순환 무세포 DNA(cfDNA)의 분리: 암 환자의 혈장에서 cfDNA를 추출하는 실리카 기반 멤브레인 절차

0 조회수4:42 • July 8th, 2025

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순환하는 무세포 DNA 또는 cfDNA는 주로 세포사멸을 겪는 암세포에 의해 방출되는 짧은 DNA 단편입니다. cfDNA는 유망한 암 바이오마커이며 혈장과 같은 체액에서 분리할 수 있습니다.

cfDNA를 분리하려면 먼저 암 환자로부터 혈장 샘플을 채취합니다. 다음으로, 프로테이나제 K, 카오트로픽 염 및 운반체 RNA를 포함하는 용해 완충액으로 혈장을 처리합니다. 카오트로픽 염은 단백질을 변성시켜 단백질에서 결합된 cfDNA를 방출합니다. 프로테이나제 K는 뉴클레아제를 비활성화하여 cfDNA 분해를 최소화합니다.

그런 다음 원하는 결합 완충액을 샘플에 추가합니다. 진공 장치에 고체상 실리카 매트릭스가 포함된 스핀 컬럼을 조립합니다. 컬럼에 샘플을 로드합니다. 진공을 적용하여 샘플을 실리카 멤브레인을 통과시킵니다.

운반체 RNA는 튜브 벽에 비특이적으로 결합합니다. 완충액에 염이 존재하는 것과 함께 이러한 비특이적 결합은 cfDNA가 실리카 멤브레인에 결합하는 것을 촉진하여 cfDNA의 회수율을 증가시킵니다. 단백질 및 기타 오염 물질은 멤브레인에 남아 있지 않습니다.

이제 스핀 컬럼을 수집 튜브에 놓습니다. 원심분리하여 잔류 용해물을 제거합니다. 적절한 세척 완충액과 원심분리기를 추가하여 컬럼에서 염분과 남아 있는 오염 물질을 제거합니다. 마지막으로 컬럼을 새로운 수집 튜브로 옮기고 적절한 용출 완충액을 추가합니다. 원심분리하여 cfDNA를 포함한 핵산을 튜브로 용리합니다.

환자 혈장 샘플에서 순환하는 무세포 DNA를 분리하려면 100마이크로리터의 프로테이나제 K와 1마이크로그램의 운반체 RNA가 보충된 800마이크로리터의 용해 완충액을 환자 혈장 1밀리리터에 첨가합니다. 섭씨 60도에서 30분 동안 배양하기 전에 용액을 30초 동안 완전히 펄스 소용돌이치게 합니다. 배양이 끝나면 1.8밀리리터의 결합 완충액을 튜브에 추가하고 15-30초의 펄스 소용돌이와 완전히 혼합합니다.

얼음 위에서 5분 동안 배양한 후 진공 펌프에 연결된 진공 장치에 실리카 멤브레인 컬럼을 삽입하고 20밀리리터 튜브 익스텐더를 개방형 컬럼에 단단히 삽입하여 샘플 누출을 방지합니다. 배양이 끝나면 혼합물을 튜브 익스텐더에 조심스럽게 붓고 진공 펌프를 켭니다. 모든 용해물이 컬럼을 완전히 통과하면 진공 펌프를 끄고 압력을 0밀리바로 해제한 다음 인접한 컬럼을 오염시키지 않고 튜브 익스텐더를 조심스럽게 폐기합니다.

심분리를 위해 컬럼을 수집 튜브로 옮겨 잔류 용해물을 제거합니다. 플로우 스루를 폐기한 후 두 번째 원심분리를 위해 600마이크로리터의 Wash Buffer-1을 컬럼에 추가합니다. 플로우 스루를 버린 후 750마이크로리터의 Wash Buffer-2로 컬럼을 다시 원심분리합니다. 플로우 스루를 폐기한 후 추가 원심분리를 위해 750마이크로리터의 96%에서 100% 에탄올을 컬럼에 첨가합니다.

브레인 컬럼 어셈블리를 섭씨 56도에서 10분 동안 새로운 2밀리리터 수집 튜브에 넣기 전에 컬럼을 새로운 2밀리리터 수집 튜브로 옮겨 또 다른 원심분리를 합니다. 배양이 끝나면 컬럼을 새로운 1.5밀리리터 용출 튜브로 옮기고 50마이크로리터의 용출 완충액을 컬럼에 추가하여 실온에서 3분 동안 배양합니다. 그런 다음 회수된 용액을 20,000 x g에서 1분 동안 원심분리하여 핵산을 용리합니다.

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마지막 업데이트: 15 8월 2026