Immunostaining Coupled Cell Sorting에 의한 미세아교세포 분리: 형광 활성화 세포 분류를 사용하여 제브라피시 뇌 세포에서 미세아교세포를 분리하는 면역 염색 방법

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병리학적 조건에서 활성화된 미세아교세포(특수한 뇌 대식세포)는 병원균과 세포 파편을 제거하는 데 도움이 됩니다. 이 미세아교세포는 다른 대식세포와 구별하는 고유한 수용체를 발현합니다.

미세아교세포를 분리하려면 다양한 세포 유형에서 특정 형광 분자를 발현하는 형질전환 제브라피쉬에서 추출한 뇌 세포 배양으로 시작합니다.

배양물에는 적색 형광을 발현하는 뉴런, 녹색 형광을 발현하는 대식세포 및 비형광 미세아교세포의 혼합물이 포함되어 있습니다.

이제 차단 시약을 추가하고 간헐적으로 교반하면서 배양을 배양합니다. 차단 시약은 세포의 비특이적 부위에 결합하여 배경 신호를 감소시킵니다.

다음으로 1차 항체를 추가하고 배양합니다. 이 항체는 미세아교세포 표면에 발현되는 특정 수용체에 결합합니다.

배양액을 원심분리하고 결합되지 않은 항체가 포함된 상청액을 제거합니다. 세포 펠릿을 신선한 배지에 재현탁합니다.

그 후, 형광 염료 접합 2차 항체를 첨가하고 배양합니다. 이 항체는 1차 항체에 결합하고 미세아교세포-항체 복합체에 붉은색을 부여합니다.

배양액을 원심분리하고 결합되지 않은 항체를 제거합니다. 펠릿을 신선한 배지에 재현탁합니다.

세포를 필터링하여 잔해물을 제거합니다.

형광 활성화 세포 분류기 또는 FACS를 사용하여 세포 크기와 형광에 따라 미세아교세포 집단을 분류합니다.

분리된 미세아교세포는 추가 응용 분야에 사용할 수 있습니다.

미세아교세포를 면역염색하려면 0.3밀리리터의 배지 A와 2% NGS를 사용하여 세포 펠릿을 재현탁합니다. 그런 다음 세포를 3개의 1.5밀리리터 튜브로 나눕니다: 하나는 자가형광을 측정하기 위해 염색되지 않은 세포용, 다른 하나는 미세아교세포에 대한 2차 항체의 비특이적 결합을 측정하기 위한 것, 세 번째는 테스트용입니다.

모든 튜브에 1% 저내독소, 아지드 프리(LEAF)를 첨가하여 면역글로불린의 Fc 도메인과 CD16/CD32 상호 작용을 차단합니다. 그런 다음 5분마다 부드럽게 교반하면서 세포를 10분 동안 배양합니다.

다음으로, 세 번째 튜브에 4C4 항체를 넣고 10분마다 부드럽게 교반하면서 30분 동안 배양합니다. 그런 다음 튜브를 300 x g 및 섭씨 4도에서 10분 동안 회전시킵니다.

상청액을 버린 후 튜브를 다시 회전시키기 전에 0.5밀리리터의 배지 A와 2% NGS로 펠릿을 한 번 세척합니다. 0.5밀리리터의 배지 A와 2% NGS로 세포 펠릿을 재현탁한 다음 1% LEAF를 첨가하고 5분마다 부드럽게 교반하면서 세포를 10분 동안 배양합니다.

튜브 2와 3에 2차 항체를 추가하고 튜브를 어둠 속에 놓습니다. 튜브를 회전시키고 상청액을 버린 후 0.5밀리리터의 배지 A와 2% NGS를 사용하여 샘플을 두 번 세척한 다음 1밀리리터의 배지 A와 2% NGS로 세포 펠릿을 재현탁합니다.

세포 현탁액을 35미크론 세포 스트레이너 캡을 통해 흐르고 빛으로부터 보호된 얼음 위의 차가운 5mm FACS 튜브로 옮깁니다. 마지막으로 텍스트 프로토콜에 따라 FACS 정렬 및 RNA 추출을 수행합니다.

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Last updated: 18 July 2026