Amphotericin-B 매개 천공 패치 클램프 분석: 방광 세포의 이온 전류를 연구하기 위한 전기생리학적 기법

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천공된 패치 클램프 기술을 사용하면 배뇨근 평활근 또는 DSM, 방광 세포와 같은 세포의 이온 채널 활동과 관련된 이온 전류를 실시간으로 측정할 수 있습니다.

시작하려면 DSM 세포 현탁액을 유리 챔버에 로드하고 세포 접착을 허용하도록 배양합니다. 다음으로, 테트라에틸암모늄과 세슘 이온을 함유한 세포외 용액을 부착된 세포에 첨가한다. 이 양이온은 세포막의 칼륨 채널을 차단하고 간섭하는 칼륨 전류를 억제합니다.

그런 다음 증폭기에 연결된 기록 전극이 포함된 얇은 속이 빈 유리관인 광택 패치 클램프 피펫을 사용합니다. 피펫을 세포내 용액으로 전면에 채우고 동일한 용액으로 다시 채우지만 막 천공 항생제인 암포테리신-B를 포함합니다.

이제 피펫 팁을 DSM 세포가 포함된 세포외 용액에 담그십시오. 전위와 전류를 적절한 수준으로 설정한 후 피펫 팁을 세포막 쪽으로 전진시키고 동시에 전극 저항을 모니터링합니다.

저항 값이 급격히 증가하면 피펫 팁이 세포막에 도달했음을 나타냅니다. 이제 전극에 부드럽게 흡입하여 피펫 팁과 원형질막 사이에 기가씰이라는 단단한 밀봉을 형성합니다.

밀봉 형성 후 암포테리신은 천천히 팁으로 확산되어 멤브레인을 천공하여 이온 기공을 형성합니다. 최적의 천공이 달성되면 이온은 셀과 전극 사이를 이동하여 이온 채널 기능에 비례하는 전류를 생성합니다.

0.25-1밀리리터의 세포 현탁액을 도립 현미경의 스테이지에 있는 유리 바닥 챔버에 피펫팅하고 세포가 부착될 수 있도록 최소 45분 동안 배양합니다. 그런 다음 수조에서 DS를 제거하고 과융융을 통해 E 용액으로 교체합니다.

여러 개의 패치 전극을 당기고 전극 팁을 불 광택 처리하고 필요한 경우 팁을 치과용 왁스로 코팅합니다. 전극을 용액에 잠깐 담그고 암포테리신-B가 없는 피펫 용액으로 패치 전극의 끝을 채웁니다. 패치 클램프 전기생리학의 성공 여부는 DSM 세포 품질과 암포테리신-B 가용화에 달려 있습니다.

암포테리신-B가 포함된 동일한 피펫 용액으로 전극을 다시 채우고 패치 클램프 증폭기 헤드 스테이지에 연결된 홀더에 전극을 장착합니다. 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 전극 끝이 잠기도록 세포외 용액의 표면 바로 아래에 전극을 배치합니다.

그런 다음 상용 획득 소프트웨어의 멤브레인 테스트 창 기능을 사용하여 전극 저항을 결정하고 전극을 관심 셀 쪽으로 전진시킵니다. 전극으로 셀 표면을 만질 때 튜브를 통해 전극에 부드럽고 빠른 음압을 가하여 기가씰을 형성합니다. 이로 인해 전극 끝에 음압이 발생하여 멤브레인 테스트에서 확인된 대로 성공적인 기가 밀봉이 발생합니다.

암포테리신-B가 피펫 아래로 확산되어 원형질막에 삽입되어 주로 1가 양이온에 선택적인 기공을 형성할 때까지 30-60분 동안 기다립니다. 멤브레인 테스트 기능으로 기가씰을 계속 모니터링합니다.

패치 천공이 최적일 때 증폭기의 셀 정전 용량 및 직렬 저항에 대한 다이얼을 조정하여 정전 용량 과도 현상을 상쇄합니다. 안정적인 전압 스텝 양이온 전류가 관찰되면 원고에 설명된 대로 라우팅 전압 스텝 프로토콜로 전류를 기록합니다.

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