0 조회수 • 2:52 분 • July 8th, 2025
콜로니 형성 분석은 콜로니로 성장하는 세포의 증식 능력을 측정합니다.
먼저, 중간엽 줄기 세포 또는 MSC를 포함한 적혈구 및 단핵 세포를 포함하는 골수 유래 세포 현탁액을 배양 플레이트의 배지에 종자 및 배양합니다. MSC는 플레이트 바닥에 부착되는 반면 적혈구와 단핵 세포는 현탁액으로 남아 폐기됩니다.
MSC 생존을 지원하기 위해 성장 인자를 함유한 신선한 배지를 추가합니다. 개별 증식 가능성에 따라 MSC는 복제되어 콜로니를 형성합니다.
다음으로 식민지를 메탄올로 처리합니다. 메탄올은 세포를 투과시키고, 세포 내 환경에서 물을 대체하며, 단백질을 변성시켜 세포 구조를 보존합니다.
고정된 콜로니를 Giemsa 염색 용액(주로 염기성 염료인 하늘색 B와 산성 염료인 에오신 Y의 산화 생성물의 혼합물)과 함께 배양합니다. 세포로 확산되면 양전하를 띤 하늘색 B 이량체는 삽입을 통해 핵의 음전하를 띤 DNA에 결합하여 파란색 염색을 부여합니다.
음전하를 띤 에오신 Y 단량체는 결합된 하늘색 B 이량체에서 중화되지 않은 양전하와 상호 작용하여 '에오신-Y-하늘색-B 복합체'를 형성하여 파란색으로 염색된 DNA의 색상을 보라색으로 바꿉니다.
리보솜이 풍부한 세포질에서 하늘색 B는 음전하를 띤 RNA에 결합하지만 고밀도 리보솜으로의 에오신 Y의 침투가 감소하여 에오신-Y-azure-B 복합체 형성을 방지하여 RNA를 파란색으로 염색합니다.
이제 완충액으로 플레이트를 세척하여 과도한 얼룩을 제거하고 자연 건조시킵니다. 보라색 핵과 파란색 세포질을 가진 세포 클러스터로 나타나는 콜로니의 수를 세십시오.
CFU 분석을 수행하려면 멸균수를 사용하여 원액을 1 내지 10으로 희석하여 접시당 10밀리리터의 Giemsa 용액을 준비합니다. 세포 배양 접시에서 배지를 제거하고 PBS를 사용하여 세포를 조심스럽게 세척합니다.
순수한 메탄올을 사용하여 세포를 실온에서 5분 동안 고정시킨 다음 메탄올을 버리고 Giemsa 용액을 첨가합니다. 섭씨 37도의 가습실에서 60분 동안 배양합니다. 배양 후 PBS를 사용하여 세포를 두 번 세척합니다. 그런 다음 종이 타월에 접시를 머리부터 자연 건조시킵니다. 접시 뒷면에 마커를 사용하여 수동으로 콜로니를 계산합니다.
본 논문은 골수 유래 세포, 특히 중간엽 줄기세포(MSCs)의 증식 능력을 평가하는 방법인 콜로니 형성 분석법(colony formation assay)에 대해 설명합니다. 이 과정은 세포 현탁액을 파종하고, 배양한 후, 염색 기법을 적용하여 형성된 콜로니를 시각화하는 단계로 구성됩니다.
중간엽 줄기세포(MSC)의 증식 능력을 정량적으로 평가하는 것은 세포 치료 및 재생 의학 파이프라인의 초기 단계 표적 검증과 리스크 감소에 매우 중요합니다. Giemsa 염색 콜로니 형성 분석은 MSC의 생존력과 확장 가능성을 평가하기 위한 표준화되고 재현 가능한 판독값을 제공하여, 전임상 후보 물질 선택 시 예측 신뢰도를 높여줍니다. 본 워크플로우를 통해 세포 집단 간의 강력한 비교가 가능하며, 발견 및 중개 연구 포트폴리오 전반에서 리스크가 조정된 추진 결정을 내리는 데 도움이 됩니다.
Giemsa 염색 콜로니 형성 분석법은 초기 발견과 전임상 연구의 접점에 위치하며, 리드 물질 확인 또는 중개 연구 이전에 MSC의 가설 검증 및 기능적 확인을 가능하게 합니다.
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마지막 업데이트: 22 8월 2026