칼슘-플럭스 분석법을 사용한 항원 리포좀을 사용한 B 세포 활성화 모니터링

0 조회수3:54 • July 8th, 2025

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적혈구가 고갈된 비장세포를 세포 투과성 칼슘 민감성 형광 염료인 Indo-1 AM이 들어 있는 완충액에 담아 복용합니다.

세포내 에스테라아제는 Indo-1 AM을 칼슘 이온에 결합하는 막 불투과성 Indo-1로 절단하여 Indo-1의 형광 신호를 파란색에서 보라색으로 변경합니다.

세포의 각 항원에 특이적으로 결합하는 형광단 접합 항원 특이적 항체를 도입합니다.

유세포 분석을 사용하여 형광단 표지 B 세포를 식별하고 Indo-1 보라색 대 청색 형광 비율을 측정합니다.

이제 리포솜 이중층에 접합된 IgM Fab 단편을 포함하는 항원 리포좀으로 세포를 처리합니다.

B 세포 수용체는 리포솜 결합 항원에 결합하여 관련 세포질 티로신 키나아제를 활성화하고 포스포리파아제-C 감마-2 활성화를 유발합니다.

활성화된 포스포리파제-C는 막 인지질인 포스파티딜이노시톨 4,5-비스포스페이트를 절단하여 이노시톨 1,4,5-트리스포스페이트 또는 IP3를 포함한 두 번째 메신저를 생성합니다.

IP3는 소포체의 IP3 개폐 칼슘 채널에 결합하여 칼슘 이온을 세포질로 방출합니다.

이 칼슘 이온은 결합되지 않은 Indo-1 분자와 결합하여 보라색 형광을 증가시킵니다.

표지된 B 세포에서 더 높은 Indo-1 보라색 대 청색 형광 비율은 항원 리포좀에 의한 성공적인 활성화를 확인합니다.

항원 리포솜 활성화에 대한 B 세포 반응을 모니터링하려면 1.5 x 107 비장세포를 칼슘 플럭스 로딩 완충액에 재현탁하고 1.5 마이크로몰 Indo-1을 세포에 첨가하여 튜브의 용액을 여러 번 반전시켜 혼합합니다. 빛으로부터 보호된 섭씨 37도에서 30분 동안 수조 배양 후, 칼슘 플럭스 로딩 완충액의 5배를 첨가하고 Indo-1 표지 세포를 원심분리합니다.

B 세포 게이팅의 경우, 항-CD5 및 항-B220 항체를 0.5밀리리터의 로딩 완충액에 섭씨 4도에서 빛으로부터 보호한 20분 동안 염색합니다. 배양이 끝나면 신선한 칼슘 플럭스 로딩 완충액으로 세포를 세척하고 분석할 때까지 빛으로부터 보호된 얼음 위에 저장하기 위해 신선한 칼슘 플럭스 러닝 완충액 밀리리터당 1 내지 2 x 107 세포로 펠릿을 재현탁합니다.

다음으로, 뚜껑이 있는 5밀리리터 둥근 바닥 폴리스티렌 튜브에 0.5밀리리터의 세포를 넣고 수조에서 세포를 섭씨 37도로 데웁니다. 3-5분 후, 튜브를 재순환 수조에 연결된 섭씨 37도의 워터 재킷 챔버로 옮기고 유세포 분석기의 워터 재킷에 튜브를 실행합니다.

초당 5,000 내지 10,000개의 이벤트를 수집한 후, 셀이 15 내지 30초 동안 안정화되도록 한 다음, 데이터 수집을 다시 시작하고, 백그라운드 판독값을 설정하기 위해 최소 10초 동안 데이터를 수집한다. 10초 표시에서 유세포 분석기에서 튜브를 빠르게 제거하고 적절한 실험 농도의 항원 리포좀을 추가합니다. 그런 다음 세포를 펄스 소용돌이치고 세포 분석기에서 튜브를 추가로 3-5분 동안 읽습니다.

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