0 조회수 • 2:59 분 • April 30th, 2023
스페로이드는 생체 내 종양 미세 환경을 모방하고 종양 진행을 연구하는 데 도움이 되는 3차원 시험관 내 구형 세포 응집체입니다. 포매를 통해 이러한 스페로이드를 보존하려면 먼저 원하는 완충액에 스페로이드가 들어 있는 멸균 튜브를 가져갑니다.
스페로이드를 파라포름알데히드로 처리하십시오. 파라포름알데히드는 세포 단백질을 가교하여 세포 구조를 안정화하고 보존합니다. 스페로이드를 원심분리하고 파라포름알데히드 함유 상청액을 제거합니다. 스페로이드 펠릿을 버퍼에 재현탁합니다.
다음으로, 원하는 농도의 용융 아가로스 겔 용액을 준비합니다. 현미경 슬라이드에 아가로스 겔 방울을 만듭니다. 아가로스의 응고를 방지하기 위해 가열 블록에 슬라이드를 유지하십시오.
오리피스 팁이 넓은 마이크로피펫을 사용하여 튜브에서 스페로이드를 수집합니다. 현미경 슬라이드를 건드리지 않고 스페로이드를 아가로스 겔 방울의 중앙에 조심스럽게 피펫팅합니다. 그런 다음 슬라이드를 적절한 온도에서 배양하여 ECM이 응고되어 내부에 스페로이드를 가두도록 합니다.
현미경 슬라이드에서 반고체 방울을 조직 카세트로 부드럽게 옮깁니다. 추가 다운스트림 분석까지 내장된 스페로이드를 에탄올에 보관합니다.
시작하려면 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 첫날에 흄 후드에 스페로이드를 고정합니다. 둘째 날에는 아가로스 젤을 전자레인지의 물이 채워진 비커에 넣어 가열하고 필요할 때까지 섭씨 60도로 설정된 탁상용 가열판에서 젤을 따뜻하게 유지합니다.
세척당 얼음처럼 차가운 1X PBS 1밀리리터를 사용하여 흄 후드에서 스페로이드를 두 번 세척합니다. 그런 다음 대부분의 PBS를 흡인합니다. 20마이크로리터 피펫 팁을 기울어서 자르면 더 큰 구멍이 있는 더 뾰족한 팁을 얻을
수 있습니다.그런 다음 현미경 슬라이드에 아가로스 겔 방울을 만듭니다. 아가로스가 응고되는 것을 방지하기 위해 슬라이드를 따뜻한 가열 블록 위에 놓습니다. 수정된 피펫 팁을 사용하여 15-20마이크로리터의 부피에서 가능한 한 많은 스페로이드를 잡습니다.
현미경 슬라이드에 닿지 않도록 스페로이드를 아가로스 겔 방울의 중앙에 조심스럽게 주입합니다. 실온 또는 4도에서 5-10분 동안 배양하여 아가로스 겔 방울이 굳도록 합니다. 겔 방울이 다소 굳었지만 여전히 다소 부드러우면 메스를 사용하여 현미경 슬라이드에서 플라스틱 조직 카세트로 조심스럽게 밀어 넣습니다. 티슈 카세트를 에탄올로 채워진 비커에 옮기고 실온에서 보관합니다.
본 논문에서는 종양 미세환경을 모사하는 3차원 세포 응집체인 스페로이드를 임베딩하는 과정에 대해 설명합니다. 이 방법은 보존을 위해 스페로이드를 파라포름알데히드로 처리한 후, 추가 분석을 위해 아가로스 겔에 임베딩하는 과정을 포함합니다.
3D 스페로이드의 무결성을 유지하는 것은 구조적 충실도가 표적 검증 및 표현형 스크리닝 결과에 영향을 미치는 종양학 약물 발견의 신뢰할 수 있는 하위 분석에 매우 중요합니다. 이 아가로스 겔 임베딩 기술은 종양 모사 모델의 안정화를 가능하게 하여, 전임상 평가에서 기전적 리스크 감소와 예측 신뢰도를 지원합니다. 이 방법은 스페로이드 구조를 유지함으로써 발견 단계부터 리드 최적화 단계까지의 중개 연속성을 향상시킵니다.
이 기술은 스페로이드 형성 이후 및 분석 이전 단계의 발견 워크플로우에 통합되어, 안정적이고 보관 가능한 형태를 제공함으로써 생물학, 스크리닝 및 분석 팀 간의 신뢰할 수 있는 인계를 가능하게 합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026