0 조회수 • 4:25 분 • July 8th, 2025
대사 활성 세포에서 탄소 함유 기질은 일련의 생화학 반응을 통해 산화되어 에너지를 생성하고 부산물로 이산화탄소를 방출합니다.
기질 산화 속도를 결정하려면 원하는 미분화 세포의 부착 배양으로 시작합니다. 배지의 세포에 백본에 방사성 탄소 14를 포함하는 적절한 기질을 보충하고 배양합니다.
세포는 기질을 소비하고 산화시켜 방사성 표지된 이산화탄소를 방출하며, 이는 세포에서 주변 매체로 확산됩니다.
이 매질을 과염소산이 포함된 가스 포획 어셈블리로 옮겨 반응을 담금질합니다. 이 튜브에는 튜브 캡 내부에 장착된 수산화나트륨에 적신 여과지가 포함되어 있습니다. 캡을 닫고 배양합니다.
배양하는 동안 기체 형태의 이산화탄소는 튜브 내부에서 방출됩니다. 수산화나트륨은 방사성 표지된 이산화탄소를 흡수하여 여과지에 가둡니다. 이 여과지를 섬광 칵테일이 들어 있는 바이알에 옮기고 액체 섬광 카운터 안에 놓습니다.
카운터 내부에서 방사성 표지된 탄소는 방사성 붕괴를 겪으며 고에너지 베타 입자를 방출합니다. 이 입자는 섬광 칵테일의 구성 요소에 흡수되어 섬광 카운터에 의해 계산되는 빛 펄스를 방출합니다.
검출된 방사능의 양은 세포의 기질 산화 속도와 상관관계가 있습니다.
여분의 웰에서 세포를 DPBS로 두 번 세척합니다. 0.25% 트립신-EDTA로 세포를 해리시킵니다. 20마이크로리터의 아크리딘 오렌지 및 요오드화 프로피듐 염료 용액과 함께 DPBS에 20마이크로리터의 소화된 세포를 재현탁합니다. 자동 세포 계수기로 살아있는 세포의 수를 결정하고 그 수를 기록합니다.
분석 웰의 세포를 DPBS로 두 번 세척합니다. RAM 지정 조직 배양 후드의 각 분석 웰에 500마이크로리터의 뜨거운 배지를 추가합니다. 플레이트를 파라필름으로 밀봉한 후, 세포를 섭씨 37도의 RAM 지정 인큐베이터에서 4시간 동안 배양합니다.
배양하는 동안 여과지를 1.5밀리리터 미세 원심분리기 튜브의 캡 내부 영역보다 약간 큰 원형 조각으로 자르고 종이를 캡에 꼭 맞게 삽입합니다. 각 튜브에 200마이크로리터의 1몰 과염소산을 넣고 캡 내부에 장착된 여과지에 20마이크로리터의 수산화나트륨을 추가합니다.
세포를 배양한 후, 각 웰에서 준비된 튜브로 400마이크로리터의 배양 배지를 옮기고 즉시 캡을 닫습니다. 튜브를 튜브 랙에 실온에서 1시간 동안 그대로 둡니다.
동시에 배양하는 동안 각 튜브에 대해 섬광 바이알을 설정하고 4밀리리터의 섬광 유체로 채웁니다. 각 여과지를 섬광 바이알에 옮기고 실온에서 30분 동안 배양합니다.
조직 배양 후드, 수조, 냉장고, 인큐베이터, 싱크대, 지면 및 기타 작업 영역에서 잠재적인 RAM 오염에 대한 와이프 테스트를 수행합니다. 종이 물티슈를 섬광액이 들어 있는 섬광 바이알에 넣습니다.
섬광 카운터로 섬광 바이알의 탄소-14 방사능을 측정하고 판독 결과를 기록합니다. 필요한 경우 방사선 안전 지침에 따라 작업 환경의 오염을 제거하십시오.
이 논문은 방사성 표지 탄소-14를 사용하여 대사적으로 활성 상태인 세포에서 기질 산화 속도를 측정하는 방법을 설명합니다. 이 과정은 세포를 방사성 기질과 함께 배양하고, 그 결과로 생성되는 이산화탄소의 양을 정량화하는 과정을 포함합니다.
기질 산화량을 정량화하면 세포 대사 플럭스를 직접적으로 읽어낼 수 있어, 에너지 항상성 경로 내의 타겟 검증이 가능해집니다. 이 분석법은 질환 관련 시스템에서 기질 활용과 병태생리학적 상태를 연결함으로써 기전적 리스크 감소를 지원합니다. 방사성 표지 CO2 포집법은 정량적이고 재현 가능한 데이터를 제공하여 초기 발견 단계에서의 예측 신뢰도를 높여줍니다.
본 분석법은 타겟 가설 검증부터 리드 최적화에 이르는 발굴 연속 과정에 부합하며, 화합물이 세포 에너지 경로에 미치는 영향에 대한 정보를 제공하는 대사 표현형 데이터를 제공합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026