Mycobacterium tuberculosis Infected Macrophage Subpopulations의 유세포 분석 염색

0 조회수3:18 • July 8th, 2025

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특정 표면 마커로 구별되는 부착 M1 및 M2 대식세포 하위 집단으로 시작합니다. 이 세포는 형광 표지 결핵균에 감염됩니다.

배양 웰에 FACS 완충액을 추가합니다.

완충액의 EDTA는 배양 웰에서 세포를 분리할 수 있게 합니다.

세포 현탁액을 미세 원심분리기 튜브로 옮깁니다.

튜브를 원심분리합니다. 상청액을 버리십시오. 형광색소 접합 항대식세포 항체 칵테일 및 생존율 염료인 Zombie-UV에 세포를 재현탁합니다.

좀비-UV 형광 염료는 손상된 막을 통해 죽은 세포에 들어가 세포질 단백질에 결합하여 생존 가능한 염색되지 않은 세포와 명확하게 분화할 수 있습니다.

또한, 형광 접합 항대식세포 항체는 대식세포의 표적 항원에 결합하여 하위 집단의 차등 검출을 가능하게 합니다.

결합되지 않은 항체를 제거하기 위해 세포를 세척합니다. 원심 분리기. 상청액을 제거합니다.

세포를 고정 완충액에 재현탁하여 단백질을 가교하고 세포 형태를 보존하며 분석 중 안전한 취급을 위해 마이코박테리아를 비활성화합니다.

마지막으로, 유세포 분석을 위해 샘플을 원심분리하고 처리합니다.

적절한 게이팅 전략을 사용하여 마이코박테리움에 감염된 하위 집단의 백분율을 결정합니다.

유세포 분석을 위해 세포를 염색하려면 감염된 세포를 웰당 0.5밀리몰 EDTA가 보충된 1밀리리터의 FACS 완충액과 함께 최소 30분 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 부드러운 피펫팅으로 분리된 세포를 수집하고 원심분리를 위해 세포를 나사 캡이 있는 개별 미세 원심분리기 튜브로 옮깁니다.

약 50마이크로리터의 형광색소 접합 항인간 항체 칵테일 및 관심 생존율 염료에 세포를 재현탁하고 빛으로부터 보호된 섭씨 4도에서 세포를 30분 동안 배양합니다.

세척 후, 빛으로부터 보호된 실온에서 30분 동안 200마이크로리터의 새로 준비된 고정 완충액으로 세포를 고정합니다. 고정 및 세척 후, 세포를 400마이크로리터의 FACS 완충액에 재현탁하고 세포를 1밀리리터 미세원심분리기 튜브로 옮깁니다.

세포를 분석하려면 보상 비드를 사용하여 칵테일의 각 형광색소 접합 항체에 대한 형광 신호를 보상하고 염색되지 않은 세포를 사용하여 음성 세포 집단에 대한 게이트를 설정합니다. 그런 다음 샘플당 최소 50,000개의 세포를 획득합니다.

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마지막 업데이트: 1 8월 2026