0 조회수 • 3:05 분 • April 30th, 2023
고형 종양에 의해 방출되는 특정 화학적 유인제에 대한 반응으로 종양 관련 대식세포 또는 TAM과 같은 면역 세포가 고형 종양에 침윤합니다. 그 후, 이러한 TAM은 종양 진행을 촉진합니다.
시험관 내에서 TAM과 종양 세포 사이의 상호 작용을 연구하려면 막 삽입물이 있는 멀티웰 플레이트를 가져가는 것부터 시작하십시오. 이 배열은 일시적으로 우물을 두 개의 구획으로 분리합니다.
다음으로 트랜스웰의 상부 구획에 TAM 서스펜션을 추가합니다.
종양 세포에서 분비되는 화학적 유인제가 풍부한 조절된 배지로 트랜스웰의 하부 구획을 보충합니다.
원하는 시간 동안 플레이트를 배양합니다.
배양하는 동안 화학 조절제는 TAM을 끌어당깁니다. 이것은 화학적으로 유도된 화학주성을 통해 다공성 삽입막을 통해 TAM이 하부 구획으로 이동하게 합니다.
이제 웰에서 인서트를 제거합니다. 이주 TAM 집단을 포함하는 컨디셔닝 배지를 형광 측정에 적합한 플레이트로 옮깁니다.
형광 염료가 포함된 용해 완충액으로 세포를 처리합니다. 이 완충액은 대식세포를 용해시킵니다. 결국 염료 분자는 핵산에 결합하여 향상된 형광을 생성합니다.
마지막으로 형광 플레이트 리더를 사용하여 플레이트를 스캔합니다. 높은 형광은 화학적 유도 화학주성을 통해 대식세포가 성공적으로 이동했음을 나타냅니다.
먼저 필요한 재료를 실온으로 가져갑니다. 준비된 MV-4-11 세포 250마이크로리터를 각 인서트에 추가합니다. 다음으로, 400마이크로리터의 컨디셔닝된 배지/배지를 24웰 플레이트의 하부 챔버에만 추가하고 샘플을 세 번 추가해야 합니다.
섭씨 37도에서 5% 이산화탄소와 함께 4시간 동안 배양합니다. 그런 다음 같은 웰의 내벽에 있는 인서트를 가볍게 두드리고 인서트를 버립니다. 웰의 세포를 위아래로 세 번 부드럽게 피펫팅하여 혼합합니다.
이 세포 현탁액 225마이크로리터를 형광 측정에 적합한 검은색 벽 96웰 플레이트의 웰에 옮깁니다. 그런 다음 CyQuant 염료를 4x 용해 완충액으로 1:75의 비율로 희석합니다. 잠시 소용돌이치고 용액을 회전시킵니다.
이 용액 75마이크로리터를 96웰 플레이트의 각 웰에 옮기고 실온에서 15분 동안 배양합니다. 형광 플레이트 리더를 사용하여 형광을 읽고 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 데이터를 분석합니다.
본 연구에서는 고형암 내 종양 관련 대식세포(TAM)의 역할과 화학적 유인 물질에 반응하는 이들의 이동을 조사합니다. 실험 설정에는 in vitro에서 TAM의 행동을 관찰하기 위한 트랜스웰 시스템 사용이 포함됩니다.
본 분석법은 종양 유래 신호에 대한 대식세포 화학주성의 정량적 측정을 가능하게 하여, TAM(종양 관련 대식세포) 매개 종양 진행 메커니즘의 위험 요소를 제거함으로써 면역 항암 분야의 타겟 검증을 지원합니다. 또한 대식세포 이동 조절제 스크리닝을 위한 재현성 있는 인비트로(in vitro) 모델을 제공하여, 종양 미세환경 재프로그래밍에 집중한 리드 물질 발굴 전략 수립에 기여합니다. 형광 기반의 판독 방식은 고처리량 분석과의 호환성을 높이며, 발견 생물학 팀과 중개 연구 팀 간의 교차 기능적 데이터 정렬을 용이하게 합니다.
타겟 가설 스크리닝부터 리드 최적화 및 전임상 효능 입증에 이르기까지의 신약 개발 연속체 내에서 이 분석법의 위치를 정의하며, 특히 종양 미세환경에 영향을 미치는 면역 조절제의 연구에 적용됩니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026