Live-Cell Imaging을 통한 면역학적 Synapse 토폴로지 평가

0 조회수5:03 • July 8th, 2025

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질감염된 초항원 처리된 인간 내피 세포를 포함하는 완충액이 있는 현미경 접시를 가져와 초항원이 클래스 II MHC 분자에 복합화

되어 있습니다.

이러한 인공 항원 제시 세포는 막과 세포질에서 서로 다른 형광 단백질을 공동 발현합니다.

다음으로, T 세포 수용체를 통해 내피 세포의 초항원과 상호 작용하여 안정적인 세포-세포 접합부인 면역학적 시냅스를 형성하는 T 림프구를 도입합니다.

이는 T 림프구 세포골격 재배열을 유발하여 세포 확산 및 액틴 확장을 시작하여 액틴, 접착 및 신호 전달 분자가 풍부한 인바도좀 유사 돌출부 또는 ILP를 형성합니다.

접착 분자는 내피 세포의 특정 수용체에 결합하여 상호 작용을 강화합니다.

시냅스 형성은 T 림프구 신호 전달 경로를 활성화하여 세포내 칼슘 수치를 높이고 ILP를 안정화합니다.

ILP는 내피 세포에서 국소적인 막 굽힘을 유도하여 일시적인 표면 고리를 형성합니다.

형광 현미경에서 ILP 주위에 서로 다른 형광 막 링과 함께 국소화된 내피 세포에서 형광 세포질 변위의 어두운 원형 영역을 포함하는 시냅스 토폴로지를 분석하여 면역학적 시냅스 형성을 확인합니다.

세포를 생사로 촬영하려면 현미경 시스템을 켜고 적절한 이미지 캡처 소프트웨어를 엽니다. 자동화된 다중 채널 타임랩스 이미징에 적합한 매개변수와 10초에서 30초의 획득 간격과 약 20-60분의 총 지속 시간을 설정합니다.

다음으로 대물렌즈에 신선한 오일을 추가합니다. 0.5밀리리터의 버퍼 A가 들어 있는 현미경 접시를 가열 스테이지에 장착tage 어댑터를 즉시 켜고 이전에 섭씨 37도로 설정된 어댑터를 켭니다. 2-3분 동안 평형을 유지한 후 20마이크로리터 피펫을 사용하여 휴지 중인 Fura-2 로딩 림프구를 장착된 현미경 접시 챔버에 추가하고 명시야 이미징을 켭니다.

접안렌즈에 대한 광 경로를 선택하고 거친 초점 손잡이를 사용하여 대물렌즈를 현미경 접시 바닥에 접촉시킵니다. 그런 다음 접안렌즈와 미세 초점 손잡이를 사용하여 접시 바닥에 정착된 T 세포를 찾고 XY 스테이지 컨트롤을 사용하여 최소 10개의 세포가 포함된 필드를 선택합니다.

적절한 셀이 배치되면 명시야에서 형광등으로, 접안렌즈 이미징에서 CCD 카메라로 전환합니다. 획득 매개변수를 최적화한 다음 휴식 중인 Fura2-340 및 Fura2-380 이미지를 획득합니다.

성공적인 결과를 생성하기 위한 핵심 단계 중 하나는 형광 획득 매개변수를 신중하게 최적화하여 충분한 신호가 수집되고 Fura-2의 경우 기준선 340/380 비율이 1에 가까워지도록 하는 것입니다.

Fura-2 노출 시간이 설정되면 T 세포 접시를 내피 세포의 현미경 접시로 교체합니다. 일회용 이송 피펫을 사용하여 배지를 빠르게 제거하고 예열된 완충액 A 1밀리리터로 세포를 한 번 헹구고 세척액을 신선한 완충액 A 0.5밀리리터로 교체합니다.

물렌즈를 사용하여 밝은 형광 내피 세포가 건강하게 보이는 필드를 식별한 다음 Fura-2에 대해 방금 시연한 것처럼 membrane-YFP 및 DsRed에 대한 획득 매개변수를 조정하여 각 채널의 평균 형광 신호 강도가 검출기 동적 범위의 25%에서 75% 사이에 떨어지도록 주의합니다.

살아있는 세포 이미징 실험을 수행하기 전에 내피 세포만의 여러 간격의 이미지를 캡처하여 자동화된 소프트웨어로 기준선을 설정합니다. 그런 다음 소용량 피펫의 끝을 대물렌즈 중앙에 가까운 배지에 삽입하고 5마이크로리터의 농축된 Fura-2 로드 림프구를 현미경 접시 이미징 필드의 중앙에 천천히 분배합니다.

림프구가 침전되면 T 세포/내피 세포 인터페이스가 초점면에 유지되도록 초점을 미세 조정합니다. 40x 및 63x 대물렌즈의 경우 필드당 10-20개의 셀이 최적입니다.

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마지막 업데이트: 15 8월 2026