), ED1 (3-5), 그리고 인 경우에는 3 번 CD (4-5) 흐름 cytometric 분석을 성공적으로 복구되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/2698/2698fig4.jpg" alt="그림 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 4"> 그림 4. T9에서 중간 (200 KD) 타박상 부상 다음과 척수에 염증 세포의 timecourse. 으로 유동세포계측법, PMNs의 숫자, ED1 + macrophages / microglia, 그리고 인 경우에는 3 번 CD에 의해 평가 + T - 세포가 심하게 만족 (각각 1,7, 9 DPI) 및 부상 척수에서 만성 지속. n은 = 3-5 회 그룹, ± SEM을 뜻합니다.

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<li>Tjoa, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+flow+cytometry+to+assess+neutrophil+infiltration+in+the+injured+murine+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">The use of flow cytometry to assess neutrophil infiltration in the injured murine spinal cord.</a> J Neurosci Methods. 129, 49-59 (2003).</li>
<li>Gonzalez, R., Glaser, J., Liu, M. T., Lane, T. E., Keirstead, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reducing+inflammation+decreases+secondary+degeneration+and+functional+deficit+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Reducing inflammation decreases secondary degeneration and functional deficit after spinal cord injury.</a> Exp Neurol. 184, 456-463 (2003).</li>
<li>Stirling, D. P., Yong, V. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+the+inflammatory+response+after+murine+spinal+cord+injury+revealed+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Dynamics of the inflammatory response after murine spinal cord injury revealed by flow cytometry.</a> J Neurosci Res. 86, 1944-1958 (2008).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

CNS의 면역 세포를 수치 유동세포계측법의 사용은 지질 / myelin 내용과 파편에 의해 복잡합니다. 항체와 결합 특이성을 방해하는 것 외에도, myelin의 잔해 측정 감도와 정확도 8 감소, 유사한 크기 및 면역 세포에 과립 속성을 가질 수 있습니다. 여기에서 설명한 새로운 세포 준비 방법은 myelin 부스러기를 제거에 효과적입니다시키고 부상 척수에 염증 세포의 변화를 감지 유동세포계측법의 감도를 향상시킵니다. SCI는 PMNs에 대한 전체 시간 코스를 포함하는 다음 예를 들어, 면역 세포의이 방법 향상된 검출하여 myelin의 파편의 제거 alone.Critically 효소 분해에 비해,이 방법의 소설의 사용은 급성 및 만성 세포 염증의 첫 번째 특성 허용 macrophages / microglia, 그리고 T - 세포 최대 180 DPI하고, 세포 염증의 소설 두 번째 단계를 식별. neuroinflammation의 multiphasic 구성 요소의 이러한 중요한 연구 결과는 SCI에 대한 세포 기반 및 약리 모두 중재를 포함한 합리적인 치료 치료 전략의 설계 및 구현을위한 중요한 수 있습니다. OptiPrep 기울기 시스템은 세포 배양을 목적으로 10 두뇌의 혈액 9 셀 또는 정화 뉴런에서 별도의 파편하는 데 사용되었습니다 있지만, 우리는 수정 및 척수 dissociated 세포의 myelin 파편을 분리하기 위해이 방법을 시스템을 고급하고, 허용해야 유동세포계측법에 의해 세포 염증의 신속하고보다 정확한 양을 정함. 함께 유동세포계측법와 함께이 방법은 대부분의 연구는 세포 유형 특정하지 않거나 항상 true를 제공​​할 수 없습니다 형태학의 및 histological 기술을 사용하여 CNS의 세포 염증을 특징 것처럼, CNS의 부상이나 병적인 조건 후 염증의 연구에 상당한 발전을 제공하는 가능성이 높습니다 양적 평가. 또한, 몇 가지 최근 연구 신선한 dissociated 코드 조직 11,12 또는 Percoll 기울기 시스템 13로 구분하여 세포를 사용하여 유동세포계측법으로 부상 척수에서 면역 세포를 계량 시도했다, 그러나 이러한 연구가 낮은 세포 수율 중 하나를 증명하거나 구분해야 면역 세포의 검출. 반면, OptiPrep 기울기 셀 준비 방법은, 처음으로 등급 부상 심각에 대한 응답으로 최대 180 DPI 확장 timecourse 이상의 세포 염증의 변화 유동세포계측법에 의해 민감하고 안정적​​인 양적 평가를 제공하고 있습니다. 흐름 cytometric 분석의 감도 및 안정성 또한 특정 면역 세포 유형을 감지하는 데 사용되는 항체의 특이성에 따라, 유동세포계측법로 형태학의 기준이 더 셀 유형을 구분하는 것을 허용하지 않습니다. PMNs, macrophages는 / microglia 또는 T - 알려줍에 대한 항체의 특이성은 부상 척수 조직 1,2의 문화와 세포의 복막 PMNs 및 폐포 macrophages에 대한 유동세포계측법에서 철저하게 테스트되었습니다. 함께 OptiPrep 기울기 시스템, 유동세포계측법 사용이 항체는 SCI의 microenvironment의 역학에 대한 새로운 통찰력을 제공하고, 처음으로 확장된 multiphasic 응답 할에 대한 식별이 세포 염증의 시간적 및 정량 분석​​의 생성에 기여해야 세포 염증니다. SCI 후 세포의이 multiphasic 반응은 부상 후 특정 시간에 존재 특정 세포 유형의 역할을 조사하거나 부상을 악화 수있는 특정 세포 종류에 대한 치료 개입을 생성하는 것이 중요있을 수 있습니다. 또한, 이러한 연구 결과는 SCI에 대한 최적의 약물 또는 셀 기반의 개입에 대한 적절한 근거의 개발에 도움이됩니다.

<table border="1"><tbody><tr><th> 시약의 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th></tr><tr><td> OptiPrep </td><td> 피셔 사이 언티픽 </td><td> NC9182490 </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> 시그마 </td><td> H1387 </td></tr><tr><td> 토끼 안티 쥐 PMN (FITC) </td><td> 정확한 화학 &amp; 과학 </td><td> AIFAD51140 </td></tr><tr><td> 마우스 안티 쥐 ED1 (알렉사 플루어 488) </td><td> AbD Serotec </td><td> MCA341A488 </td></tr><tr><td> 마우스 안티 쥐 인 경우에는 3 번 CD (FITC) </td><td> AbD Serotec </td><td> MCA772F </td></tr><tr><td> 트립신 </td><td> 시그마 </td><td> T9935 </td></tr><tr><td> Collagenase </td><td> 시그마 </td><td> C5138 </td></tr><tr><td> DME </td><td> 시그마 </td><td> D1152 </td></tr><tr><td> 마우스 IgG1 (알렉사 플루어 488) </td><td> AbD Serotec </td><td> MCA1209A488 </td></tr><tr><td> 태아 소 혈청 </td><td> Hyclone </td><td> SH30070.03 </td></tr><tr><td> 토끼 혈청 </td><td> 잭슨 ImmunoResearch </td><td> 011-000-120011-000-120 </td></tr><tr><td> 마우스 혈청 </td><td> 잭슨 ImmunoResearch </td><td> 015-000-120 </td></tr><tr><td> 셀 스트레이너 </td><td> BD 팰컨 </td><td> 352340 </td></tr></tbody></table>

유동세포계측법에 의해 피해를 입은 척수 조직에서 면역 세포의 양적 평가 : 세포 정제 방법에 대한 소설을 사용

Quantitative Assessment of Immune Cells in the Injured Spinal Cord Tissue by Flow Cytometry:  a Novel Use for a Cell Purification Method

형태학의 또는 histological 기술을 사용하여 부상 중추 신경계의 면역 세포 (CNS)의 탐지는 항상 세포 염증의 진정한 정량 분석​​을 제공하지 않았습니다. 유동세포계측법는 부상 뇌 또는 척수 조직에서 면역 세포를 수치 빠른 대안 방법입니다. 역사적으로, 유동세포계측법은 혈액 또는 dissociated 비장 또는 thymus에서 수집한 면역 세포를 계량하는 데 사용되었으며, 단지 몇 연구 신선한 dissociated 코드 조직을 사용하여 유동세포계측법으로 부상 척수에서 면역 세포를 계량을 시도했습니다. 그러나, dissociated 척수 조직은 세포에 대한 오해와 흐름 cytometer에 의해 얻은 세포 개수의 안정성을 줄일 수있는 myelin 부스러기로 집중되어 있습니다. 우리는 유동세포계측법으로 부상 척수에 염증 세포의 민감하고 안정적​​인 quantifications을 제공 세포에서 효과적으로 별도의 지질 / myelin 파편에 OptiPrep 기울기 시스템을 사용하여 셀 준비 방법을 고급 있습니다. 마찬가지로 최근 연구에서 설명 (벡 &amp; 구엔 외, 뇌 2010 Feb; 133 (PT 2) :.. 433-47) OptiPrep 셀 준비의 건의와 함께 부상 척수의 세포 염증을 감지 감도를 증가했다 부상 심각와 연관 특정 세포 유형. 비판적,이 방법의 소설 사용량은 2 시간에서에 이르는 기간 동안 전체 시간 polymorphonuclear leukocytes을위한 코스 (PMNs, neutrophils), macrophages / microglia, 그리고 T - 세포를 포함하는 SCI 후 급성 및 만성 세포 염증의 첫 번째 특성을 제공 세포 염증의 놀라운 소설 두 번째 단계를 식별 1백80일 이후 부상 (DPI). 이 방법을 사용하여 세포 염증의 철저한 특성은 부상 CNS에 neuroinflammation의 더 나은 이해를 제공하고, 셀 기반 및 약리 모두 포함하여 합리적인 치료 치료 전략의 설계 및 구현을위한 중요한 수 있습니다 neuroinflammation의 중요한 multiphasic 구성 요소를 보여줄 수 있습니다 SCI에 대한 중재.

유동세포계측법로 부상 / 병적인 CNS에 염증 세포의 부량는 감도 / 정확도를 감소, 유사한 크기 및 과립 세포를 가질 수 지질 / myelin 파편에 의해 복잡합니다. 우리는 myelin 파편을 제거하고 피해를 입은 척수에 유동세포계측법에 의해 세포 검출을 향상시킬 수있는 세포 준비 방법을 고급 있습니다.

형태학적 또는 조직학적 기법을 사용하여 손상된 중추신경계(CNS) 내 면역 세포를 검출하는 방식이 항상 정확한 결과를 제공한 것은 아니었습니다...

이 실험 절차의 전체적인 목적은 OptiPrep 밀도 구배 시스템을 사용하여 지질 수초 및 잔해물을 제거함으로써, 손상된 척수 조직 내의 특정 면역 세포를 정량화하기 위한 유세포 분석의 민감도를 높이는 것입니다. 이를 위해 먼저 기계적 및 효소적 방법을 사용하여 척수 조직을 해리시킨 후, 네 가지 OptiPrep 밀도 구배 용액을 제조하여 신경세포, 글리아 세포, 백혈구 및 적혈구와 같은 세포로부터 지질 수초 잔해물을 분리합니다. 이렇게 손상된 척수 조직에서 분리된 세포들은 PMN 중성구, ED1 대식세포, 미세아교세포 및 CD3 T 세포와 같은 특정 면역 세포를 확인하기 위해 면역 표지됩니다.이렇게 면역 표지된 양성 세포들은 유세포 분석법을 통해 정량적으로 평가됩니다. 결과적으로, 지질 수초 잔해(lipid myelin debris)를 제거하면 유세포 분석을 이용한 손상된 척수 조직 내 세포 염증의 정량적 검출 능력이 향상됨을 보여줍니다. 기존의 세포 분리 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 수초 및 잔해를 세포로부터 효과적으로 분리 및 제거할 수 있어, 척수 내부 조직의 세포 염증에 대한 정량적 평가를 용이하게 한다는 점입니다.유세포 분석법을 이용합니다. 페트리 접시에 Hank's buffered saline solution 또는 HBSS를 넣어 척수 조직의 해리를 시작합니다. 그런 다음 미세 가위를 사용하여 손상되지 않은 대조군 또는 타박상으로 손상된 척수 조직의 T8에서 T10 척수 분절을 기계적으로 해리합니다. 여기서는 손상되지 않은 척수의 T9 해리 과정이 제시되어 있으나, 타박상으로 손상된 척수의 해리 또한 병행하여 수행할 수 있습니다.조직 조각들을 50 mL 튜브에 넣고 상온에서 2000 RPM으로 1분 동안 원심 분리합니다. 그 후, 5 mL의 DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium) 또는 DME에 trypsin과 collagenase 용액을 첨가하여 37 °C에서 20분 동안 척수 조직을 추가로 해리시킨 다음, 유리 파스퇴르 피펫으로 트라이튜레이션(trituration)합니다. 이어서 효소 활성을 억제하기 위해 10% fetal bovine serum이 함유된 DME 10 mL를 세포에 추가하고, 세포 용액을 40 µm 세포 스트레이너를 통해 50 mL 튜브로 여과합니다.상온에서 4,000 RPM으로 3분 동안 세포를 원심분리한 후 펠렛을 세척합니다. 다음으로, OptiPrep 밀도 구배 용액 위에 얹기 위해 세포 펠렛을 6 mL의 HBSS에 현탁합니다. OptiPrep을 MOPS 완충액으로 1:1 비율로 희석하여 희석된 OptiPrep 용액을 제조하고, 희석된 OptiPrep 350, 250, 200 또는 150 µL를 HBSS와 혼합하여 튜브당 최종 부피가 1 mL가 되도록 4가지 OptiPrep 밀도 구배 용액을 만듭니다.이제 천천히 주의하며, 15 mL 원추형 튜브에 네 가지 용액을 각각 1 mL씩 층을 이루어 넣는데, 밀도가 가장 낮은 용액이 바닥에 오고 밀도가 가장 높은 용액이 맨 위에 오도록 합니다. 그다음 HBSS에 부유된 6 mL의 해리된 척수 세포(비손상 대조군 및 타박상 손상 시료 모두)를 OptiPrep 밀도 구배 용액 위에 조심스럽게 층을 쌓아 올립니다. 이어서 세포와 구배 용액이 들어 있는 튜브를 1900 RPM, 20 °C에서 15분 동안 원심 분리합니다.이렇게 하면 세포 용액이 뚜렷한 층으로 분리되며, 튜브의 상위 7 mL에는 지질 수초 잔해(lipid myelin debris)가, 그 다음으로 세 층의 뉴런이, 그리고 펠릿(pellet) 부분에는 염증 세포, 글리아 및 적혈구가 위치하게 됩니다. 지질 수초 잔해 층을 구성하는 상위 7 mL를 조심스럽게 흡입하여 제거하십시오. 그다음, 남은 세포 용액을 7 mL의 HBSS가 들어 있는 새로운 15 mL 튜브로 옮겨 세척합니다. 원심분리를 통해 펠릿을 수집한 후, 손상되지 않은 대조군과 손상 후 1일 차 샘플 모두 면역 표지를 위해 펠릿을 2.5 mL의 HBSS에 재현탁하십시오.500 µL의 세포를 pm n neutrophils ED one macrophages microglia 및 CD three T cells로 각각 라벨링된 1.5 mL 튜브에 옮깁니다. 상온에서 5,000 RPM으로 2분간 원심분리하여 세포를 펠렛화합니다. 적혈구를 용해하기 위해 세포 펠렛을 500 µL의 0.85% ammonium chloride에 재현탁하여 5분 동안 처리합니다. 상온에서 5분간 배양한 후, 다시 5,000 RPM에서 2분간 원심분리합니다.그 다음 세포를 500 µL의 HBSS로 세척하고 원심분리합니다. 비특이적 항체 결합을 차단하기 위해 10% 정상 토끼 또는 마우스 혈청 100 µL로 30분 동안 블로킹한 후 세포를 세척합니다. 이어서 HBSS에 희석된 PMN 호중구, ED1 대식세포 및 미세아교세포, CD3 T 세포에 대한 형광 ZI 항체 또는 isotype 대조군 IgG와 함께 세포를 1시간 동안 배양합니다.그런 다음 세포를 두 번 더 세척하고 펠렛을 300 µL의 HBSS에 재부유하여 fax 튜브로 옮깁니다. 모든 세포 샘플에 대해 샘플당 5,000개 이벤트를 읽어 유세포 분석기로 세포를 분석합니다. 정규화를 위한 기준값을 설정하기 위해 컨트롤 IgG isotype 표지 세포 또는 손상되지 않은 대조군 동물의 척수 세포를 사용하여 유세포 분석 게이트를 설정합니다.예를 들어, 1.2% 세포 배경을 가진 비손상 대조군에 대해 게이트를 설정하고 척수 조직에서 6.1%의 PMN을 검출합니다. 부상 후 하루가 지나 지질 수초 파편을 제거하면, 본 그림에 나타난 바와 같이 부상 후 1일 또는 DPI의 손상된 척수에서 PMN 중성구 검출이 증가합니다. PMN 중성구는 부상 후 이르면 2시간부터 척수로 빠르게 진입하며, 부상 후 1일에 정점에 도달합니다. 여기서 ED 1 대식세포 미세아교세포 수는 부상 후 3일부터 손상된 척수에서 증가하기 시작하여 부상 후 7일에 급격히 정점에 도달하고, 부상 후 14일에 낮은 수준으로 떨어졌다가, 부상 후 60일에 놀라운 두 번째 정점을 찍으며 다시 상승한 후, 부상 후 최대 180일까지 손상된 척수에 남아 있는 것을 확인할 수 있습니다.이 그림에서는 척수 손상 후 세포 염증의 시간 의존적 다상 반응(multiphasic response)을 보여줍니다. 세포 염증의 초기 단계는 손상 후 1일째의 PMN 호중구 조기 정점으로 시작하여, 손상 후 7일째의 ED 1 대식세포 및 미세아교세포 정점, 그리고 손상 후 9일째의 CD 3 T 세포 정점으로 이어집니다. 후기 단계는 세 가지 세포 집단 모두로 구성되며, 이들은 손상 후 14일 이후에 수가 증가하여 손상 후 180일까지 지속되며, 특히 손상 후 60일째에 대식세포와 미세아교세포의 두 번째 정점이 뚜렷하게 나타납니다.이 방법은 신경 염증 연구에 유용할 수 있으며, 외상성 뇌 및 척수 손상뿐만 아니라 중추 신경계의 다른 병리적 상태에서 특정 면역 세포를 조사하는 것을 촉진할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

현재 문서는 효율적으로 효과적으로 흐름 cytometric 분석을 위해 활용할 수 뇌 및 척수 조직에서 mononuclear 세포를 분리하기 위해 빠른 프로토콜을 설명합니다.

Percoll 그라디언트를 사용하여 두뇌와 척수 Mononuclear 세포의 분리

출처: Hidmark, A. S., et al. 유세포 분석을 이용한 단일 마우스 좌골 신경 및 배근 신경절의 면역 세포 분석. J. Vis. 특급{{TAG_ 27}} (2017).  이 비디오는 마우스 좌골 신경과 등쪽 뿌리 신경절(DRG)의 면역 세포를 분석하기 위해 유세포 분석을 사용하는 방법을 보여줍니다. 이 프로세스에는 형광단 및 비오틴 태그가 지정된 항체로 면역 세포를 라벨링하고, 세포를 안정화 및 투과화하고, 형광 마커를 사용하여 세포 표면 및 핵 특성을 감지하는 작업이 포함됩니다. 이 기술을 사용하면 신경 조직에서 면역 세포의 이질성을 정량적으로 평가할 수 있습니다.

유세포 분석을 사용한 마우스 신경 조직의 면역 세포 분석

염증은 허혈성 뇌졸중의 발병기전에서 중심적인 역할을 합니다. 점점 더 많은 증거에 따르면 그것은 초기 뇌 손상을 악화시키는 양날의 검으로 작용하지만 나중에 회복하는 데에도 기여합니다. 이 프로토콜은 허혈성 뇌에서 면역 세포를 분리하고 그에 따른 유세포 분석 표현형을 설명합니다.

허혈성 마우스 뇌에서 면역 세포의 분리 및 유세포 분석

이 원고는 다양한 질병 단계에서 각각 유세포 분석 및 정량적 PCR을 사용하여 림프절, 비장, 혈액 및 척수의 면역 세포 분포 및 mRNA 사이토카인 수치를 평가하는 방법과 함께 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE) 모델의 유도 및 채점 방법을 설명합니다.

다양한 조직에서 면역 세포의 질병에 의존하는 유통의 마우스 및 평가에 실험자가 면역 뇌척수염의 유도

정량 분석 murine 좌 골 신경 내에서 셀 내용의 조직의 부족으로 인해 어렵습니다. 이 프로토콜 조직 소화와 개별 쥐의 신경에서 면역 세포 인구의 흐름 cytometry 분석에 대 한 충분 한 세포를 제공 하는 준비 하는 방법을 설명 합니다.

단일 좌 골 신경 및 Cytometry 사용 하 여 단일 마우스에서 지 루트 신경 절에 면역 세포의 분석

여기, 선물이 murine thymus, 림프절, 비장 추가 연구를 cytometry를 사용 하 여 이러한 셀을 배출 췌 장에서 단일 셀을 준비 하는 프로토콜. 또한,이 프로토콜 cytometry 사용 규제 T 세포의 하위 집합을 결정 하는 데 사용 되었다.

Murine Thymus, 림프절, 비장 Cytometry 사용 하 여 배출 췌 장 하위 집합 규제 T 세포의 결정

우리는 마우스 두뇌 또는 척수에서 검색된 동시에 다른 세포 모형을 확인하기 위하여 교류 세포측정 방법을 제시합니다. 이 방법은 신경 퇴행성 질환에서 순수 한 세포 집단을 분리하거나 특성화하거나 바이러스 벡터 또는 나노 입자의 생체 내 투여 시 세포 표적화의 정도를 정량화하기 위해 악용 될 수 있습니다.

다른 균질화 방법을 통해 마우스 뇌 / 척수에서 검색 된 여러 세포 유형의 동시 유량 세포 측정 특성 분석

이 원고는 마우스에서 활성 실험자가 면역 뇌척수염(EAE)을 유도하는 프로토콜을 제시한다. 중추신경계(CNS)에서 침투된 림프구의 분리 및 특성화 방법도 림프구가 CNS 자가면역 질환의 발병에 어떻게 관여하는지 보여주기 위해 제시된다.

실험적인 자가면역 뇌척수염 중 중추신경계에서 림프구 침투의 흐름 세포 분석

절개된 임플란트에서 세포를 분리하고 유세포 분석을 통한 세포 특성 분석은 임플란트에 대한 면역 반응 패턴을 이해하는 데 크게 기여할 수 있습니다. 이 논문은 절개된 임플란트에서 세포를 분리하고 유세포 분석을 위한 염색을 위한 정확한 방법을 설명합니다.

절개된 임플란트 조직의 면역 기능 분석을 위한 고차원 유세포 분석

미세아교세포는 신체에서 가장 다재다능한 세포 중 하나로 간주되며, 형태학적, 기능적 적응이 가능합니다. 이들의 이질성과 다기능성은 뇌의 항상성을 유지하는 동시에 다양한 신경학적 병리와 관련이 있습니다. 여기에서는 척수 미세아교세포를 정제하는 기술에 대해 설명한다.

마우스 척수 미세아교세포(Mouse Spinal Cord Microglia)의 빠르고 효율적인 농축

손상된 척수에서 미세아교세포(MG)와 말초 침투 대식세포(Mø)를 식별하는 것은 어렵습니다. 이 프로토콜에서는 유세포 분석법(FCM)을 사용하여 각각 M1-like MG, M2-like MG, M1-like Mø 및 M2-like Mø를 식별했습니다. 이 기술은 MG와 Mø의 역할을 이해하기 위해 다른 중추 신경계 질환에도 적용될 수 있습니다.

유세포분석을 사용하여 손상된 척수에서 미세아교세포(microglia) 및 말초 침투 대식세포(peripheral infiltrating macrophages in the injured spinal cords) 확인

학습하세요 유동세포계측법을 이용한 척수 손상 조직의 면역 세포 정량 분석 방법입니다. 지질 미엘린 잔해를 제거하여 염증 반응을 정확히 평가하고 신경면역학 연구에 활용할 수 있습니다.

유동세포계측법에 의해 피해를 입은 척수 조직에서 면역 세포의 양적 평가 : 세포 정제 방법에 대한 소설을 사용

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