Fluid Aspiration from Mouse Glomeruli: A Method to Aspirate from Mouse Glomerular Fluid Using Two-Photon Mediated Micropuncture(생쥐 사구체의 유체 흡인: 이광자 매개 미세천자를 사용하여 마우스의 사구체 유체를 흡인하는 방법)

0 views • 6:43 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

신장에서 사구체(Bowman's capsusu)에 둘러싸인 작은 혈관 다발은 혈액 여과를 시작하고 노폐액을 주변 Bowman의 공간으로 배출합니다. 사구체액 내용물을 조사하면 신장 생리학을 이해하는 데 도움이 됩니다.

사구체액을 흡인하려면 신장을 외과적으로 외부화한 마취된 마우스를 준비합니다. 이제 형광-덱스트란 염료를 마우스의 눈 궤도 뒤의 혈관에 주입합니다. 형광-덱스트란 분자는 혈류를 통해 이동하여 신장에 도달합니다.

덱스트란의 고분자량으로 인해 형광 염료는 사구체 내에 유지되어 녹색을 부여합니다. 깊숙이 자리 잡은 구조를 시각화할 수 있는 2광자 현미경에서 사구체액에 대한 적절한 접근을 얻기 위해 적합한 사구체를 찾습니다.

다음으로, 빨간색 형광 나노입자로 코팅된 마이크로피펫 팁을 신장의 측면 축에 맞춥니다. 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 피펫 팁을 전진시켜 신장을 관통합니다. 팁이 목표 사구체에 도달하면 원하는 흡인 속도를 설정하여 Bowman의 공간에서 사구체액을 흡인합니다.

빨간색 피펫 팁 내부에 녹색 형광이 없으면 출혈이 없음을 나타내며 성공적인 사구체액 흡인을 확인합니다. 그런 다음 피펫을 집어넣고 추가 분석을 위해 유체를 적절한 완충액에 보관하십시오.

발가락 꼬집기에 대한 반응 부족을 확인한 후 눈에 연고를 바르고 테이프를 사용하여 20-25g의 성체 마우스의 사지를 고정합니다. 제모 크림을 사용하여 동물의 왼쪽에 있는 털을 모두 제거하고 비장을 사용하여 비장의 등쪽과 꼬리 쪽의 피부를 통해 왼쪽 신장을 찾습니다.

피부에 0.5cm 절개를 한 다음 복막에 신장이 밀려날 수 있을 만큼 큰 작은 절개를 합니다. 부드러운 압력으로 신장을 압출하고 조직 주위에 폴리실록산 신장 안정제 형태를 놓습니다. 신장의 가장 측면 표면이 안정제를 넘어 약 1mm 확장되도록 신장을 스페이서로 정렬하고 시아노아크릴레이트 접착제로 신장을 형태에 고정합니다. 헤드 플레이트를 스태빌라이저 형태에 붙이고 헤드 플레이트를 베이스 플레이트의 장착 바에 장착합니다.

다음으로, 폴리실록산 지지체의 웰을 1% 아가로스 용액으로 채우고 아가로스가 단단해질 때까지 양식 위에 10mm 커버슬립을 잡습니다. 커버슬립을 접착제로 헤드 플레이트에 밀봉하고 치과용 시멘트로 커버슬립 주위에 링을 만듭니다. 그런 다음 100-150마이크로리터의 FITC-덱스트란을 후궤도로 주입하고 마우스와 고정판을 2광자 현미경 스테이지로 빠르게 이동합니다.

신장 표면에 수동으로 초점을 맞춘 후 비스캐닝 2광자 모드로 전환하고 이미징 창을 탐색하여 커버슬립 아래 30마이크로미터 이상, 측면 신장 캡슐에서 400마이크로미터 미만의 표적 사구체를 찾습니다. 대상 사구체까지의 측면 및 수직 거리를 기록합니다. 그런 다음 사구체의 x, y, z 단계 좌표를 기록하고 마지막으로 x, y 단계 좌표를 변경하지 않고 대물적 초점을 수주 안으로 약 1mm 들어 올립니다.

피펫 팁을 수주에 밀어 넣고 DAPI 여기를 켭니다. 피펫을 X 및 Y 치수로 팁의 최대 형광 지점으로 이동합니다. 이것이 목표의 중심이 될 것입니다. 여기 설정을 적색 형광 단백질로 변경하고 안구로 피펫을 시각화하여 안구 보기에서 정확한 중심을 잡을 수 있습니다.

다시 2광자로 전환하여 라이브 2광자 보기 아래에서 피펫을 찾고 팁을 이미지 중앙에 정확하게 배치합니다. 등록 위치입니다. 그런 다음 피펫의 이미지를 저장하고 스테이지와 마이크로피펫 컨트롤러 좌표를 등록합니다. y축과 z축을 움직이지 않고 x축의 수주에서 피펫을 제거하고 피펫 Z를 대상 사구체 Z 좌표와 신장 가장자리로 이동합니다.

스테이지 X를 기록하고 등록 스테이지 X로부터의 오프셋을 사용하여 신장 가장자리 피펫 X를 계산합니다. 스테이지 X를 증가시켜 신장 가장자리가 보이는 동안 화면 왼쪽으로 멀리 갈 때까지 스테이지를 피펫 쪽으로 이동합니다. 방금 계산한 대로 피펫을 신장 가장자리 피펫 X에서 약 100마이크로미터 떨어진 곳으로 빠르게 전진시킵니다. 빨간색 이득을 높이고 빨간색 픽셀 히스토그램을 모니터링하면서 라이브 2광자 이미징 하에서 피펫 팁을 신장 가장자리까지 천천히 전진시키기 시작합니다.

x축의 피펫을 사구체 표적 피펫 X로 천천히 구동하면서 단계 X를 주시합니다. 사구체에 도달하면 Z 스택으로 위치를 문서화합니다. 피펫을 제자리에 놓은 상태에서 마이크로펌프를 설정하여 2분에 걸쳐 100나노리터의 퍼플루오로데칼린을 주입하여 피펫의 개통성을 보장하고 진입 중 피펫 막힘으로 인한 교란을 줄입니다. 4-6분의 여과 후 마이크로펌프를 분당 최대 50나노리터의 속도로 최대 300나노리터까지 흡인하도록 설정합니다.

11:13

뮌헨의 Wistar 쥐에서 2 광자 현미경을 사용하여 형광 고분자의 사구체 투과율을 정량화

Related Videos

0 Views

08:08

세포 내 칼슘의 두 광자 이미징 2 + 고립 된 쥐 대동맥의 취급 및 내피 세포에서 산화 질소 생산과 부드러운 근육 세포

Related Videos

0 Views

09:34

살아있는 마우스에 있는 등도 해마 CA1의 세로 2 광자 화상 진찰

Related Videos

0 Views

03:35

사구체 분리: 쥐 신장에서 온전한 사구체를 얻는 기술

Related Videos

0 Views

07:07

의식 쥐의 사구체 여과율의 측정을위한 높은 처리량 방법

Related Videos

0 Views

09:52

소성을 Glioblastoma의 마우스 모델은 뇌 실질 물리적 제약 조건을 유지하고의 intravital 두 광자 현미경에 적합

Related Videos

0 Views

09:16

신장 기능 사 질병 마우스 모델에서의 평가

Related Videos

0 Views

07:37

보 먼의 공간 2 광자 현미경에 의해 촉진 생쥐에서의 Micropuncture

Related Videos

0 Views

09:12

절연 Glomeruli와 비보에 사 세포 표면 단백질의 라벨

Related Videos

0 Views

09:16

플루오레세인 이소티오차네이트-폴리수크로오스 70을 가진 마우스에서 사구체 투과성의 고감도 측정

Related Videos

0 Views

Last updated: 11 July 2026