Name: 마우스에서 유도된 기계 Allodynia의 겪었던 신경 상해 (스니) 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: 학습하세요 마우스에서 SNI 모델을 이용한 말초 신경병증성 통증 연구 방법을. 좌골 신경의 두 가지 분지를 절단하고 수랄 신경을 보존한 후 폰 프레이 필라멘트로 기계적 통각과민을 정량화하여 통증 역치 변화를 측정합니다.

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이 작품은 Lundbeck 재단, 칼스버그 재단과 다그마 마샬 재단에 의해 지원되었다.

1. 이전 수술 폰 프라이베이스 라인 측정 폰 프라이 테스트 절차, 5 항을 참조하십시오. 2. 마취 / 준비 <ol><li> 동물 (케타민을 15 MG / kg Xylazine을 100mg/kg의 혼합물의 intraperitoneal 주사를) 마취. </li><li> (예 : 종이 타월로 덮여있) 완전히 anesthetized 때까지 조용한 장소에서 동물을 놓으십시오. </li><li> 핀셋 한 쌍의와 꼬리의 끝에와 발 곤란하여 반사를 확인합니다. 동물이 계속 진행하기 전에 응답하고 있는지 확인한다. </li><li> Subcutaneously, 항생제와 (과 다시 어깨 지역) 예 : 암피실린를 (이것은 가벼운 수술이지만, 탈수를 방지하고 감염을 방지하기 위해) 0.5ml isotonic 호수 주입. </li><li> 전기 면도기 사용 (오른손잡이 인 왼쪽 뒷다리가 권장) 약간 허리 영역으로 무릎 영역 아래에서 수술 필드를 면도. </li><li> 목화 - 울 버드와 눈 안과 연고를 적용합니다. </li><li> 그 오른쪽에있는 동물을 놓고 그것이 높은 유지하는 작은 플랫폼에서 왼쪽 hindlimb를 놓습니다. 접착제 테이프로 다리를 고정합니다. </li><li> 외과 사이트 밖에서 에탄올과 betadine의 스크럽을 교대로 수술 분야를 소독. </li></ol> 3. 외과 <ol><li> 왼손의 엄지와 무릎을 찾아 응용 프로그램을 만들기 위해 메스를 사용합니다. 무릎에 근위 세로 방향으로 1cm의 절개. </li><li> 멸균 가위의 팁을 사용 무딘 절개하여 피부를 엽니다. </li><li> 바로 명확하게 보이는 혈관 옆에 무딘 절개로 근육 레이어를 별도의 넓적다리 뼈 (대퇴골)에 인접해 있습니다. 제대로하면, 근육층은 쉽게 바로 근육 아래 좌골 신경을 드러내는 어떠한 출혈없이 별도의 것입니다. 출혈이 거의 무릎에 혈관 손상에 의해 발생하는 경우 예를 들면, 혈액을 흡수하기 위해 멸균 솜 울 꽃봉오리이나 시선의 조각을 사용합니다. 출혈이 멈출 때까지 누르십시오. </li><li> 스테레오 현미경 마우스를 놓고 조심스럽게 좌골 신경을 시각화하기 위해 멸균 핀셋 (nr. 2) 한 쌍의와 근육을 분리. 견인기도 적용될 수 있습니다. </li><li> 좌골 신경에서 sural 신경 가지 영역을 식별합니다. sural 신경이 왼쪽 다리에서 오른쪽으로 분기, 세 가지의 작은 것입니다. </li><li> 여전히, (tibial 일반적인 peroneal 신경) 병렬 실행 sural 지점을 만지지 않도록 조심중인 다른 두 가지 주위 봉합을 (6-0 봉합사) 적용합니다. sural 신경이 완전히 그대로 유지되어야한다로 이것은 중요한 단계입니다. </li><li> 꽉 수술 매듭을 만듭니다. 첫 번째 매듭이 꽉 경우, 사지의 수축이 관찰됩니다. </li><li> 핀셋 한 쌍의 (nr. 5)와 봉합 아래 절단되도록 신경을 잡고 가위의 작은 한 쌍의와 핀셋 위 아래의 신경을 ​​절단. , 족집게의 쌍을 위에 절단 신경의 첫번째 철수에 의해 피할 수있다. </li><li> 마이크로 가위로 봉합 종료를 차단하고 부드럽게 근육 레이어를 닫습니다. 수술 옹이와 상처를 봉합하기 위해 lidocaine의 드롭을 추가합니다. </li></ol> 4. 수술 후 <ol><li> 눈 연고가 여전히 충분한 있는지 확인하십시오. </li><li> 편안한 자세에서 종이 타월 아래 깨끗한 새장에 마우스를 놓습니다. 방이 차가운 경우 (단 원하는 경우 추운 지역으로 탈출할 수 있어야 동물 케이지의 일부 이하)은 새장의 한 부분 아래에 열 패드를 놓습니다. </li><li> 쉽게 접근할 수 물과 식량을 보장합니다. </li></ol> 5. 폰 프라이 테스트 (기준 및 수술 다음날부터) <ol><li> 와이어 메쉬 테이블 이틀 수술 이전에 하루에 배치 붉은 컬러 플라스틱 실린더에서 생쥐를 놓습니다. 테스트하기 전에 실린더에서 15 분 길들. 실린더의 붉은 색깔은 그들이 서로를보고 어두운 지역에있는 수로 쥐가 빨리 휴식을 취할 수 있도록 도와줍니다. </li><li> 생쥐가 침착되어 있는지 확인하고 손 옆 부분에 폰 프라이 필라멘트를 적용 : 0.02 g 필라멘트와 함께 시작하는 것은, 최초 30 초 (자극 당 약 2 초) 총 기간 동안 왼쪽 앞발 다섯 번 힘을 적용 각 응용 프로그램 후 마우스의 반응을 측정. 같은 필라멘트와 다른 생쥐의 왼쪽 앞발과 반복하고 다음 필라멘트 예로 이동하기 전에 첫 번째 마우스의 오른쪽 앞발로 다시 시작 : <ul><li> 마우스 1 : 왼쪽 발 필라멘트 0.02 g 5 회 </li><li> 마우스 2 : 왼쪽 발 필라멘트 0.02 g 등 5 회 </li><li> 마우스 1 : 라이트 필라멘트 0.02 g 5 회 </li><li> 마우스 2 : 라이트 필라멘트 0.02 g 등 5 회 </li><li> 마우스 1 : 왼쪽 발 필라멘트 0.04 g 5 회 </li><li> 마우스 2 : 왼쪽 발 필라멘트 0.04 g 등 5 회 </li></ul></li><li> 오 자극 중 3에 대한 응답은 긍정적인 반응으로 간주됩니다. threshol 상기 필라멘트D는 임계값 수준을 확인하기 위해 적용할 수 있습니다. 답변 = 갑자기 발 탈퇴, 리킹 갑자기 아무 문제, 갑자기 앞발. </li></ol> 6. 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/3092/3092fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 8~10주 이전 C57BL / 6 마우스의 연령에 그림 1. 본 프라이 테스트 전에 작동 일일 수행과 반복 수술을 따라했다. 4-8 동물은 각 그룹에 포함되었다. 운영 측면에 본 프라이 테스트는 ipsilateral로 표시되며 이외의 운영 제어 측면은 contralateral으로 표시됩니다. 이외의 운영은 약간 가짜 운항 마우스에 상대적으로 영향을하면서 오늘 하루 종일 수술 후 동물 운영 앞발에 상당한 과민성을 개발합니다. (* &lt;0.05, ** &lt;0.01, *** &lt;0.001, contralateral에 ipsilateral 상대적).

<ol><li>Costigan, M., Scholz, J., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%3A+a+maladaptive+response+of+the+nervous+system+to+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain: a maladaptive response of the nervous system to damage.</a> Annu. Rev. Neurosci. 32, 1-32 (2009).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87, 149-158 (2000).</li>
<li>Bourquin, A. -F., Süveges, M., Pertin, M., Gilliar, N., Sardy, S., Davidson, A. C., Spahn, D. R., Decosterd, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+and+analysis+of+mechanical+allodynia-like+behavior+induced+by+spared+nerve+injury+%28SNI%29+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment and analysis of mechanical allodynia-like behavior induced by spared nerve injury (SNI) in the mouse.</a> Pain. 122, 14.e1-14.e14 (2006).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J. Neurosci. Methods. 53, 55-63 (1994).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33, 87-107 (1988).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43, 205-218 (1990).</li>
<li>Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+and+sensitive+method+for+measuring+thermal+nociception+in+cutanous+hyperalgesia%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutanous hyperalgesia.</a> Pain. 32, 77-88 (1988).</li>
<li>Erichsen, H. K., Blackburn-Munro, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+characterization+of+the+spared+nerve+injury+model+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Pharmacological characterization of the spared nerve injury model of neuropathic pain.</a> Pain. 98, 151-161 (2002).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

중요 단계 sural 신경 손상은 tibial 일반적인 peroneal 신경에 손상 sural 신경 다음과 같은 부상의 병리 학적 변화를 연구하기 위해서는 피해야한다. sural 신경에 부수적인 피해 마비로 이어질 수 있으며, 따라서 운영 뒷다리의 드래그로 시각 수 있습니다. 손만이 측면 측면이 겪었던 sural 신경에 의해 innervated하고, 따라서,이 지역에만 신경 장해를 개발하고있다. 강력 바이어스 변경 기계 임계값의 평가를 가로로 신경에 의해 innervated 다른 분야를 할 수 테스트. 가능한 수정 ligations 다른 유형의 이러한 만성 수축 부상으로 말초 신경 손상에 따라 병적인 통증 조건, 연구의 관점에서 보충 수 있습니다 [5] 또는 일부 신경 내고 [6]. 이전 수술 후 테스트로 간주되어야 뚜렷한 phenotypic 변화의 각 실험 절차 결과입니다. 이 표현형 덜 견고한 다음 스니 있지만 또한 같은 온도 hyperalgesia 같은 다른 감각 테스트 [7]이 적용될 수 있습니다. 미래 애플 리케이션 이 방법은 기계 allodynia의 개발 또는 유지 보수를 변경 약품의 테스트에 사용할 수 있습니다 [8]. 좌골 신경의 분석, 지느러미 루트 신경 (DRG) 및 / 또는 요추 척수는 유도 표현형에 대한 분자 메커니즘 연구 책임 수 있습니다. 동물 실험은 덴마크와 유럽 규정을 준수 전체 좋은 실험실 연습에 따라 수행되었다. 모든 실험은 법무성 (허가 번호 2006/561-1206) 아래 덴마크 동물 실험 검사관의 관할 구역에 의해 승인되었습니다.

<table border="1"><tbody><tr><td> 마취 : 케타민을와 Xylazine </td><td> 외과용 메스 </td></tr><tr><td> 안과 연고 </td><td> 핀셋 NR의 쌍. 2 </td></tr><tr><td> 전기 면도기 </td><td> 핀셋 NR의 쌍. 5 </td></tr><tr><td> 장갑 </td><td> 무딘 절개에 대한 가위의 쌍을 </td></tr><tr><td> 70% (V / V) 에탄올 </td><td> 마이크로 가위 </td></tr><tr><td> 커튼 - 울 꽃봉오리 / 시선 </td><td> 6.0 Prolene 비 흡수성 봉합 </td></tr><tr><td> 스테레오 현미경 </td><td> 2 X 니들 홀더 </td></tr><tr><td> 접착제 테이프 </td><td> 열 패드 </td></tr><tr><td colspan="2"> 폰 프라이 필라멘트 (0.02-2.0 g 쥐를위한) (스토엘팅) </td></tr></tbody></table>

마우스에서 유도된 기계 allodynia의 겪었던 신경 상해 (스니) 모델

The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

주변 neuropathic 통증이 외상에서 말초 신경계의 감각 신경에 발생할 수 있습니다 심각한 만성 통증 상태입니다. 용서해주 신경 손상 (스니) 모델로 인해 일반적으로 통증 반응을 자극하지 마라 촉각 자극하기 위해 기계 allodynia 즉, 통증 neuropathic 고통의 증상을 유도 [1]. sural 신경이 그대로 남아있는 동안 스니 마우스 모델, 좌골 신경 (tibial 신경 및 일반 peroneal 신경)의 세 가지 중 두 결합을 포함 [2]. 겪었던 sural 신경에 의해 innervated있는 앞발의 측면 영역에 표시된 과민성의 병변 발생합니다. 마우스 이외의 운영 측면은 컨트롤로 사용할 수 있습니다. 스니 모델의 장점은 응답의 견고하고 있으며 전문가 microsurgical 기술을 필요로하지 않습니다. 기계적 통증 반응에 대한 임계값을 반복 넘어 측면 지역에 대한 누르는 아르 증가 굽힘 무력 폰 프라이 필라멘트와 테스트에 의해 결정됩니다 [3] [4]. 긍정적인 통증 반응은 필라멘트에 의해 유도된 핥아 및 / 또는 앞발을 아무 문제, 갑자기 포 탈퇴로 정의됩니다. 3 승제야 반복적인 자극에 긍정적인 반응은 고통의 한계로 정의됩니다. 로 비디오 프로토콜 시연, C57BL / 6 마​​우스는 수술 다음날 일찍 심오한 allodynia을 경험하고 몇 주 동안 이것을 유지합니다.

용서해주 신경 부상 동물 모델은 나머지 sural 신경은 그대로두고, tibial 및 일반 peroneal 신경 가지를 lesioning하여 좌골 신경의 부분 denervation 다음과 주변 neuropathic 고통의 마우스 모델로 여기에 설명되어 있습니다. 기계 allodynia 인한 행동 수정은 폰 프라이 필라멘트에 의해 계량입니다.

마우스에서 유도된 기계 Allodynia의 겪었던 신경 상해 (스니) 모델

말초 신경성 통증은 말초 신경계의 감각 신경 손상으로 인해 발생할 수 있는 심각한 만성 통증 질환입니다. 보존된...

본 절차의 전반적인 목적은 말초 신경 손상 후의 신경병성 통증 마우스 모델을 구축하는 것입니다. 이는 먼저 마우스를 마취하고, 뒷다리를 적절한 위치에 놓은 후 좌골 신경을 노출시킴으로써 이루어집니다. 다음으로, 좌골 신경의 세 가지 분지 중 세 번째 분지는 그대로 두고 두 가지 분지를 봉합하여 정의된 신경 손상을 유도합니다.이 영상에서는 소렐 신경(sorel nerve)은 보존한 상태에서 경골 신경과 총비골 신경을 봉합하고 절단합니다. 하지만 신경 손상 후 다른 조합을 적용할 수도 있습니다. Misa를 와이어 메시 테이블 위의 원통형 용기에 넣고 적응시킨 다음, 유도된 기계적 이질통을 정량적으로 측정할 수 있는 Von Fray 분석법을 사용하여 Misa를 테스트합니다.교정된 Von Frey 필라멘트를 수술한 발의 외측 부위에 낮은 강도부터 순차적으로 적용합니다. 수술한 뒷다리와 수술하지 않은 뒷다리의 기계적 역치를 측정하기 위해, 필라멘트 자극 시 발을 빠르게 떼거나, 움츠리거나, 또는 발을 핥는 행위를 통증 반응으로 정의합니다. 최종적으로 수술하지 않은 쪽과 비교하여 수술한 다리에서 나타나는 기계적 이질통의 발달 정도는 시간 경과에 따른 기계적 역치를 그래프로 그려 시각화할 수 있으며, 이를 통해 말초 신경 손상 후 다양한 분자 경로 또는 약물 치료 효과를 조사할 수 있습니다.이 방법은 신경병성 통증 발생에 관여하는 분자 경로와 같이 말초 신경 손상 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 또한, 통증 발생을 억제하거나 통증 증상을 완화하는 것을 목표로 하는 약물 또한 테스트할 수 있습니다. 수술 2일 전, 조용한 방의 와이어 메쉬 테이블 위에 놓인 빨간색 플라스틱 실린더에 마우스를 배치합니다. 테스트 전 15분 동안 실린더 내에서 마우스를 적응시킨 후, 15분 뒤에 마우스가 진정되었는지 확인하고 0.02g 필라멘트부터 시작하여 오름차순으로 von fray 필라멘트를 적용합니다. 먼저 왼쪽 앞발의 외측 부위에 30초 동안 총 5회 힘을 가하고, 매 적용 후 마우스의 반응을 측정합니다. 동일한 필라멘트로 다른 마우스의 왼쪽 앞발에 반복한 다음, 오른쪽 앞발에 다시 실시하고 다음 필라멘트로 넘어갑니다.양성 통증 반응은 필라멘트에 의해 유발된 갑작스러운 발끝의 움츠림, 발가락 벌림 또는 과도한 발끝 핥기로 정의하며, 5회의 반복 자극 중 3회에서 양성 반응이 나타나는 것을 통증 역치로 정의합니다. 케타민과 자일라진 혼합물을 복강 내 주사하여 동물을 마취시키고, 완전히 마취될 때까지 조용한 곳에 둡니다. 핀셋으로 꼬리 끝과 발을 집어 반사 반응을 확인하여, 동물이 무반응 상태인지 확인한 후 진행합니다.다음으로 탈수를 방지하고 감염을 예방하기 위해 항생제가 포함된 등장성 식염수 0.5 milliliters를 피하 주사합니다. 전기 면도기를 사용하여 무릎 약간 아래 영역부터 엉덩이 영역까지 수술 부위를 제모합니다. 오른손잡이의 경우 왼쪽 뒷다리를 사용하는 것이 가장 편리할 수 있습니다. 면봉을 사용하여 눈에 연고를 도포합니다.동물을 오른쪽으로 눕히고 왼쪽 뒷다리를 작은 플랫폼 위에 올려 높게 유지한 후 접착 테이프로 다리를 고정합니다. 동물이 배치되면, 수술 부위에서 바깥쪽으로 에탄올과 베타딘을 교대로 사용하여 수술 부위를 소독하고 건조시킵니다. 왼손 엄지손가락으로 무릎 위치를 찾고, 메스를 사용하여 무릎 근위측으로 종방향의 작은 절개를 만듭니다. 가위 끝을 이용한 둔성 박리로 피부를 엽니다.다음으로, 마우스를 실체 현미경 아래에 두고 대퇴골 근처에 명확하게 보이는 혈관을 찾습니다. 그 후 둔성 박리(blunt dissection)를 통해 근육층을 분리합니다. 올바르게 수행되었다면, 출혈 없이 근육층이 쉽게 분리되면서 근육 바로 아래의 좌골 신경이 드러날 것입니다.인근 혈관 손상으로 인해 출혈이 발생한 경우, 면봉이나 거즈 조각을 사용하여 출혈이 멈출 때까지 눌러 혈액을 흡수하십시오. 2번 핀셋을 사용하여 분리된 근육층을 조심스럽게 벌립니다. 좌골신경을 시각화하기 위해 필요한 경우 리트랙터를 적용하고, 비복신경이 좌골신경에서 분지되는 부위를 확인합니다.비복신경(sural nerve)은 왼쪽 다리에서 오른쪽으로 분지하는 세 개의 가지 중 가장 작은 가지입니다. C57BL/6 마우스에서 여전히 평행하게 주행하고 있는 나머지 두 가지 주위에 6-0 봉합사를 단단히 묶습니다. 이때 비복신경 가지를 건드리지 않도록 매우 주의하십시오.5번 핀셋으로 봉합사 아래쪽의 절단할 신경을 잡은 후, 신경이 당겨지는 것을 방지하기 위해 소형 가위로 핀셋 위쪽과 아래쪽 순으로 신경을 절단합니다. 신경 절단이 완료되면 가위로 봉합사 끝부분을 다듬고 근육층을 조심스럽게 닫습니다. 일반적으로 봉합 링은 필요하지 않습니다.상처 부위에 리도카인을 한 방울 가하고 외과적 매듭으로 봉합합니다. 안연고가 여전히 충분한지 확인한 후, 깨끗한 케이지에 종이 타월과 함께 마우스를 넣습니다. 마우스가 편안한 자세를 유지할 수 있도록 물과 사료를 쉽게 접근 가능한 위치에 제공합니다.실내 온도가 낮을 경우, 수술 후 하루의 회복 기간이 지난 뒤 케이지 일부 아래에 히팅 패드를 배치합니다. 기초 측정치 수집 방법과 동일한 방식으로 수술군과 가짜 수술(sham operated)군 쥐 모두에서 von fray 측정치를 수집합니다. 여기서는 4~6마리의 쥐로 구성된 그룹을 대상으로 수술 전 하루와 수술 후 2주 동안 매일 실시한 Von Frey 테스트 결과가 제시되어 있습니다. 수술 다음 날, 동물들은 수술 부위 또는 동측(ipsilateral) 발바닥에서 유의미한 기계적 과민반응을 보인 반면, 비수술 부위 또는 대측(contralateral) 발바닥은 영향을 받지 않은 상태로 유지되었습니다.반대측의 역치는 가짜 수술을 받은 마우스에 비해 약간 감소하였으며, 이는 수술을 받은 마우스에서 경미한 수준으로 MI 통각과민이 발생할 수 있음을 나타냅니다. 이 영상을 시청한 후에는 마취된 마우스에서 S 신경 분지를 찾는 방법과 조작하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. fray 분석은 부분적 말초 신경 손상 후 형질전환 동물이나 약물의 반응을 테스트하기 위한 정량적 기능 판독을 가능하게 합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

수술의 단순하고 강력한 행동 결과로 인해 좌골 신경의 만성적인 수축이 neuropathic 고통의 사전 저명한 동물 모델 중 하나입니다. 수술에 따라 24 시간 내에 통증 과민성 설립되고 양적 폰 프라이 aesthesiometer (기계적 시험)과 발바닥 진통제 측정기 (온도 시험)를 사용하여 측정할 수있다.

좌골 신경 및 쥐의 통증 과민성 시험의 만성 수축

이 비디오는 수술로 한쪽을 제거하고 다른 쪽은 대조군으로 남겨두어 마우스 모델의 감각 신경 기능을 테스트하는 방법을 보여줍니다. 기계적 자극에 대한 반응은 감각 신경의 역할을 확인시켜줍니다.

Testing Sensory Nerve Function in a Surgically Denervated Mouse 모델

경골 신경 절개 모델은 골격 근육 위축, 잘 용납 검증 및 재현성 모델입니다. 모델 수술 프로토콜은 C57Black6 마우스에 설명 설명된다.

경골 신경 절개 - 마우스의 탈 신경에 의한 골격근의 위축에 대한 표준 모델

신경 병증 성 통증은 체성 시스템에 영향을 미치는 장애 또는 질병의 결과이다. 생쥐의 신경 병증 성 통증의 "팔목 모델은"좌골 신경의 주요 지점 주위에 폴리에틸렌 커프스의 주입으로 구성되어 있습니다. 기계적 이질통은 본 프레이 필라멘트를 사용하여 테스트된다.

마우스의 신경 병증 성 통증의 좌골 신경의 바지를 접 모델

마우스의 안면 신경을 절개하거나 으깬 축삭 절개술을 수행하는 방법을 자세히 설명하는 수술 프로토콜을 제시합니다. 안면 신경 축삭 절개술은 신경 손상에 대한 생리적 반응을 연구하고 치료 기술을 테스트하는 데 사용할 수 있습니다.

마우스의 얼굴 신경 Axotomy : 부상으로 운동 신경 응답을 연구하는 모델

수정된 수술은 생쥐 또는 쥐 보존 신경 손상 모델에 대한 단순화된 방법으로, 일반 비골 신경과 천성 신경을 모두 손상시키기 위해 한 번의 결찰과 한 번의 절개만으로 됩니다.

마우스의 신경병증성 통증에 대한 수정된 보존 신경 손상 수술 모델

기계적 충돌-회피 분석은 다양한 마우스 통증 모델에서 정서적-동기 부여 반응을 더 잘 이해하기 위해 사용될 수 있는 마우스에서 통증 감수성의 비반사적 판독으로서 사용된다.

마우스의 통증 행동을 측정하기위한 기계적 충돌 회피 분석

부분 좌골 신경 결찰술은 열 및 기계적 자극에 대한 과장된 반응을 특징으로 하는 오래 지속되는 만성 신경병성 통증을 유발합니다. 이 신경병성 통증 마우스 모델은 일반적으로 통증 관리를 위한 혁신적인 치료법을 연구하는 데 사용됩니다. 이 기사에서는 표준화 및 재현성을 개선하기 위한 수술 절차에 대해 자세히 설명합니다.

부분 좌골 신경 결찰: 새로운 치료법의 항통각수용 효과를 연구하기 위한 만성 신경병성 통증의 마우스 모델

생쥐에서 원위 안와하부 신경의 만성 수축 손상은 촉각 자극에 대한 반응으로 자발적 행동(얼굴 손질 활동 증가)과 통각 행동(von Frey 모발 자극에 대한 과민성)의 변화를 유발하며, 이는 지속적인 통증 및 이질증의 징후이며 삼차신경병증성 통증의 모델 역할을 합니다.

삼차신경병증성 통증을 연구하기 위한 마우스의 원위 안와하부 신경(DIoN-CCI)의 만성 수축 손상

이 프로토콜은 인간 신경종 통증을 모방하고 외과적 치료를 평가하기 위해 감각 신경을 사용하는 재현 가능한 쥐 모델을 제시하여 중개 신경종 연구를 위한 귀중한 도구를 제공합니다.

복재 신경을 통한 표적 근육 재신경 분포를 사용하여 신경종 통증 치료 옵션을 연구하기 위한 새로운 외과적 설치류 모델

학습하세요 마우스에서 SNI 모델을 이용한 말초 신경병증성 통증 연구 방법을. 좌골 신경의 두 가지 분지를 절단하고 수랄 신경을 보존한 후 폰 프레이 필라멘트로 기계적 통각과민을 정량화하여 통증 역치 변화를 측정합니다.

마우스에서 유도된 기계 Allodynia의 겪었던 신경 상해 (스니) 모델

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