0 조회수 • 3:04 분 • July 8th, 2025
헬리코박터 파일로리 감염 모델을 확립하려면 마취된 병원균이 없는 마우스로 시작하십시오. 시술 중 움직임을 최소화하기 위해 마우스를 단단히 고정하십시오.
박테리아 현탁액으로 채워진 주사기를 가져 가십시오. 폴리에틸렌 카테터를 주사기의 바늘에 연결하여 위내 위관법(현탁액을 위장으로 직접 전달하는 기술)
을 수행합니다.열린 입 중앙에 카테터를 삽입하여 입과 위를 연결하는 근육관인 식도에 접근합니다. 카테터가 위에 도달할 때까지 식도를 통해 부드럽게 안내하고 박테리아 현탁액을 산성 환경으로 직접 전달합니다.
접종된 박테리아는 요소를 암모니아와 이산화탄소로 전환하는 효소인 우레아제를 분비합니다. 암모니아는 위의 pH를 높여 산도를 중화시키고 박테리아가 생존할 수 있도록 합니다.
이 박테리아는 편모를 활용하여 보호 점액층을 통과하여 위 상피에 도달하여 접착 단백질을 사용하여 세포에 부착할 수 있도록 합니다. 부착 시 이 박테리아는 상피 세포 사이의 긴밀한 접합을 방해하는 독성 인자를 방출합니다.
이러한 구조적 파괴는 더 깊은 조직에서 박테리아 침입과 집락화를 촉진하여 궁극적으로 위장에 통제된 감염을 확립합니다.
박테리아 현탁액을 15밀리리터 폴리스티렌 튜브에 첨가하고 플라스틱 루프를 사용하여 각 배양액에서 10-20마이크로리터 물방울 1개를 개별 유리 현미경 슬라이드로 옮깁니다. 그런 다음 100배 배율의 위상차 현미경 검사에서 박테리아의 생존력과 운동성을 평가합니다.
대부분의 박테리아가 세균 모양을 가진 경우에만 H. pylori 접종을 사용하십시오. H. felis 접종은 주로 나선형 모양의 박테리아를 포함해야 하며 접종물을 개별 일회용 1밀리리터 주사기에 넣어야 합니다. 각 주사기에 23게이지 바늘을 장착하고 플라스틱 파라핀 필름을 사용하여 일회용 폴리에틸렌 카테터를 각 바늘에 부착합니다.
다음으로, 6주에서 8주 된 특정 병원균이 없고 헬리코박터가 없는 마우스의 목덜미와 꼬리를 수동으로 구속하고 열린 턱의 중앙에 카테터 하나를 삽입합니다. 카테터의 대부분 또는 전부가 더 이상 보이지 않고 저항이 느껴질 때까지 식도를 통해 기관에서 멀어지도록 마우스의 목을 확장하여 카테터를 식도를 향해 꼬리 방향으로 안내합니다. 그런 다음 질병 병리학에서 최적의 집락화를 보장하기 위해 최소 1 x 105개의 박테리아를 전달합니다.
본 논문은 마우스에서의 Helicobacter pylori 감염 모델 구축 방법을 설명합니다. 이 절차는 박테리아 현탁액을 위장으로 직접 투여하는 경구 투여법(intragastric gavage)을 포함하며, 이를 통해 박테리아의 군집 형성 및 위 조직에 미치는 영향을 연구할 수 있습니다.
마우스의 Helicobacter 감염을 위한 제어된 위내 강제 투여(intragastric gavage)는 숙주-병원체 상호작용의 정밀한 모델링을 가능하게 하여, 위장관 질환 연구에서 초기 단계의 타겟 검증 및 기전적 위험 제거(mechanistic de-risking)를 지원합니다. 이 접근 방식은 재현 가능한 감염 파라미터를 제공함으로써 전임상 연구의 예측 신뢰도를 높이고, 항감염 및 면역 조절 프로그램의 포트폴리오 결정에 유용한 정보를 제공합니다.
이 위내 감염 모델은 초기 발견 단계와 전임상 연구를 연결하여, 리드 물질의 식별 및 검증을 위한 가설 기반 연구와 정량적 결과 도출을 가능하게 합니다.
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마지막 업데이트: 22 8월 2026