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키메라 발암성 융합 단백질은 전사 인자 단백질의 DNA 결합 도메인인 DBD와 융합된 RNA 결합 단백질의 N-말단 저복합성 도메인(LCD)을 포함합니다. 이 단백질은 RNA 중합효소-II를 모집하고 발암을 유도하는 단백질 응축물을 형성합니다.
단일 분자 이미징으로 단백질 응축물의 조립을 시각화하려면 입구 및 출구 주입 포트가 장착된 용융 실리카 유리 슬라이드인 DNA 플로우 셀로 시작합니다. 플로우 셀의 표면은 표면을 보호하기 위해 비오티닐화 지질 이중층으로 코팅되고 지그재그 장벽으로 제작됩니다.
미세유체 시스템에 연결합니다. 지질층에 고결합 친화성 리간드인 비오틴에 결합하는 스트렙타비딘 용액을 도입합니다. 융합 단백질 결합 서열의 여러 반복을 포함하는 비오틴 태그 이중 가닥 람다 DNA를 주입합니다. 지질 이중층의 스트렙타비딘은 DNA의 비오틴에 결합하고 람다 DNA를 이중층에 부착합니다.
적절한 완충액으로 세척하십시오. 흐름의 유체역학적 힘은 고정된 DNA 분자를 곧게 펴서 장벽 위에 DNA 커튼처럼 매달릴 수 있도록 합니다.
플로우 셀을 형광 현미경 아래에 놓습니다. DNA 결합 녹색 형광단 용액을 주입합니다. 다음으로, LCD 도메인을 통해 단백질 결합 자홍색 형광단에 태그된 융합 단백질 용액을 주입하고 배양합니다.
태그가 지정된 융합 단백질은 람다 DNA의 표적 서열에 결합하여 DNA 길이를 따라 응축물을 형성합니다. 여기되면 DNA 결합 및 단백질 결합 형광단이 형광을 발합니다.
융합 단백질 응축물은 녹색 형광 표지된 이중 가닥 DNA에서 자홍색 점점으로 나타납니다.
DNA 커튼에서 EWS-FLI1 응축 형성을 이미지화하려면 이미징 소프트웨어를 열고 명시야 아래에서 9개의 지그재그 패턴의 위치를 찾아 표시합니다. 그런 다음 분당 0.2밀리리터의 흐름을 켜서 이중 가닥 DNA 염료로 DNA를 10분 동안 염색합니다.
다음으로, mCherry-EWS-FLI1 단백질을 이미징 완충액으로 100나노몰 및 100마이크로리터의 농도로 희석합니다. 그런 다음 100마이크로리터 유리 주사기를 사용하여 밸브를 통해 단백질 샘플을 로드하고 유속을 분당 0.4밀리리터로 변경합니다.
488나노미터 레이저를 켠 후 각 영역을 사전 스캔하여 DNA 분포 상태를 확인하고 DNA 분자가 고르게 분포하는 영역을 선택합니다. 그런 다음 레이저 출력을 488나노미터 레이저의 경우 10%, 561나노미터 레이저의 경우 20%로 설정하고 파워미터를 사용하여 프리즘 근처의 실제 레이저 출력을 측정합니다.
488 및 561 나노미터 레이저를 동시에 사용하여 2초 간격으로 이미지 획득을 시작합니다. 그런 다음 밸브를 수동 모드에서 주입 모드로 변경하여 이미징 버퍼가 60초 후에 단백질 샘플을 플로우 셀로 플러시하도록 합니다.
유리 EWS-FLI1을 제거하려면 561나노미터 레이저만 켠 상태에서 이미징 버퍼로 플로우 셀을 5분 동안 계속 세척합니다. 그런 다음 흐름을 멈추고 섭씨 37도에서 10분 동안 배양합니다.
10분 후 분당 0.4밀리리터의 흐름을 켜서 DNA가 확장되도록 하고 서로 다른 프레임 사이에 2초 간격으로 이미지를 획득하여 EWS-FLI1 응축수 형성의 고처리량 데이터를 얻습니다.