말초 혈액 단핵 세포에서 면역 세포 subset을 식별하기 위한 유세포 분석 분석

0 조회수4:57 • July 8th, 2025

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림프구와 단핵구를 포함하는 혼합 세포 집단인 말초 혈액 단핵 세포 또는 PBMC를 섭취하십시오.

죽은 세포를 구별하기 위해 형광 생존 염료를 추가하고, 다양한 세포 유형을 식별하기 위해 형광 표지 항체 칵테일을 추가합니다.

형광색소 A-접합 항체는 표면 마커(T 세포의 CD3, γδ T 세포의 γδ T 세포 수용체 또는 TCR, 자연 살해 또는 NK 세포의 CD56)에 결합합니다.

형광색소 B-접합 항체는 T 세포의 CD4 및 CD8, B 세포의 CD19 및 단핵구의 CD14에 결합합니다.

유세포 분석을 사용하여 살아있는 세포 하위 집합을 식별합니다.

CD8+ 및 CD4+ T 세포는 CD3+인 반면, CD4+ 세포는 CD3 단일 양성 세포와 CD3-CD8 이중 양성 세포 사이에 있습니다.

γδ T 세포는 CD4+ 및 CD8+ 세포에 비해 γδ TCR 및 더 높은 CD3를 발현합니다.

B 세포와 NK 세포는 CD3-이지만 B 세포의 CD19와 NK 세포의 CD56으로 식별됩니다.

단핵구는 CD14 발현에 의해 식별됩니다.

염색을 위해 PBMC를 준비하려면 각 샘플의 100마이크로리터를 96웰 V-바닥 플레이트로 옮깁니다. 플레이트를 실온에서 3분 동안 350배 g으로 원심분리합니다. 세포 펠릿을 방해하지 않고 조심스럽게 상청액을 흡인합니다. 각 웰에 단백질에서 유리 아민과 반응하는 살아있는/죽은 고정 가능한 염료를 포함하는 PBS 100마이크로리터를 추가하고 PBMC 혼합물을 조심스럽게 재현탁합니다.

그런 다음 죽은 세포를 라벨링하기 위해 플레이트를 실온에서 10분 동안 그대로 둡니다. 각 샘플에 대해 7개의 항체를 모두 포함하는 혼합물 30마이크로리터를 준비합니다. 이 단계에서 다른 표적 분자 및 다른 형광색소에 대한 적정 항체도 추가될 수 있습니다. 96웰 플레이트를 실온에서 3분 동안 350배 g으로 원심분리하고 세포 펠릿을 방해하지 않고 상청액을 조심스럽게 흡인합니다.

항체 칵테일을 각 웰에 넣고 거품을 발생시키지 않고 조심스럽게 재현탁합니다. 어두운 곳에서 실온에서 30분 동안 배양합니다. 30분 후, 각 웰에 150마이크로리터의 염색 완충액을 첨가하고 플레이트를 실온에서 3분 동안 350배 g으로 원심분리합니다. 세포 펠릿을 방해하지 않고 조심스럽게 상청액을 흡인하고 세포를 200마이크로리터의 PBS에 재현탁합니다. 이제 세포는 유세포 분석을 위한 준비가 되었습니다.

이 2-형광색소, 7-마커 게이팅 전략을 시작하려면 림프구 게이트를 선택하고 각 축에서 이 프로토콜에 사용된 두 개의 형광색소 중 하나를 사용하여 도트 플롯을 생성합니다. CD8 양성 T 세포의 게이트는 도트 플롯의 오른쪽 상단 모서리에서 CD3 및 CD8 이중 양성 세포로 식별됩니다. NK T 세포를 포함할 수 있는 희미한 CD8 집단을 제외합니다. CD4 양성 T 세포의 게이트는 CD8 양성 T 세포와 CD3 단일 양성 집단 사이의 집단으로 식별됩니다.

높은 CD3 세포로 확인된 감마-델타 T 세포의 게이트. 감마-델타 T 세포를 CD8 양성 및 CD8 음성으로 세분화합니다. CD3 양성 세포와 CD3 음성 세포 사이의 집단으로 식별되는 NK 세포의 게이트. NK 세포를 B 세포의 CD8 양성 및 CD8 음성 게이트로 세분화하며, 도트 플롯의 오른쪽 하단 모서리에서 CD3 음성, CD19 양성 집단으로 식별됩니다.

단핵구 게이트를 선택하고 각 축에서 이 프로토콜에 사용되는 두 개의 형광색소 중 하나를 사용하여 도트 플롯을 생성합니다. CD3 음성, CD14 양성 집단의 게이트.

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마지막 업데이트: 15 8월 2026