Planar Supported Lipid Bilayer Assay: 생물학적 막 모방체에 대한 셉틴 어셈블리를 조사하기 위한 현미경 기반 체외 기술

0 조회수4:10 • July 8th, 2025

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셉틴은 말단 아미노 및 카르복실 도메인 옆에 있는 GTP 결합 도메인을 포함하는 세포골격 단백질로, 다양한 세포 기능을 위해 내부 원형질막에서 필라멘트 및 고차 구조로 자가 조립하는 고유한 능력을 가지고 있습니다.

생물학적 멤브레인 모방을 사용하여 시험관 내에서 셉틴-멤브레인 상호 작용을 연구하려면 절단된 미세 원심분리기 튜브를 얻으십시오. 절단되지 않은 평평한 테두리 위에 자외선 접착제를 바르고 플라즈마 처리된 친수성 유리 커버슬립 위에 놓습니다. 자외선에 노출되면 접착제가 경화되어 개방형 반응 챔버가 생성됩니다.

1가 및 2가 양이온 함유 완충액이 보충된 원하는 지질 조성의 단분산 쌍성이온 단층 지질 소포를 챔버로 옮깁니다. 양이온은 지질 소포가 커버슬립에 흡착되어 축적되는 것을 촉진합니다. 챔버를 부드럽게 흔들어 소포 파열을 시작하고 배양합니다.

파열

된 소포는 친수성 헤드 그룹을 통해 펼쳐지고 커버슬립에 융합되어 평면 지질 이중층 패치를 형성합니다. 패치의 가장자리는 나머지 소포가 파열되도록 촉발하여 연속적인 평면 지지 지질 이중층인 SLB를 생성합니다. 적절한 완충액으로 과도한 흡착되지 않은 소포를 제거합니다.

다음으로, 형광 표지된 셉틴 현탁액을 크라우딩 에이전트 함유 완충액과 함께 첨가하고 배양합니다. 크라우딩 에이전트를 사용하면 셉틴이 SLB 코팅 커버슬립에 증착될 수 있습니다. 최적의 조건에서 셉틴은 SLB의 지질과 결합하여 조직화된 구조로 조립될 수 있습니다.

전반사 형광 현미경을 사용하여 커버슬립을 선택적으로 조명하여 SLB에 부착된 형광 표지 셉틴을 여기시켜 셉틴 어셈블리를 관찰합니다.

슬라이드의 플라즈마 세척을 시작하려면 플라즈마 클리너를 산소로 5분 동안 퍼지하여 라인과 챔버에서 공기를 제거합니다. 마른 커버 유리 슬라이드를 세라믹 크래들에 배치합니다. 퍼지하는 동안 마이크로 커버 유리 슬라이드 위에 불활성 가스를 공급하여 먼지와 미립자를 제거합니다.

커버슬립이 챔버의 긴 가장자리와 평행이 되도록 플라즈마 챔버 뒤쪽에 크래들을 놓습니다. 최대 전력으로 산소를 공급한 상태에서 플라즈마 클리너를 15분 동안 가동합니다.

챔버 준비를 위해 0.2밀리리터 PCR 튜브의 반투명 부분 바로 아래에서 캡을 잘라냅니다. PCR 튜브의 가장자리를 UV 활성화 접착제로 칠하고 튜브 내부를 피합니다. 플라즈마로 세척된 커버슬립의 중앙에 접착된 PCR 튜브를 부드럽게 놓은 다음 챔버를 장파장 UV 광선 아래에 5-7분 동안 놓아 접착제를 경화시킵니다.

이중층을 형성하려면 시약을 웰에 추가합니다. 챔버를 좌우로 부드럽게 흔들어 SUV를 방해한 다음 섭씨 37도에서 20분 동안 배양합니다.

배양 후, 과도한 지질을 씻어내기 위해 피펫팅하여 150마이크로리터의 SLBB로 이중층을 6회 헹굽니다. 그런 다음 셉틴과 함께 배양하기 전에 150마이크로리터의 반응 완충액으로 이중층을 6회 세척합니다.

마지막 세척 단계에서 반응 완충액을 제거하고 웰에 75마이크로리터를 남깁니다. SSB에 희석된 25마이크로리터의 셉틴을 추가하고 TIRF 현미경으로 이미지를 촬영합니다.

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마지막 업데이트: 1 8월 2026