Name: Mouse Model of Middle Zerebralarterie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: Erfahren Sie das intraluminale Filament-Modell der Arteria cerebri media Okklusion bei Mäusen zur Simulation fokaler zerebraler Ischämie. Diese Methode ermöglicht die reproduzierbare Induktion ischämischen Schlaganfalls ohne Kraniotomie.

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Diese Arbeit wurde vom NIH NS057195, UCSF REAC Auszeichnung, und Kent State University Anschubfonds zu WH Chou unterstützt.

1. MCAO Methode Dieses Protokoll wurde von der Institutional Animal Care und Verwenden Ausschüsse an der UCSF und Kent State University und hält sich an die National Institutes of Health Richtlinien für die Verwendung von Versuchstieren verabschiedet. <ol></ol><ol><li> Schneiden Sie eine 5-0 Naht (Harvard Apparatus, Holliston, MA) in 20 mm-Segmente. Rund um die Spitze jedes Segment durch Erhitzen in der Nähe eines cauterizer (Braintree Scientific, Inc., Boston, MA). Messen Sie den Durchmesser der Spitze mit einem Mikrometer (Applied Image Inc., Rochester, NY). Wir verwenden eine Naht mit einem letzten Tipp Durchmesser von 0,21-0,22 mm für eine Maus mit einem Körpergewicht von 25-30 g. </li><li> Sterilisieren alle chirurgischen Instrumente durch Autoklavieren (mindestens 121 ° C, 15 PSI, für 15 min). Sanitize dem OP-Tisch und zugehörige Ausrüstung mit 70% Ethanol. </li><li> Anesthetize ein 8-12 Wochen alten Maus (25-30 g) mit 5% Isofluran (Aerrane, Baxter, Deerfield, IL) in 30% O 2 / 70% N 2 O mit dem V-10 Anästhesie-System (VetEquip, Inc ., Pleasanton, CA). Nach Einleitung der Narkose, reduzieren Sie die Ebene von Isofluran und halten sie auf 1,5%. </li><li> Platzieren Sie die Maus in Rückenlage auf einem Heizkissen. Legen Sie eine rektale Sonde und überwachen und pflegen Körpertemperatur zwischen 36,5-37,5 ° C mit dem TR-200 homeothermic Temperatur-System (Fine Science Tools Inc., Foster City, CA). </li><li> Shave das Fell auf der Bauchseite Halsbereich mit elektrischen Haarschneider (Braintree Scientific) auf die Haut setzen. Desinfizieren Sie die Operationsstelle mit drei Anwendungen von 70% Ethanol. </li><li> Unter einem Stereo-Binokular (Nikon, Japan), eine 1 cm lange Inzision in der Mittellinie auf den Hals. Verwenden Sie Retraktoren (Braintree Scientific) auf das Operationsfeld freizulegen und Identifizierung der richtigen A. carotis communis (CCA), A. carotis externa (ECA) und A. carotis interna (ICA). Sorgfältig sezieren die Arterien frei von umliegenden Nerven und Bindegewebe. </li><li> Präparieren Sie die ECA weiter distal und koagulieren die ECA und ihre Arteria thyreoidea superior (STA) Zweig mit einer bipolaren Koagulator (Howard Instrument Inc., Tuscaloosa, AL). Schneiden Sie die ECA und STA am koagulierten Segment. </li><li> Lose Binden Sie zwei 8-0 Seidenfäden um die ECA Stumpf. Tragen Sie einen Gefäßklemme (Fine Science Tools) an der Bifurkation der CCA in die ECA und ICA. </li><li> Machen Sie einen kleinen Schnitt am Ende der ECA Stumpf mit Vannas Stil Frühling Schere (Fine Science Tools). Messen und notieren Sie die Länge einer 5-0 Naht an der Spitze abgerundet. Legen Sie die Naht in der Einschnitt, und führen Sie die Klemme. Ziehen Sie die beiden Seidennähte um das Lumen gerade genug, um sichere und dennoch bewahren Mobilität der in-Wohnung monofilen Naht. </li><li> Entfernen Sie die Klammer von der Bifurkation. Gently Voraus das Monofil Faden aus dem Lumen des ECA in die ICA für eine Entfernung von 9-10 mm über der Bifurkation der CCA, den Ursprung der MCA verschließen. Die Dauer der Operation beträgt ca. 30-45 min. </li><li> Suture der Schnitt am Hals und die Maus in einem 35 ° C Pflege Feld aus der Narkose zu erholen, und sendet es an den Käfig. Es dauert in der Regel 5-10 min für die Mäuse von der Narkose erholen. Um transiente MCAO, kann der Forscher wieder betäuben der Maus und ziehen Sie den Faden wieder in den Stumpf des ECA nach einer Zeit, in der Regel zwischen 0,5 bis 2 h. </li><li> Vierundzwanzig Stunden nach der Induktion von MCAO, betäuben die Maus mit 5% Isofluran und euthanize es durch Genickbruch. Köpfen der Maus und sammle das Gehirn. Scheiben des Gehirns koronal in vier 2-mm-Scheiben mit einem Gehirn-Matrix (Braintree Scientific) auf Eis. Inkubieren Sie die Hirnschnitten in 2% 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) (Sigma-Aldrich) in 1X PBS für 20 min bei Raumtemperatur, um die Größe und das Ausmaß des Infarkts zu bestimmen. Befestigen Sie den Hirnschnitten in 10% neutral gepuffertem Formalin-Lösung (Sigma-Aldrich) bei 4 ° C bis Bildgebung. Das Ausmaß des Infarktes kann quantifiziert werden, da in JoVE Protokoll 955 (beschrieben werden <a href="https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955">https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955</a> ) 9. </li></ol> 2. Repräsentative Ergebnisse <ol></ol> Die Infarkte durch MCAO erzeugt werden in das Striatum und der dorsolateralen Kortex gesehen. Das Striatum ist empfindlicher gegenüber Ischämie als die Großhirnrinde. Dreißig Minuten MCAO produzieren einen Infarkt nur im Striatum, während mehr als einer Stunde MCAO sowohl Striatum und Kortex beschädigt wird. Nach 24 h permanent MCAO, ist die gesamte Infarkt Anteil ~ 40 ± 5% der Hemisphäre und die Sterblichkeitsrate nach einer Operation ist ~ 10%. Wir schließen Mäuse aus weiteren Studien, wenn übermäßige Blutungen während der Operation, die Betriebszeit 90 min überschreitet, nicht Mäuse von der Narkose innerhalb von 15 min zu erholen, oder Blutung im Gehirn Scheiben oder an der Basis der Kreis der Willis während Autopsie gefunden . jove_content "&gt; <img src="/files/ftp_upload/2761/2761fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Repräsentative Bilder TTC-gefärbten Hirnschnitten (koronalen Ebene 1-4) nach 24 h permanent MCAO. In lebendem Gewebe TTC wird enzymatisch durch Dehydrogenasen zu 1,3,5-Triphenylformazan (TPF), die in der Farbe rot wird reduziert, während in nekrotischen Gebieten ist es weiß bleibt wegen des Fehlens einer solchen enzymatischen Aktivität. Daher kann der Bereich der Infarkt durch seine weiße Farbe wegen mangelnder Umsetzung der TTC auf TPF identifiziert werden. Hinweis: TTC ist etwas Wärme und Licht instabil, so schützen gefärbten Schnitten von Wärme und Licht so weit wie möglich.

<ol><li>Howard, G., Howard, V. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHoward%2C+G+%22Distribution+of+stroke%3A+hetrogeneity+of+stroke+by+age%2C+and+sex%22">Distribution of stroke: hetrogeneity of stroke by age, and sex</a>. , Elsevier Inc. New York. 3-12 (2004).</li>
<li>Thom, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics--2006+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association+Statistics+Committee+and+Stroke+Statistics+Subcommittee%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics--2006 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee.</a> Circulation. 113, e85-e151 (2006).</li>
<li>Mohr, J. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMohr%2C+JP+%22Middle+cerebral+artery+disease%22">Middle cerebral artery disease</a>. , Elsevier Inc. New York. 123-166 (2004).</li>
<li>Longa, E. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20, 84-91 (1989).</li>
<li>Chou, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+protein+kinase+Cdelta+as+a+mediator+of+stroke-reperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Neutrophil protein kinase Cdelta as a mediator of stroke-reperfusion injury.</a> J. Clin. Invest. 114, 49-56 (2004).</li>
<li>Hudgins, W. R., Garcia, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+electrocautery%2C+atmospheric+exposure%2C+and+surgical+retraction+on+the+permeability+of+the+blood-brain-barrier%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">The effect of electrocautery, atmospheric exposure, and surgical retraction on the permeability of the blood-brain-barrier.</a> Stroke. 1, 375-380 (1970).</li>
<li>Carmichael, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+models+of+focal+stroke%3A+size%2C+mechanism%2C+and+purpose%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroRx%22%5BJournal%5D)">Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose.</a> NeuroRx. 2, 396-409 (2005).</li>
<li>Durukan, A., Tatlisumak, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+ischemic+stroke%3A+overview+of+major+experimental+rodent+models%2C+pathophysiology%2C+and+therapy+of+focal+cerebral+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol.+Biochem.+Behav%22%5BJournal%5D)">Acute ischemic stroke: overview of major experimental rodent models, pathophysiology, and therapy of focal cerebral ischemia.</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 87, 179-197 (2007).</li>
<li>Taniguchi, H., Andreasson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hypoxic-ischemic+encephalopathy+model+of+perinatal+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The hypoxic-ischemic encephalopathy model of perinatal ischemia.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
</ol>

Wir haben noch keine potenziellen Interessenkonflikte offen zu legen.

MCAO in Mäusen wird häufig verwendet, um Schwerpunkte Hirnischämie in Menschen-Modell. Verwendung von Mäusen für Schlaganfall-Studien häufiger geworden, weil die Verfügbarkeit von transgenen und Knockout-Stämme. Es gibt ein paar wichtige Details in der Protokollnotiz: <ol><li> Es ist wichtig, um die Maus Körpertemperatur während der Operation zu erhalten und, bevor es vollständig erholt aus der Narkose. Die Körpertemperatur hat Auswirkungen auf das Ausmaß des Infarktes; Unterkühlung abnimmt und Hyperthermie erhöht die Größe des Infarkts. </li><li> Während Entlarvung und Isolierung der CCA und ECA, um eine Beschädigung der Nähe Vagusnerv und Luftröhre, die Infarktgröße und Abnahme Lebensfähigkeit erhöhen könnte. </li><li> Stecken Sie niemals das Monofilament Naht mehr als 10 mm fallen die Bifurkation. Eine Naht eingefügt zu weit kann perforieren die A. cerebri anterior und das Ergebnis in Hirnblutung. Ein Widerstand zu spüren, wenn die Naht etwa 9-10 mm über der Bifurkation Punkt vorangetrieben werden. Wenn dies geschieht, sollte der Forscher stoppen Förderung der Naht und bestätigen die Ferne. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Isofluran</td><td>Chemikalie</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>95045-588</td><td></td></tr><tr><td>V-10 Anäthesiesystem</td><td>Ausstattung</td><td>VetEquip</td><td>901807</td><td></td></tr><tr><td>TR-200 Temperaturregler</td><td>Ausstattung</td><td>Fine Science Tools</td><td>21060</td><td></td></tr><tr><td>Elektrischer Clipper</td><td>Ausstattung</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>CLP-9931</td><td></td></tr><tr><td>Präparationsmikroskop</td><td>Ausstattung</td><td>Nikon Instruments</td><td>SMZ745T</td><td></td></tr><tr><td>Retraktorsystem</td><td>Ausstattung</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>ACD-014</td><td></td></tr><tr><td>Bipolar-Koagulator</td><td>Ausstattung</td><td>Howard Instrument</td><td>64000</td><td></td></tr><tr><td>Seidennaht</td><td>Material</td><td>Harvard Apparatus</td><td>510479</td><td></td></tr><tr><td>Mono­fil-Nahtmaterial</td><td>Material</td><td>Harvard Apparatus</td><td>723351</td><td></td></tr><tr><td>Vaskulärklemme</td><td>Ausstattung</td><td>Fine Science Tools</td><td>00396-01</td><td></td></tr><tr><td>Vannas-Schere</td><td>Ausstattung</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>Gehirnmatrix</td><td>Ausstattung</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>BS-2000C</td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid</td><td>Chemikalie</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8877</td><td></td></tr><tr><td>10 % neutral gepuffertes Formalin</td><td>Chemikalie</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT5011</td><td></td></tr></tbody></table>

mouse model of middle zerebralarterie

Mouse Model of Middle Cerebral Artery Occlusion

Der Schlaganfall ist die häufigste tödlich verlaufende neurologische Erkrankung in den USA 1. Die Mehrzahl der Schlaganfälle (88%) resultieren aus Verstopfung von Blutgefäßen im Gehirn (ischämischer Schlaganfall) 2. Da die meisten ischämischen Schlaganfälle (~ 80%) in das Gebiet der mittleren Hirnarterie (MCA) 3 auftreten, haben viele Tier-Takt Modelle, die entwickelt wurden auf dieser Arterie konzentriert. Die intraluminale Monofilament Modell der mittleren Hirnarterie Okklusion (MCAO) beinhaltet das Einführen eines chirurgischen Fadens in die Arteria carotis externa und Gewindeschneiden es vorwärts in die Arteria carotis interna (ICA), bis die Spitze verschließt die Herkunft des MCA, was zu einer Einstellung des Blutflusses und der anschließenden Hirn-Infarkt in der MCA Gebiet 4. Die Technik kann verwendet werden, um dauerhafte oder vorübergehende Okklusion 5 Modell sein. Wenn die Naht nach einer gewissen Zeit (30 min, 1 h oder 2 h) entfernt wird, wird Reperfusion erreicht (transient MCAO), wenn der Faden belassen wird (24 h) das Verfahren ist als Modell für dauerhafte MCAO geeignet . Diese Technik erfordert keine Kraniektomie, eine neurochirurgische Verfahren, um einen Teil des Schädels, der Hirndruck und Temperatur 6 beeinflussen können, zu entfernen. Es ist das am häufigsten verwendete Methode zur dauerhaften und transienter fokaler zerebraler Ischämie bei Ratten und Mäusen 7,8 imitieren. Zur Beurteilung der Umfang der Hirninfarkt, Flecken wir Hirnschnitten mit 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) an ischämischen Gehirn Gewebe 9 zu identifizieren. In diesem Video zeigen wir die MCAO Methode und die Bestimmung der Infarktgröße durch TTC-Färbung.

Wir zeigen in dem Video ein Verfahren zur Herstellung einer mittleren Zerebralarterie in erwachsenen Mäusen mit einem intraluminalen Monofilament. Wir zeigen auch, wie man das Ausmaß der Hirninfarkt von 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) Färbung zu bewerten.

Mouse Model of Middle Zerebralarterie

Schlaganfälle sind die häufigste tödliche neurologische Erkrankung in den Vereinigten Staaten 1. Die Mehrheit der Schlaganfälle (88 %) resultiert aus einer Blockade von Blutgefäßen in den ...

Hallo, mein Name ist Terrence Jam. Mein Name ist Hai Joe. Heute zeigen wir Ihnen, wie man ein Mausmodell einer mittleren Hirnarterienverschlussoperation durchführt.Beginnen wir also. Dieses Experiment beginnt mit der Vorbereitung der Naht. Schneiden Sie die Naht zunächst in 20 Millimeter lange Stücke. Runden Sie die Spitze, indem Sie die Naht näher an einen Kauter führen. Danach messen Sie die Spitze der Naht. Nun sind wir bereit, die Operation zu beginnen, wobei die Maske auf dem Rücken liegt.Führen Sie einen Schnitt entlang der Mittellinie durch. Verwenden Sie eine Pinzette, um die A. carotis externa freizulegen. An der A. carotis externa befinden sich viele Seitenäste.Einer dieser Äste ist die A. thyroidea superior (STA). Die STA muss mit bipolarer Pinzette koaguliert werden. Anschließend muss die STA durchtrennt werden, um eine bessere Isolierung der A. carotis externa (ECA) zu ermöglichen.Anschließend wird die A. carotis externa geronnen und so weit wie möglich von der A. carotis communis entfernt platziert. An diesem Punkt kann es sinnvoll sein, die A. carotis externa zu isolieren, um einen besseren Zugang zu erhalten. Danach lockern Sie zwei Nahtfäden um die A. carotis externa, die einige Millimeter voneinander entfernt liegen.Platzieren Sie die Klemme am Abzweigpunkt der A. carotis communis zur A. carotis externa und interna. Danach klemmen Sie die Spitze des Stumpfs der A. carotis externa ab. Richten Sie anschließend den Stumpf der A. carotis externa zur A. carotis interna aus.Dadurch kann die Naht kontinuierlich von der A. carotis externa (ECA) zur A. carotis interna (ICA) verlaufen. Messen Sie die Gesamtlänge der Naht vor der Insertion. Führen Sie die Naht in die Öffnung ein, die durch das Abklemmen des ECA-Stumpfes entstanden ist.Wenn die Naht den distalen Knoten passiert, sichern Sie den Knoten, indem Sie ihn festziehen. Entfernen Sie anschließend die Klemme und führen Sie die Naht weiter in die A. carotis externa (ECA) ein. Wenn die Naht den proximalen Knoten passiert, sichern Sie den Knoten, indem Sie ihn festziehen.Nachdem beide Knoten befestigt sind, das Nahtmaterial vorsichtig entlang der Arterie einführen, bis neun bis zehn Millimeter Nahtmaterial durchgezogen sind. Der Abzweigungspunkt kann bestimmt werden, indem die Länge des Nahtmaterials bis zum Abzweigungspunkt von der Gesamtlänge des Nahtmaterials subtrahiert wird. Sobald das Nahtmaterial den Ursprung der A. cerebri media (MCA) erreicht.Die A. cerebri media wird okkludiert. Nach 24 Stunden erfolgt die Tötung der Tiere und das Gehirn wird isoliert. Für die TTC-Färbung wird das isolierte Gehirn in eine Form gegeben und mit einer Rasierklinge in Schnitte geteilt.Anschließend wird das Gehirn 20 Minuten bei Raumtemperatur in 2 % TTC platziert. Abschließend wird das Gehirn über Nacht fixiert und neutral gepuffert.Die Vorbereitung der Naht ist ein empfindlicher Prozess. Hier sind einige hilfreiche Tipps. Positionieren Sie die Naht und den Kauter wie folgt.Dann, während der Kauter unter gleichbleibender Position gehalten wird, langsam die Naht näher heranführen. Anschließend die Naht vermessen, um sicherzustellen, dass sie die richtige Größe aufweist. Die Größe der Naht, die wir in diesem Experiment verwenden, liegt bei etwa 0,21 bis 0,22 Millimetern.Um die Operation zu beginnen, legen Sie die Maske auf den Rücken und induzieren Sie die Anästhesie mit 30 % Sauerstoff und 70 % Stickstoff. Führen Sie einen Schnitt entlang der Mittellinie durch und setzen Sie dann Retraktoren ein, um den Zugang zu dem Bereich zu eröffnen. Es sollte wie folgt aussehen.Trennen Sie das Gewebe vorsichtig mit der Pinzette. Danach exponieren und isolieren Sie die A. carotis externa (ECA) mit der Pinzette. Im Verlauf der Isolierung der ECA muss die A. temporalis superficialis (STA) koaguliert und durchtrennt werden. Dadurch kann ein längeres Stück der ECA isoliert werden.Anschließend muss die A. carotis externa mit Hilfe von bipolarer Pinzette koaguliert werden. Nach der Koagulation ist die A. carotis externa zu durchtrennen. Danach die A. carotis externa freilegen und zwei Nahtfäden locker in einigen Millimetern Abstand um sie legen. Das Ergebnis sollte in etwa so aussehen.Bringen Sie nun die Klemme an der Bifurkation von A. carotis communis (CCA) zu A. carotis interna (ICA) und A. carotis externa (ECA) an. Stellen Sie sicher, dass die Klemme den Blutfluss zur A. carotis externa (ECA) vollständig unterbindet. Danach verschließen Sie das Ende des ECA-Stumpfes mit einer Klemme.Messen Sie die Naht vor der Insertion, nachdem eine Öffnung an der A. carotis externa (ECA) angelegt wurde. Führen Sie die Naht ein, und ziehen Sie sie über die Öffnung hinaus hinter den distalen Knoten. Sobald die Naht den distalen Knoten passiert hat, ziehen Sie den Knoten fest.Entfernen Sie anschließend die Klemme. Nachdem Sie überprüft haben, dass der distale Knoten sicher ist, führen Sie die Naht weiter entlang der A. carotis externa an dem proximalen Knoten vorbei ein. Ziehen Sie danach den proximalen Knoten fest.Nun setzen Sie die Naht vorsichtig entlang der A. carotis externa in die A. carotis interna fort. Fahren Sie mit dem Vorschieben der Naht entlang der A. carotis interna fort, bis neun bis zehn Millimeter der Naht am Abzweigpunkt vorbeireichen. Dies kann errechnet werden, indem die Länge der Naht bis zum Abzweigpunkt von der Gesamtlänge der Naht abgezogen wird.Als Nächstes kürzen Sie den Faden so, dass das umliegende Gewebe nicht verletzt wird. Danach nähen Sie den Einschnitt zu und lassen die Maus ausreichend Zeit zur Erholung. Bereiten Sie die TTC-Färbung 24 Stunden nach der Operation vor.Töten Sie die Maus zunächst durch Halswirbelaustraktion. Anschließend wird das Gehirn aus dem Schädel entfernt und in eine Form gelegt. Danach schneiden Sie das Gehirn mit einer Rasierklinge und färben es 20 Minuten bei Raumtemperatur mit 2 % TTC. Dann über Nacht fixieren und mit 10 % neutral gepuffertem Puffer für Melin versetzen. Das war's. Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Filamentous Verschluss der mittleren Hirnarterie ist ein gemeinsames Modell für die Untersuchung einen ischämischen Schlaganfall bei Mäusen.

Modeling Stroke in Mice - Middle Zerebralarterie mit dem Filament-Modell

Die intraluminale Mitte Zerebralarterie (MCAO) Modell ist die häufigste verwendete Modell unter experimentellen Schlaganfall-Modellen. Hier zeigen wir Ihnen das gesamte Modell im Detail mit der Führung des Laser-Doppler-Flussmessung und seine repräsentative Ergebnisse.

Intraluminale Nahen Zerebralarterie (MCAO) Modell des ischämischen Schlaganfalls mit Laser-Doppler-Flussmessung Guidance in Mäuse

Der intraluminale cerebri Okklusion in Mäusen wird hier vorgestellt. Das Ausmaß der Hirninfarkt wird durch eine neurologische Partitur und Cresylviolett Färbung, eine alternative Färbung zur TTC bietet den großen Vorteil, dass sie parallel viele interessante Marker testen ausgewertet.

Maus-Modell der Intraluminal MCAO: Hirninfarkt Evaluation durch Cresylviolett Staining

Quelle: Lee, S. E., et al. Bewertung der neuroprotektiven Wirkung von Glycyrrhizae Radix et Rhizoma-Extrakt unter Verwendung eines Mausmodells mit transientem Verschluss der mittleren Hirnarterie. J. Vis. Exp. (2018)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Beurteilung der neuroprotektiven Wirkung einer Testsubstanz in einem Mausmodell mit Verschluss der mittleren Hirnarterie. Die Verbindung dringt in das Gehirn ein, verhindert den neuronalen Tod und reduziert das Infarktvolumen, was ihre...

Bewertung der neuroprotektiven Wirkung einer Testsubstanz in einem Mausmodell für einen Verschluss der mittleren Hirnarterie

Verschiedene Mausmodellen der mittleren Hirnarterie (MCAO) sind weit verbreitet in der experimentellen Hirnforschung. Hier zeigen wir das Modell der transkraniellen Dauer distalen MCAO, die im Einklang kortikalen Infarkt von einer Größe, die von der Mehrheit der menschlichen ischämische Schlaganfälle auferlegt Schaden produziert.

Modellierung Schlaganfall bei Mäusen: Permanent Koagulation der distalen A. cerebri media

Verschiedene Modelle des mittleren Hirnarterienverschlusses (MCAo) werden in der experimentellen Schlaganfallforschung eingesetzt. Hier wird ein experimentelles Schlaganfallmodell der transienten MCAo über die Arteria carotis externa (ECA) beschrieben, das darauf abzielt, den menschlichen Schlaganfall nachzuahmen, bei dem der zerebrovaskuläre Thrombus aufgrund einer spontanen Gerinnsellyse oder -therapie entfernt wird.

Modellierung des Schlaganfalls bei Mäusen: Vorübergehender Verschluss der mittleren Hirnarterien über die Arteria carotis externa

Dieses Protokoll demonstriert ein einzigartiges Mausschlagmodell mit einem mittelgroßen Infarkt und einer ausgezeichneten Überlebensrate. Dieses Modell ermöglicht es präklinischen Schlaganfallforschern, die Dauer der Ischämie zu verlängern, gealterte Mäuse zu verwenden und langfristige funktionelle Ergebnisse zu bewerten.

Ein modifiziertes transkranielles Modell für den Verschluss der mittleren Hirnarterie zur Untersuchung von Schlaganfallergebnissen bei gealterten Mäusen

Dieses Protokoll beschreibt das Modell der transienten fokalen zerebralen Ischämie bei Mäusen durch intraluminalen Verschluss der mittleren Hirnarterie. Darüber hinaus werden Beispiele für die Ergebnisbewertung mit Hilfe von Magnetresonanztomographie und Verhaltenstests gezeigt.

Transienter mittlerer Hirnarterienverschluss Modell des Schlaganfalls

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur Etablierung eines distalen Modells für einen Verschluss der mittleren Hirnarterie (dMCAO) durch transkranielle Elektrokoagulation bei C57BL/6J-Mäusen vor und bewerten das anschließende neurologische Verhalten und die histopathologischen Merkmale.

Induktion eines akuten ischämischen Schlaganfalls bei Mäusen mit der Technik des distalen Mittelarterienverschlusses

Das aktuelle Protokoll beschreibt ein Rattenmodell des Verschlusses/der Reperfusion der mittleren Hirnarterien, das die anatomische Struktur der Hirngefäße bewahrt, ohne Schäden zu verursachen.

Ein Rattenmodell für den Verschluss/die Reperfusion der mittleren Hirnarterie ohne Beschädigung der anatomischen Struktur der Hirngefäße

Ziel dieser Studie war es, eine reproduzierbare Methode zur Durchführung einer Kraniektomie zu etablieren, gefolgt von permanenter, selektiver Okklusion der mittleren Hirnarterie bei Ratten zur Anwendung in experimentellen Studien zu motorischen und räumlichen Gedächtnisdefiziten.

Selektive und permanente Verschluss der mittleren Hirnarterie bei Ratten: Ein experimenteller Ansatz zur Untersuchung motorischer und räumlicher Gedächtnisdefizite

Erfahren Sie das intraluminale Filament-Modell der Arteria cerebri media Okklusion bei Mäusen zur Simulation fokaler zerebraler Ischämie. Diese Methode ermöglicht die reproduzierbare Induktion ischämischen Schlaganfalls ohne Kraniotomie.

Mouse Model of Middle Zerebralarterie

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