Name: 설치류에서 외상후 Epileptogenesis의 아래 부분을 잘라냄 모델 준비 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: 학습하세요 설치류에서 외상후 간질발생을 연구하기 위한 아래 부분을 잘라냄 모델 준비 방법을. 맞춤형 수술 기구를 사용하여 정밀하고 일관된 뇌 병변을 생성하고 전기생리학적 기록으로 간질 활동을 평가하는 이 기법은 신경과학 연구에 유용합니다.

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이 작품은 척수 및 건강의 인디애나 국무부에서 뇌 손상 연구 기금에서 NIH / NINDS 부여 4R00 NS 057,940, 그리고 부여 SCBI 200-12에 의해 지원되었다.

1. 아래 부분을 잘라냄 수술을위한 간단한 장치를 만들기 <ol><li> 우리가 만든 아래 부분을 잘라냄 장치는 세 부분으로 (그림 1)으로 구성되어 있습니다 : 유도 관의 부착 및 바늘을 수 있으며, 수술 중에 두개골 창을 가로질러 앉아 스테인레스 스틸 또는 플라스틱으로 만들어진 (1) 지원 플레이트 (2) 위치에 바늘을 보유하고 있으며 바늘의 회전을 허용하는지도 튜브 및 끝에서 ~ 3mm에서 90도 구​​부린 및 회전 삽입로 이동됩니다 (3) 바늘. </li><li> 두께 1-1.5 mm, 7 조각 ~ 10 X 30mm 직사각형 스테인리스 스틸 또는 투명 플라스틱 (1) 지원 플레이트를 만들기 위해 잘라. 1.5 인치 22 게이지 (BD 회사, # 305156)와 1.5 인치 25 게이지 (BD 회사, # 305127) 주사 바늘을 준비합니다. 지도 튜브하려면, 플라스틱 종료하고 그 총 길이가 31-32mm (2)에 관한 있도록 22 게이지 주사 바늘의 낮은 바늘 끝을 잘라. 모래 금속 끝을은 평평하고 부드럽게 만들 수 있습니다. 이 유도 관의 마지막 길이는 25 게이지 주사 바늘보다 짧은 5~6mm에 대해해야합니다. </li><li> 바늘이 금속의 가장자리에 수직되어 있는지 확인하고, 지원 접시에지도 튜브를 해결하기 위해 cyanoacrylate 접착제를 사용하십시오. </li><li> 지도 튜브에 25 게이지 주사 바늘을 삽입하고, 팁 (그림 1) 2.5-3 mm에서 바늘을 90도 구​​부. </li><li> 바늘의 결국 (그림 1, 바늘 정지)에 gluing 작은 플라스틱 튜브로 바늘의 수직 이동 범위를 조정합니다. 바늘의 마지막 이동 범위는 바늘이 대뇌 피질에 삽입 할 수있는 방법을 깊이 결정, 및 P21 쥐에 대한 1.6-1.8 mm와 P21 생쥐에 대한 1.3-1.5 mm해야합니다. 이 길이는 동물의 종 및 연령에 맞게 변경해야합니다. </li><li> 구부러진 끝 (Fig.1 바늘 표시기)와 같은 방향으로 바늘의 위쪽 끝에 작은 구리 와이어 또는 테이프의 작은 조각을 첨부합니다. 와이어 또는 테이프는 아래 부분을 잘라냄 수술 중 바늘의 회전 각도 (그림 1)을 나타냅니다. </li></ol> 2. 동물 준비 <ol><li> 모든 수술 장비 유리 비드 살균기, 또는 70 % 에탄올로 소독과 멸균, autoclaved해야합니다. </li><li> 22일 (P20 - 22) 또는 같은 나이에 CD1 쥐들이 - 우리는 출생 후의 20 세에서 스프 / Dawley 쥐를 사용합니다. 마우스 또는 쥐의 다른 변종은 특정 프로젝트에 사용할 수 있습니다. </li><li> 300ml의 IP 주사와 마우스를 마취 80 MG / kg와 xylazine 8 MG / kg. 동물이 꼬리 핀치에 응답하지 않습니다 후 수술이 시작됩니다. 수술하는 동안, 필요한 경우 한 3의 부스터 선량은 마취 칵테일의 원래 복용량은 원래 마취 상태를 복원하기 위해 부여하실 수 있습니다. </li><li> 전기 헤어 트리머와 함께 동물의 두피에서 머리카락을 자르고. 마취 동안 건조로부터 보호하기 위해 동물의 눈을에 안과 연고의 작은 금액을 적용합니다. 70 % 에탄올에 이어 10 % povidone - 요오드 솔루션을 사용하여 두피를 소독. </li><li> 안정적인 고정 위치에 머리를 유지하는 stereotaxic기구에 동물을 탑재합니다. 수술 전반에 걸쳐, 우리는 저체온증을 방지하기 위해 가열 패드에있는 동물을 유지. </li><li> 람다의 눈 사이에 연장 메스를 사용하여 두피에 중간선 앞쪽에 - 후부 절개를합니다. 이외에도 피부를 뽑아 충분히 왼쪽 두개골을 노출 hemostats를 사용합니다. </li><li> 왼쪽 두개골에 사각형 상처를 확인하고, 골막을 모으 메스를 사용합니다. 이 단계는 출혈을 줄이고 두개골에 드릴 용이합니다. </li></ol> 3. undercuts 만들기 <ol><li> 노출된 두개골 지역에 무균 식염수의 작은 금액을 추가하고 혈액을 청소하고 지역을 건조하는 데 몇 Q - 팁을 사용합니다. </li><li> 수술 현미경, 왼쪽 두개골의 중앙에 사각형 홈을 (쥐에 ~ 5 X 7mm, 4 마우스의 X 5mm) (약 왼쪽 sensorimotor 피질 이상) 드릴링 시작합니다. 두개골에 염분의 드롭을 적용하면 드릴링 및 없어져요 열을 용이하게합니다. 뚫고있는 뼈 약 삼분의이 깊이 후, 여분의 염분을 제거하고 면봉을 넣었로 드릴링 지역을 청소하십시오. 뼈의 중앙 조각은 포셉의 부드러운 터치에 따라 움직일 수있는 때까지 천천히 조심스럽게 깊이 드릴. </li><li> 조심스럽게 뼈의 가장자리에 포셉의 날카로운 팁을 삽입하고 천천히 왼쪽 반구를 노출 포셉 운동으로 뼈의 중앙 조각을 제거합니다. </li><li> 수술 현미경, 아래 부분을 잘라냄 장치를 보유하고 동양 parasagittal 방향으로 바늘과 바늘 끝과 대상 피​​질 영역의 시각화를 유지하는 등 약간 caudally 있도​​록 중간선, 틸팅 장치의 지원 플레이트 직각. 두개골 윈도우의 중앙에, 우수한 화살 치료 측면 지역 1~2mm으로 바늘의 끝을 겨냥해서 대형 선박의 직접적인 침투를 방지. </li><li> 혈관을 여분을 줄 수있는만큼 경질 통해 PIA 아래 수평 방향으로 바늘을 삽입합니다. 아래 부분을 잘라냄 장치의 바닥을 앉아두개골 창의 양쪽 가장자리에 너무 바늘은 대뇌 피질의 표면 (그림 1) 정상적인 위치입니다. 손으로 두개골 창의 가장자리 모두에서 장치를 휴식하는 것은 크게 감소하거나 다음 절차를 수행하는 동안 흔들어 손을 제거합니다. PIA 아래에 바늘을 올려 후 천천히 바늘이 깊이 갈 수있을 때까지 그것이 transcortical 상처를 만들 수 낮추십시오. ° 떨어진 VI는 아래 부분을 잘라냄 반 원을 흰색 물질 / 깊은 레이어를 만들 수 중간선에서 ~ 135를 회전합니다. 다음 PIA 아래 다시 바늘을 올립니다. 역방향 장치를 기울이기와 바늘을 철회. </li><li> 선택, 하나는 위의 절차 (단계 2.5) 반복하지만 윈도우의 측면 가장자리에서 추가 transcortical 상처를 만들만큼 바늘을 회전하지 않고 있습니다. 이것은보다 완벽한 대뇌 피질의 격리를 생성합니다. </li><li> 보호하기 위해 두개골 윈도우에 플라스틱 필름의 조각 (6 X 6mm)을 장소, 두피 치료. 완전히 마취에서 회복까지 온수 패드에있는 동물을 놓으십시오. </li></ol> 4. 대표 결과 : 코로나 피질 조각은 아래 부분을 잘라냄 수술의 성공을 확인하는 준비하실 수 있습니다. &gt; 이주 수술 후 준비 슬라이스에서 transcortical과 아래 부분을 잘라냄 인하는 현미경의 저전력 목표 (그림 2)에 따라보고 알 수있는 있습니다. 부분적으로 고립된 피질은 보통 약간 얇은되고, epileptiform 활동 분야 잠재적인 기록 (그림 3)과 대뇌 피질의 조각의 대부분에서 발견하실 수 있습니다. 흰 문제 또는 깊은 피질 층에 큰 구멍 대비 형성에서 lesioned 피질, 또는 위 또는 아래 하얀 문제되고 잘못된 컷의 밝은 극적인 추가 실험을위한 두뇌를 사용할 수 없게 될 것입니다. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 아래 부분을 잘라냄 장치의 구조 및 응용 프로그램. 지침 튜브 (2) 스테인레스 스틸 또는 투명 플라스틱으로되어 지원 플레이트 (1)에 붙어있다. 주사 바늘 (3) 팁로 ~ 3mm의지도 튜브 및 구부러진를 통해 삽입됩니다. 니들은 플라스틱 튜브로 만들어진 정지하면 바늘의 수직 이동 범위가 ~ 1.2 mm 각각 P21 마우스 및 쥐에 사용 ~ 1.5 mm로 제한되도록 바늘의 위쪽 끝에 붙어있다. 작은 구리 와이어의 세그먼트는 구부러진 바늘의 방향에 대해 바늘 지표로 핸들 아래에 고정됩니다. 장치가 기울어져 있으며, 두개골 윈도우의 양쪽 가장자리와 접촉 상처가 pial 표면에 평행하게 만들 수 있도록합니다. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 허리의 연한 고기 슬라이스의 대표 이미지. P48 쥐에서 아래 부분을 잘라냄 병변 이후 두 주를 준비했습니다 슬라이스의 A. 형광 이미지. 절삭 상처는 형광 염료 DiI에 의해 분류되었다. 오른쪽에 흰색 화살표는 transcortical 컷을 표시하고, 하단에있는 화살표는 계층 IV과 흰색 물질의 경계하지만 합격 아래 부분을 잘라냄 나타냅니다. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 아래 부분을 잘라냄 뇌 슬라이스에서 아래 부분을 잘라냄 슬라이스. 필드 잠재 녹화에서 필드 가능성이 기록은 부상 대뇌 피질 조직 hyperexcitability을 제안, epileptiform 활동을 전시.

<ol><li>Hoffman, S. N., Salin, P. A., Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+neocortical+epileptogenesis+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chronic neocortical epileptogenesis in vitro.</a> J Neurophysiol. 71, 1762-1773 (1994).</li>
<li>Topolnik, L., Steriade, M., Timofeev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperexcitability+of+intact+neurons+underlies+acute+development+of+trauma-related+electrographic+seizures+in+cats+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Hyperexcitability of intact neurons underlies acute development of trauma-related electrographic seizures in cats in vivo.</a> Eur J Neurosci. 18, 486-496 (2003).</li>
<li>Graber, K., Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGraber%2C+K+%22Models+of+Seizures+and+Epilepsy%22">Models of Seizures and Epilepsy</a>. , Elsevier. 477-493 (2005).</li>
<li>Nita, D. A., Cisse, Y., Timofeev, I., Steriade, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+propensity+to+seizures+after+chronic+cortical+deafferentation+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Increased propensity to seizures after chronic cortical deafferentation in vivo.</a> J Neurophysiol. 95, 902-913 (2006).</li>
<li>Sharpless, S. K., Halpern, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+electrical+excitability+of+chronically+isolated+cortex+studied+by+means+of+permanently+implanted+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Electroencephalogr+Clin+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">The electrical excitability of chronically isolated cortex studied by means of permanently implanted electrodes.</a> Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 14, 244-255 (1962).</li>
<li>Echlin, F. A., Battista, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epileptiform+Seizures+from+Chronic+Isolated+Cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Neurol%22%5BJournal%5D)">Epileptiform Seizures from Chronic Isolated Cortex.</a> Arch Neurol. 9, 154-170 (1963).</li>
<li>Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epileptogenic+neurons+and+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Neurol%22%5BJournal%5D)">Epileptogenic neurons and circuits.</a> Adv Neurol. 79, 665-684 (1999).</li>
<li>Marin-Padilla, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+neuropathology+and+impact+of+perinatal+brain+damage.+II%3A+white+matter+lesions+of+the+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neuropathol+Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Developmental neuropathology and impact of perinatal brain damage. II: white matter lesions of the neocortex.</a> J Neuropathol Exp Neurol. 56, 219-235 (1997).</li>
<li>Jin, X., Prince, D. A., Huguenard, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+excitatory+synaptic+connectivity+in+layer+v+pyramidal+neurons+of+chronically+injured+epileptogenic+neocortex+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Enhanced excitatory synaptic connectivity in layer v pyramidal neurons of chronically injured epileptogenic neocortex in rats.</a> J Neurosci. 26, 4891-4900 (2006).</li>
<li>Li, H., Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+activity+in+chronically+injured%2C+epileptogenic+sensory-motor+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Synaptic activity in chronically injured, epileptogenic sensory-motor neocortex.</a> J Neurophysiol. 88, 2-12 (2002).</li>
<li>Salin, P., Tseng, G. F., Hoffman, S., Parada, I., Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+sprouting+in+layer+V+pyramidal+neurons+of+chronically+injured+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Axonal sprouting in layer V pyramidal neurons of chronically injured cerebral cortex.</a> J Neurosci. 15, 8234-8245 (1995).</li>
<li>Avramescu, S., Nita, D. A., Timofeev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neocortical+post-traumatic+epileptogenesis+is+associated+with+loss+of+GABAergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Neocortical post-traumatic epileptogenesis is associated with loss of GABAergic neurons.</a> J Neurotrauma. 26, 799-812 (2009).</li>
<li>Avramescu, S., Timofeev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+strength+modulation+after+cortical+trauma%3A+a+role+in+epileptogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Synaptic strength modulation after cortical trauma: a role in epileptogenesis.</a> J Neurosci. 28, 6760-6772 (2008).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

아래 부분을 잘라냄 모델은 외상후 epileptogenesis를 공부를위한 고효율 시스템입니다. 전형적인 수술을 완료하는 데 약 20-30분 소요하고, evoked 또는 자연 epileptiform 활동이 이주 수술 후 1-2 대부분의 동물에서 슬라이스에 기록하실 수 있습니다. 더 중요한 건,이 모델은 출혈, 염증, 부종, axotomy와의 연결을 죽음 7과 같은 외상성 뇌 손상 다음과 같은 변경 사항을 모방한 것이었 지요. 뿐만 아니라이 설치류 및 다른 동물에 epileptiform 활동 관찰되었으며,뿐만 아니라 간질 발작은 대뇌 피질의 병변 비교 8 고통을 인간에 설명되어있다. 큰 진전은 최근 몇 년 사이에 근본적인 메커니즘을 명료하게하다하기 위해 만든되었습니다. 자연과 evoked interictal epileptiform의 방전은&gt; 2 주 병변 후 뇌 슬라이스에 기록되었으며, 이러한 활동은 쥐의 대뇌 피질의 계층 V 1에 발생한 것으로되...

<table border="1"><tbody><tr><td> 재료 이름 </td><td> 유형 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Foredom micromotor 키트 </td><td> 장비 </td><td> Foredom </td><td> K.1070 </td></tr><tr><td> 1.5 인치 22 게이지 주사 바늘 </td><td> 자료 </td><td> BD 회사 </td><td> 305156 </td></tr><tr><td> 1.5 인치 25 게이지 주사기 바늘 </td><td> 자료 </td><td> BD 회사 </td><td> 305127 </td></tr><tr><td> Cyanoacrylate 접착제 </td><td> 자료 </td><td> 테드 펠라 </td><td> 14,450 </td></tr></tbody></table>

설치류에서 외상후 epileptogenesis의 아래 부분을 잘라냄 모델 준비

Preparing Undercut Model of Posttraumatic Epileptogenesis in Rodents

부분적으로 격리 피질 ( &quot;가격을 내리다&quot;) 외상후 epileptogenesis의 동물 모델입니다. 수술은 sensorimotor 피질과 대뇌 피질의 특정 영역이 크게 인근 피질과 subcortical 지역 1-3에서 격리되도록 흰색 물질 (아래 부분을 잘라냄) 아래에. 통해 절단 포함 수술 다음과 같은 두 개 이상의 주 지연 시간 후, epileptiform의 방전은 설치류 1 뇌 슬라이스에 기록 수 있으며, 전기 또는 행동 압류는 그러한 고양이와 원숭이 4-6와 같은 다른 종 생체내에서 볼 수 있습니다. 이 잘 구축 동물 모델을 생성하는 효율적이며, 외상성 뇌 손상의 여러 가지 중요한 특성을 모방한 것이었 지요. 그러나, 그것은 기술적으로 무료로 손이 작은 쥐 두뇌의 대뇌 피질의 병변 정확한를 만들기 위해 시도 도전이다. 처음에 스탠포드 대학 1 박사 데이비드 왕자의 실험실에서 설립 절차에 따라, 우리가 마우스 및 쥐이 모델의 준비를위한 수술을 수행하는 향상된 기술을 제시한다. 우리는 간단한 수술 장치를 만들고 더 정확하고 일관된 결과를 생성하기 위해 깊이와 각도 절단의 더 나은 통제를 얻을 그것을 사용하는 방법을 보여줍니다. 장치 수 있도록 간단하고, 절차가 빨리 배웁니다. 이 동물 모델의 생성은 외상후 epileptogenesis의 메커니즘에 대한 연구에 대한 효율적인 시스템을 제공합니다.

부분적으로 격리 피질 ( &quot;가격을 내리다&quot;) 외상후 epileptogenesis의 효율적인 동물 모델입니다. 여기 소설 수술 장치를 만들고이 모델을 생성하기 위해보다 정확하고 일관성있는 병변을 만들기 위해 그것을 사용하는 방법을 보여줍니다.

설치류에서 외상후 Epileptogenesis의 아래 부분을 잘라냄 모델 준비

부분적으로 격리된 피질("언더컷")은 외상 후 뇌전증 발생의 동물 모델입니다. 수술 절차는 ...을 절개하는 과정을 포함합니다.

본 절차에서는 쥐를 이용한 외상 후 뇌전증 발생의 언더컷(undercut) 모델을 준비하는 방법을 설명합니다. 첫 번째 단계는 언더컷 수술의 정밀도와 일관성을 높여주는 간단한 장치를 제작하는 것입니다. 그런 다음 동물을 수술 준비 상태로 만들고, 뇌에 접근할 수 있도록 두개골 표면에 두개창을 절개합니다.마지막으로, undercut 장치의 바늘을 대뇌 피질의 백질에 삽입하고 회전시켜 표적 부위에 부채꼴 모양의 undercut을 생성합니다. 최종적으로, field potential recording을 통해 뇌 슬라이스에서 뇌전증성 형태의 활동이 나타나는 결과를 얻을 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 간단한 맞춤형 수술 장치를 사용하여 더욱 정밀하고 일관된 cord collision을 수행할 수 있다는 것입니다.그리고 이 동물 모델은 외상성 뇌 손상 후의 뇌전증 발생과 관련된 핵심 질문들에 답하는 데 사용될 수 있습니다. 비록 이 마우스 모델이 쥐에서 자주 사용되지만, 생쥐에게도 적용될 수 있습니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 사람들은 자유 수기(free hand)로 설치류 피질에 정밀한 병변을 만드는 것이 어렵기 때문에 어려움을 겪습니다.수술 기구는 지지판, 안내관, 그리고 끝부분 근처가 90도로 굽어 있는 바늘의 세 부분으로 구성됩니다. 3~4주령 쥐의 수술을 위한 언더컷 기구를 준비하려면, 먼저 두께 1~1.5 mm, 크기 7~10 x 30 mm의 직사각형 스테인리스 스틸 또는 투명 플라스틱 조각을 자릅니다. 지지판을 만들기 위해 25 gauge와 22 gauge 주사 바늘을 준비하고 25 gauge 바늘의 길이를 측정합니다.다음으로, 22 gauge 바늘의 플라스틱 끝부분을 자르고 바늘 표시의 전체 길이를 측정한 후, 가이드 튜브의 최종 길이가 25 gauge 주사 바늘보다 약 5~6 mm 짧아지도록 22 gauge 바늘을 절단합니다. 끝부분을 샌딩하여 평평하고 매끄럽게 만듭니다. 시아노아크릴레이트 접착제를 사용하여 가이드 튜브를 지지 플레이트에 고정하며, 이때 바늘이 지지 플레이트의 가장자리와 수직이며 고르게 배치되었는지 확인합니다.25 gauge 주사바늘을 가이드 튜브에 삽입하고 바늘 끝에서 2.5~3mm 지점을 90도로 구부립니다. 마지막으로 구부러진 끝부분과 같은 방향이 되도록 바늘의 상단 끝에 작은 구리선이나 작은 테이프 조각을 부착합니다.와이어 또는 테이프는 언더컷 수술 중 바늘의 회전

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오는 간질에 의한 쥐의 간질 발작에 대한 뇌파 (EEG) 기록을 보여줍니다. 복부 해마에 전극을 이식한 쥐를 EEG 기록 시스템에 연결하고 플렉시글라스 챔버에 넣습니다. 쥐는 발작 발생을 모니터링하기 위해 뇌 활동이 기록되는 동안 자유롭게 움직일 수 있습니다.

간질에 의한 쥐의 간질 발작에 대한 뇌파 기록

출처: Jang, S., et al, 쥐의 전기 경련 발작 및 시냅스 후 밀도 단백질의 발작 유발 변화를 조사하기 위한 해마의 분할. J. Vis. 경험. (2017년)이 비디오는 발작 유발 신경가소성을 연구하기 위해 쥐 모델에서 급성 전기 경련 발작(ECS)의 유도를 보여줍니다. 연구원들은 이어 클립 전극을 통해 전기 자극을 가하여 신경 과흥분성과 간대를 유발합니다. 이 모델은 시냅스 가소성, 발작 메커니즘 및 전기 경련 요법(ECT) 관련 치료 효과를 조사하는 데 도움이 됩니다.

쥐 모델에서 급성 전기경련 발작 유도

여기에서는 인간 질병의 신생아 설치류 모델에서 뇌파(EEG)를 위한 무선 지원 기술의 사용을 보여줍니다. 원격 측정을 사용하면 번거로운 연결이 없으므로 자연스러운 동작이 가능합니다.

신기원 무선 송신기 시스템을 사용하여 인간의 질병의 작은 설치류 모델에서 장기 연속 뇌파 모니터링

이 비디오는 비침습적 조건에서 국소 간질의 특정 전임상 모델을 사용하여 진정된 쥐에서 고해상도 EEG의 준비, 기록 및 소스 분석 절차를 소개합니다.

고해상도 뇌파 기록을 사용하여 초점 간질의 전임상 쥐 모델에서 뇌 원본 영상

이 프로토콜 pentylenetetrazole와 화학 점화 하는 방법에 설명 하 고 간 질의 마우스 모델을 제공 한다. 이 프로토콜은 또한 쥐에 있는 간 질 발작 후 발작 유도 및 병 인 취약점을 조사 하 사용할 수 있습니다.

Pentylenetetrazole 유도 점화 마우스 모델

급성 발작 모델은 epileptiform 이벤트를 기본 메커니즘을 공부 하 고 중요 합니다. 또한, epileptiform 이벤트에 수요를 생성 하는 기능에는 그들의 개시를 기본 이벤트의 정확한 순서를 공부 하 매우 효율적인 방법을 제공 한다. 여기, 우리가 마우스 및 인간의 조직에 급성 4-aminopyridine 대뇌 피 질의 발작 모델을 설명 합니다.

설치류와 인간의 조직에 급성 Ictal 활동의 생성 및 요청 시 개시

이 체계적인 프로토콜은 반복적인 가벼운 외상성 뇌 손상 후에 외상 후 간질의 새로운 동물 모델을 설명합니다. 첫 번째 부분은 수정된 체중 감소 모델을 사용하여 외상성 뇌 손상 유도 단계를 자세히 설명합니다. 두 번째 부분은 단일 및 다중 채널 뇌전도 데이터 수집 시스템에 대한 수술 접근 방식에 대한 지침을 제공합니다.

반복적 확산 외상성 뇌 손상의 마우스 모델에서 외상 후 간질 유도

여기에서, 우리는 라인 피질-해마 organotypic 조각의 준비를 설명합니다. 혈청의 점진적이고 통제된 박탈에서, 이 조각은 진화하는 간질 같이 사건을 묘사하고 간질 발생의 전 생체 권 모형으로 간주될 수 있습니다. 이 시스템은 자발적인 활동의 역학을 모니터링뿐만 아니라 간질 발생 과정을 통해 신경 염증 기능의 진행을 평가하기위한 훌륭한 도구를 나타냅니다.

라인 피질-해마 오르가노티픽 슬라이스 배양에서 간질 발생의 모델

이 보고서는 형질전환 VGAT-Cre 마우스의 전기적 점화를 기반으로 측두엽 간질 모델을 생성하는 방법을 설명합니다. 점화된 VGAT-Cre 마우스는 간질의 원인을 파악하고 새로운 치료법을 스크리닝하는 데 유용할 수 있습니다.

측두엽 간질에 대한 모델을 생성하기 위해 전기적으로 점화되는 VGAT-Cre 마우스를 위한 전극의 준비 및 이식

C57BL/6 마우스에서 Theiler's murine encephalomyelitis virus(TMEV)에 의한 뇌내 감염은 인간 환자에서 바이러스성 뇌염 및 후속 간질의 초기 및 만성 임상 증상의 많은 부분을 복제합니다. 이 논문은 TMEV 모델의 바이러스 감염, 증상 및 조직병리학에 대해 설명합니다.

Theiler's 쥐 뇌척수염 바이러스를 이용한 감염성 병인의 간질 모델

편도체는 측두엽 간질에서 중요한 역할을 하며, 이 간질은 이 구조에서 유래하고 전파됩니다. 이 기사는 기록 및 자극 기능을 모두 갖춘 심부 뇌 전극의 제조에 대한 자세한 설명을 제공합니다. 편도체에서 유래하는 내측 측두엽 간질 모델을 소개합니다.

양극성 전극을 사용하여 편도체의 전기적 점화에 의한 측두엽 간질 마우스 모델 생성

학습하세요 설치류에서 외상후 간질발생을 연구하기 위한 아래 부분을 잘라냄 모델 준비 방법을. 맞춤형 수술 기구를 사용하여 정밀하고 일관된 뇌 병변을 생성하고 전기생리학적 기록으로 간질 활동을 평가하는 이 기법은 신경과학 연구에 유용합니다.

설치류에서 외상후 Epileptogenesis의 아래 부분을 잘라냄 모델 준비

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