Name: 인슐린 주입 및 성인에서 인슐린 민감도를 측정하는 Hemolymph 추출 Drosophila melanogaster /em (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 52 s
Description: 학습하세요 Drosophila melanogaster 성충에서 인슐린 주입 및 혈림프 추출 방법을 통해 포도당 대사를 측정하는 기술을. 이 생리학적 분석법은 대사 질환 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 NIA에서 YW.CF (AG21068, AG31086)에 보조금 지원했다.

1. 인슐린 솔루션 준비 <ol><li> 0.01 MG / ML의 농도를 달성하기 위해 PBS에 인슐린을 용해하여 새로운 소 인슐린 솔루션을 준비합니다. 인슐린 / PBS 및 제어 PBS 솔루션 모두 사출 절차를 통해 얼음에 보관해야합니다. 이러한 솔루션은 0.5 % (V / V) FD &amp; C 블루 번호와 함께 준비한다. 1 식용 색소. </li></ol> 2. 니들 준비 및 설정 사출 <ol><li> ; 당겨, 210, 속도, 100, 시간, 200 (100ms) 열, 345 : 풀러 설정이 주사에 대한 충분한 품질의 바늘을 생산 따라 micropipette puller.The를 사용하여 모세관 유리 바늘을 준비합니다. 갓 뽑아 바늘은 Kimwipe 조직을 통해 팁을 눌러 무딘해야합니다. 이 둔화 과정은 길쭉한 높은 저항 팁을 제거하고 큰 기공 직경 stouter 팁을 생산하고 있습니다. </li><li> 팁 - 최대 인슐린 / 혼자 PBS 용액 또는 PBS를 포함하는 microcentrifuge 관에 무딘 바늘을 놓으십시오. 각 바늘의 백업 작성의 작업 결과를 모세. 더 파편이나 공기 방울이 끝에 표시되지 않도록 stereomicroscope 아래 바늘의 팁을 관찰. 정상적으로 입력되지 않은 바늘 폐기하십시오. </li><li> 바늘 끝이 stereomicroscope를 통해 볼 수 있도록 micromanipulator로 수동 microinjector 니들 홀더 및 위치 바늘 홀더에 가득 바​​늘을 삽입합니다. microinjector의 주사기에 플런저에 연결된 수동 microinjector 마이크로 미터 손잡이를 돌려하여 바늘의 유체 열을 긍정적인 압력을 적용합니다. </li><li> 유체 변위 위해 충분한 압력을 확인은 바늘 끝에 Kimwipe를 감동 유체 흐름을 확인하여 적용되었습니다. </li><li> 일단 바늘이 부착 분명 테이프와 바늘 샤프트로, 분사에 대한 보정 차트 준비하고, 20X 배율 아래 stereomicroscope을 통해 초점에 바늘 끝을 가지고있다. </li></ol> 3. 준비 플라이 <ol><li> 텐 일 된 암컷 파리는 분사 실험에 사용됩니다. eclosion 24 H 내에 파리를 수집합니다. 남성 여성과 장소 파리가 밖으로 표준 또는 치료 식단을 포함 유리병에 가스 패드에 humidified CO 2, 정렬과 함께 파리를 마취. 10 일간 실험 다이어트에 대한 여성의 파리를 유지합니다. </li><li> 실험 다이어트에 eclosion 분리 다음 열째 날, 송금은 2 % 한천의 5 ML 플러그인을 포함하는 튜브 자신의 음식을 함유 튜브에서 파리와 12-16 H. 그들을 굶어 </li><li> 인슐린 주입하기 전에 1 시간 10 % 포도당 젖었 필터를 포함하는 튜브에 굶주려 파리를 전송합니다. </li><li> 간단히 포도당 수유 후 humidified CO 2와 함께 파리를 마취 후 차가운 얼음에 그들을 고정. </li></ol> 4. 사출 절차 <ol><li> 부드럽게 잘 포셉 한 쌍의와 추위에 고정 비행을 파악하고 끝은 파리의 흉부의 왼쪽의 앞쪽에 지역에 인접한 있도록 그것은 바늘 끝 가까이에 잡아. stereomicroscope 아래의 초점에 바늘 끝과 파리의 흉부를 모두 가져와. </li><li> 바늘 끝이 파리의 흉부 (그림 1)의 왼쪽 prescutum 지역의 융기의 중심을 접촉 있도록 부드럽게 바늘 끝쪽으로 날아 이동합니다. 파리가 올바르게 지향하고 바늘 끝에 부합되면, 바늘은 prescutum의 중심을 impales 있도록 바늘에 비행을 사전에 계속. </li><li> 유체의 0.1 μl가 비행에 주입되어 때까지 microinjector의 micromanipulator 손잡이와 주사기의 플런저를 발전하여 필요에 따라 긍정적인 압력을 적용합니다. 파리의 hemocoel로 유체의 흐름은 앞쪽에 흉부의 왼쪽에 파란색을 가르친다합니다. 때때로 하나는 취소 및 바늘 팁 차단을 이동시키다 및 유체 흐름 수 있도록 여러 번 사전해야합니다. </li><li> 주입 파리 hemolymph 추출하기 전에 지정된 시간이 지점에 대한 2 % 한천 튜브 안에 복구하도록 허용합니다. </li></ol> 5. Hemolymph 컬렉션 <ol><li> 간단히 원하는 사후 분사 시간 지점과 위치에 humidified CO 2와 함께 파리를 마취 등의 사이드 다운 CO 2 패드의 표면에 부착된 양면 테이프의 각 비행. 정렬 헤드 캡슐도 행으로 파리를 마련. 하나는 테이프 접착제로 자신의 날개를 눌러 고정을 위해 손질 나무 작은 주걱 스틱을 사용할 수 있습니다. </li><li> 일단 파리가 테이프로 고정 좋은 포셉 각 비행의 코을 파악하고 머리 캡슐의 앞에는 스테레오 현미경을 통해 볼 수 있도록 부드럽게 비행의 후부 다음 복부 및 지역으로 그것을 끌어 수 있습니다. </li><li> 다른 손과 위치에 코를​​ 들고 있지만, 펑크 단지 ptilinal 봉합 위의 헤드 캡슐의 중심은 날카로운 텅스텐 바늘 (그림 2)를 사용. 그것이 머리를 캡슐 반대편을 통해 바늘의 팁을 펀치와 이후 C를 잃고 쉽게로서 하나는 너무 멀리 바늘을 삽입하지 않도록주의해야합니다hemolymph 흐름 ontrol. 찔린 모든 hemolymph를 수집하기 전에 사출 그룹에 날아갑니다. </li><li> 머리 캡슐가 구멍되면 부드럽게 파리의 복부에 압력을 적용하는 손질 나무 작은 주걱 스틱을 사용합니다. 그것은 당신이 압력을 적용으로는 복부 측면에 붙어 있도록 동안 파리를 롤 도움이 될 수 있습니다. 이 절차는 머리 캡슐 찔린 사이트에서 hemolymph의 비말을 생산합니다. </li><li> 머리 캡슐 찔린 사이트에서 신흥 hemolymph 비말에 1μl microcapillary 튜브의 한쪽 끝을 터치. hemolymph는 모세관을 통해 튜브를 입력합니다. 졸업 볼륨 차트에 대한 microcapillary 튜브 내의 유체 열을 선택하여 수집한 hemolymph의 양을 확인하고 기록합니다. </li></ol> 6. Hemolymph 포도당 결정 <ol><li> microplate 우물은 무한 포도당 시약 100 μl를 포함하는으로 hemolymph 샘플을 추출. hemolymph 샘플을로드하는 동안 얼음 접시 보관하십시오. </li><li> 50mM, 25mM, 12.5mM, 6.25mM과 3.125mM에서 별도로 1 μl 포도당 주식 솔루션의 각로드하여 표준 곡선을 설정합니다. </li><li> 37 샘플을 품어 ° C를 10 분. </li><li> 340 nm의 흡광도에서 감지. </li><li> hemolymph 볼륨에 대한 계정을 수집하여 알​​려진 포도당 농도와 표준 곡선에 따라 샘플 포도당 농도를 결정한다. </li></ol> 7. 대표 결과 전형적인 인슐린 내성 반응은 포도당 수준을 순환의 드롭 15 분 후 주사를 감지 인슐린 주입 파리에서 감지됩니다. 대조적으로, 이러한 반응은 PBS 주입 파리 (그림 3)을 볼 수 없습니다. 주변 포도당 처리에서이 반응은 인슐린 주입에 계속 삼십분 이후 주사까지 날아. 우리는 정기적으로 각 사출 그룹에 4-5 파리 당 hemolymph의 0.2-0.5 μl 압축을 풉니다. 세 사출 그룹은 각 실험에 포함되어 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/2722/2722fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 주사 바늘을 ​​삽입 사이트 (Demerec 1950에서 수정) 7를 보여주 Drosophila의 흉부의 왼쪽 측면. 흉부의 왼쪽의 앞쪽에, 등의 지역에 prescutum의 중심을 통해 바늘을 삽입합니다. <img src="/files/ftp_upload/2722/2722fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. hemolymph 추출 (Demerec 1950에서 수정) 7 바늘 위치를 보여주는 Drosophila 머리의 전두엽 볼 수 있습니다. 찔린 단지 ptilinal 봉합 위의 헤드 캡슐의 중심에 가늘게 날카롭게 텅스텐 탐침과 함께 머리를 캡슐. <img src="/files/ftp_upload/2722/2722fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 컨트롤 성인에서 검색된 전형적인 인슐린 내성 응답이 빠르다. 컨트롤 w 1118 파리는 소 인슐린 (PBS 1 NG) 또는 PBS에만 주입했다. 복제 그룹에 날아 그 다음 0, 15 또는 30 분 순환 포도당 수준 복구할 수 있었다 것은 측정했다.

<ol><li>Rulifson, E. J., Kim, S. K., Nusse, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ablation+of+insulin-producing+neurons+in+flies%3A+growth+and+diabetic+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Ablation of insulin-producing neurons in flies: growth and diabetic phenotypes.</a> Science. 296, 1118-1118 (2002).</li>
<li>Kim, S. K., Rulifson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conserved+mechanisms+of+glucose+sensing+and+regulation+by+Drosophila+corpora+cardiaca+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Conserved mechanisms of glucose sensing and regulation by Drosophila corpora cardiaca cells.</a> Nature. 431, 316-316 (2004).</li>
<li>Broughton, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Longer+lifespan%2C+altered+metabolism%2C+and+stress+resistance+in+Drosophila+from+ablation+of+cells+making+insulin-like+ligands%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Longer lifespan, altered metabolism, and stress resistance in Drosophila from ablation of cells making insulin-like ligands.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 102, 3105-3105 (2005).</li>
<li>Haselton, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+ablation+of+adult+Drosophila+insulin-producing+neurons+modulates+glucose+homeostasis+and+extends+life+span+without+insulin+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Partial ablation of adult Drosophila insulin-producing neurons modulates glucose homeostasis and extends life span without insulin resistance.</a> Cell Cycle. 9, 3063-3063 (2010).</li>
<li>Haselton, A. T., Fridell, Y. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+Drosophila+melanogaster+as+a+model+for+the+study+of+glucose+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+%28Albany+NY%29%22%5BJournal%5D)">Adult Drosophila melanogaster as a model for the study of glucose homeostasis.</a> Aging (Albany NY). 2, 523-523 (2010).</li>
<li>Belgacem, Y. H., Martin, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+insulin+pathways+alters+trehalose+level+and+abolishes+sexual+dimorphism+in+locomotor+activity+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Disruption of insulin pathways alters trehalose level and abolishes sexual dimorphism in locomotor activity in Drosophila.</a> J Neurobiol. 66, 19-19 (2006).</li>
<li>Demerec, M. Biology of Drosophila. , John Wiley & Sons. New York. (1950).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

이 보고서에 설명된 기술은 Drosophila의 hemolymph 구성에 감지 변경의 결과로 생리 과정을 조사하는 연구에서 잠재적으로 유용합니다. 이러한 방식으로 주입하고 hemolymph 컬렉션을 결합함으로써, 특정 실험 치료 또는 조작의 즉각적인 생리학 관련 효과를 확인할 수 있습니다. 잘린 2와 관련된 이전의 기술을 통해 hemolymph 수집이 &quot;방혈&quot;기술의 주요 장점은 직감 contents.If 치료가 때로는에 나타날 수있는 pericerebral 지방 신체 조직을 수집하지 않도록합니다이 기술은 hemolymph 샘플의 오염을 최소화있다 hemolymph 비말을 exuded 다음 샘플 정확하게 생체내 순환 유체의 상태를 반영해야합니다. 이 규모에서 수행하는 주입 실험에 내재된 잠재적으로 혼란함을 주죠 요인은 다음과 같은 사출 총 순환 유체의 초기 희석입니다. 이것은 쉽게 나이와 일치...

<table border="1"><tbody><tr><th> 시약 / 장비 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th></tr><tr><td> 보빈 인슐린 </td><td> 시그마 </td><td> I5500 </td></tr><tr><td> 인피니티 포도당 시약 </td><td> 써모 일렉트론 주식 회사 </td><td> TR1541 </td></tr><tr><td> 수동 microinjector </td><td> 서터 악기 </td><td></td></tr><tr><td> P - 87 Flamming / 브라운 micropipette 풀러 </td><td> 서터 악기 </td><td></td></tr><tr><td> 싱글 배럴 borosilicate 유리 모세관 </td><td> AM 시스템 </td><td> 626000 </td></tr><tr><td> FD &amp; C 블루 제 1 </td><td> 매코믹 &amp; 컴퍼니 </td><td></td></tr><tr><td> 1 μl microcapillary 튜브 </td><td> 드루먼드 </td><td></td></tr><tr><td> 쓰리 축 수동 micromanipulator 및 기지 </td><td> 세계 정밀 계측기 </td><td></td></tr></tbody></table>

인슐린 주입 및 성인에서 인슐린 민감도를 측정하는 hemolymph 추출 drosophila melanogaster</em

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

보존 영양 감지 메커니즘은 펩티드가 발달 애벌레 단계 1,2 중에 포도당 항상성을 유지하기 위해 각각 포유류의 인슐린과 글루카곤, 기능과 유사한 포유류와 과일 날아 사이에 존재합니다. 대부분 사후 mitotic 성인 파리에서 연구가 세포 (IPCs) 3를 생산 인슐린과 같은 펩티드 (ILP)의 유전자 절제의 결과로 포도당 항상성의 섭동을 공개했습니다. 따라서 성인 과일 파리 2 형 당뇨병을 포함하여 신진 대사 장애에 적합한 유전자 모델 시스템으로 큰 약속을 잡아. 추가로 과일 파리 시스템을 개발하려면, 포유류에서 포도당 내성과 인슐린 민감도를 측정하는 데 사용되는 비교 생리학 assays 설립해야합니다. 이를 위해, 우리는 최근 성인 비행에 경구 포도당 내성 응답을 측정하는 소설 절차를 설명하고 포도당 항상성은 4,5 유지 성인 IPCs의 중요성을 보여주었다. 여기, 우리는 인슐린 주사 6 이전에 설명한 절차를 수정하고 성인 비행의 말초 인슐린 민감도를 측정하는 소설 hemolymph 추출 방식으로 결합합니다. 유니 클리 우리 프로토콜은 인슐린 주사, 인슐린 신호 돌연변이 성인 비행에서 포도당 내성과 인슐린 민감도에 영향을 미치는 잠재적인 개입을 특징으로이 가능하게 방법론에 주변 포도당 부하를 처리하는 성인 비행 능력의 직접적인 생리적 측정이 가능합니다.

보존 인슐린 신호 전달은 과일 파리에서 찾은 경로<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;이 유기체 유형 II 당뇨병을 포함하여 신진 대사 장애를 모델링에 대한 잠재적인 도구를합니다. 이를 위해서는 효과적으로 성인 비행에서 주변 포도당 처리에 체계적 인슐린 작용을 측정하는 생리 assays를 확립하는 것이 중요합니다.

인슐린 주입 및 성인에서 인슐린 민감도를 측정하는 Hemolymph 추출 Drosophila melanogaster</em

포유류와 초파리 사이에는 보존된 영양소 감지 기전이 존재하며, 여기서 각각 포유류의 인슐린과 글루카곤을 닮은 펩타이드들이 기능을 수행하며...

이 실험 절차의 전체적인 목적은 성체 drosophila melanogaster의 혈림프 내 glucose 수치에 인슐린 주입이 미치는 영향을 측정하는 것입니다. 이는 먼저 굶긴 초파리에게 농축된 glucose 용액을 섭취하게 함으로써 수행됩니다. 절차의 두 번째 단계는 glucose가 공급된 초파리에게 인슐린을 주입하는 것입니다.절차의 세 번째 단계는 오염되지 않은 혈림프 샘플을 채취하는 것입니다. 절차의 마지막 단계는 혈림프 포도당 농도를 측정하는 것입니다. 최종적으로, 분광법을 통해 외인성 인슐린이 Esof la Melan gaster의 포도당 제거를 촉진한다는 결과를 얻을 수 있습니다.성체 초두 절단을 통한 출혈과 같은 기존 방법과 비교하여 이 기술의 주요 장점은 이 절차가 장 내용물을 최소화한다는 점입니다. 혈림프 샘플의 오염을 방지하십시오. 가습된 이산화탄소를 사용하여 마취시킨 후, 폐쇄 후 24시간 이내에 파리를 수집하십시오. 암컷 파리를 분류하여 표준 먹이가 들어 있는 바이알에 넣으십시오.파리를 10일 동안 노화시킵니다. 10일 후, 파리를 2% 아가로스 5 mL 플러그가 들어 있는 바이알로 옮겨 12~16시간 동안 굶깁니다. 인슐린 주사 전 한 시간 동안, 굶긴 파리를 10% glucose에 적신 거름종이가 들어 있는 바이알로 옮깁니다. 주사용 인슐린 용액을 만들기 위해, 소 인슐린(bovine insulin)을 인산염 완충 식염수(PBS)에 녹여 최종 농도가 0.01 mg/mL가 되도록 조제합니다.또한 PBS만 포함된 대조군 용액을 준비하십시오. 인슐린 용액과 대조군 용액 모두에 청색 식용 색소를 최종 농도 0.5%가 되도록 첨가하고, 전체 과정 동안 두 용액을 모두 얼음 위에 보관하십시오. 킴와이프(Kim wipe)에 눌러 갓 뽑아낸 유리 바늘의 끝을 뭉툭하게 만드십시오.더 넓은 구경의 튼튼한 팁을 만들기 위해, 뭉툭하게 만든 바늘을 인슐린 또는 대조군 용액이 들어 있는 마이크로 원심분리 튜브에 팁이 위를 향하도록 넣고 모세관 현상에 의해 바늘 내부가 채워지도록 합니다. 실체 현미경으로 각 바늘에 기포가 있는지 확인하고, 깨끗하게 채워지지 않은 바늘은 폐기합니다. 채워진 바늘을 수동 마이크로 인젝터 바늘 홀더에 삽입하고, 실체 현미경을 통해 바늘 팁이 보이도록 마이크로 조작기로 홀더의 위치를 잡습니다.마이크로 인젝터 시린지의 플런저에 부착된 마이크로미터 노브를 돌려 바늘 내 유체 기둥에 양압을 가합니다. 킴와이프(chem wipe)를 바늘 끝에 접촉시켜 유체 흐름에 충분한 압력이 가해졌는지 확인합니다. 바늘의 주입 준비가 완료되면 투명 테이프로 바늘 축에 교정 차트를 고정하고, 실체 현미경의 20배 배율에서 바늘 끝의 초점을 맞춥니다.가습된 이산화탄소로 포도당을 공급한 초파리를 짧게 마취시킨 후, 실체 현미경 아래에서 마취 상태를 유지하기 위해 얼음 위의 패드 위에 놓습니다. 미세 핀셋으로 초파리 한 마리를 집어 바늘 끝이 초파리 왼쪽 앞부분에 인접하도록 바늘 가까이 잡습니다. 바늘 끝과 초파리의 흉부가 모두 초점에 들어오도록 조정합니다.초파리를 바늘 끝 쪽으로 조심스럽게 이동시켜, 바늘 끝이 초파리 왼쪽 전흉부(presum) 돌출부의 중심에 닿게 합니다. 흉부를 기준으로 초파리를 바늘 쪽으로 계속 밀어 넣어 바늘이 전흉부 중심을 관통하게 합니다. 마이크로 인젝터의 마이크로 매니퓰레이터 노브를 사용하여 시린지 플런저를 전진시켜 0.1까지 양압을 가합니다.인슐린 용액 또는 대조군 용액 수 마이크로리터를 초파리에 주입했습니다. 주입 시 앞가슴 왼쪽 부분에 푸른색이 나타나게 됩니다. 주입된 초파리를 2% Aros 파일에서 복제 그룹별로 0분, 15분, 30분 동안 회복시킨 후 혈림프를 추출하십시오. 시간을 기록하기 위해 이산화탄소 패드에 양면테이프 조각을 붙이십시오.대조군 파리들을 마취시킨 후, 머리 캡슐이 정렬되도록 등 쪽이 아래로 향하게 하여 테이프 위에 일정한 열로 배치합니다. 파리들이 테이프에 고정되면, 미세 핀셋으로 파리의 proboscis를 잡고 복측 및 후측 방향으로 부드럽게 당겨 머리 캡슐의 전면이 보이게 합니다. proboscis를 그 위치에 유지한 상태에서, 날카로운 텅스텐 바늘을 사용하여 lenal suture 상단의 머리 캡슐을 천자하되, 머리를 완전히 관통하지 않도록 주의합니다.모든 파리의 천공이 완료되면, 다듬어진 나무 applicator stick을 사용하여 파리의 복부에 가볍게 압력을 가합니다. 이렇게 하면 머리 캡슐 천공 부위에 소량의 혈림프 방울이 형성됩니다. 1 µL 마이크로 모세관의 끝부분을 혈림프 방울에 접촉시킵니다.분광광도계를 사용하여 눈금 부피 차트와 마이크로 모세관 튜브 내의 액체 기둥을 대조하여 수집된 혈림프의 양을 측정하고 기록하십시오. 340 nanometers에서의 흡광도를 검출하여 포도당 농도를 결정하며, 소 인슐린 용액을 주입한 초파리는 대조군 용액을 주입한 초파리에 비해 주입 후 15분 및 30분 시점에서 혈림프 포도당 수치가 감소한 것을 보여주었습니다. 이 영상을 시청하고 나면 성체 초파리에 소량의 용액을 주입하는 방법, 성체 초파리에서 혈림프를 추출하는 방법, 그리고 이 절차에 따라 성체 초파리의 혈림프 포도당 농도를 결정하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.인슐린이 성체 초파리의 영양소 대사와 관련된 측면에 어떤 영향을 미치는가와 같은 질문에 답하기 위해 단백질 농도 결정 및 혈림프 트리글리세라이드 농도 결정과 같은 다른 실험들을 수행할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

Drosophila의 hemocytes은 개발 배아의 전체를 통해 분산. 이 프로토콜은 찬란 표시된 hemocytes와 배아를 사용하여 이러한 마이 그 레이션을 마운트 및 이미지하는 방법을 보여줍니다.

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이 비디오는 살아있는 성충 파리를 주입하는 방법을 설명하며, 표식작용 분석을 위해 표지된 입자와 트리판 블루를 파리 복부에 주입하는 프로토콜의 예시를 포함하고 있습니다.

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이 논문은 미량의 특정 방사성 표지 대사 기질을 파리에게 공급하는 Drosophila melanogaster의 연료 산화 측정 방법을 설명합니다. 연료 산화로 인해 생성된 호기된 방사성 표지된 CO2 가 수집되고 측정됩니다.

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모세관 공급 분석은 식품 섭취를 측정<em&gt; 노랑 초파리</em

이 메서드는 3 차원 (3D) 모델 곤충 세포로 병원 체 침입을 시각화 하는 방법을 보여 줍니다. 초파리 애벌레에서 hemocytes 바이러스 성 또는 세균성 병원 체, ex vivo 또는 vivo에서감염 되었습니다. 감염 된 hemocytes 다음 고정 되었고 confocal 현미경 및 후속 3D 셀룰러 재건 이미징 스테인드.

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