투과 전자 현미경 이미징 마우스 해마 뉴런에서 시냅스 소포 세포내이입

0 조회수5:41 • April 28th, 2025

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양 고추냉이 과산화효소 또는 HRP를 함유한 고칼륨 완충액으로 마우스 해마 뉴런을 처리하는 것으로 시작합니다.

높은 칼륨은 시냅스 전 뉴런을 탈분극시켜 시냅스 소포 엑소세포작용을 유발합니다. 그런 다음 뉴런은 HRP를 새로 형성된 소포에 통합함으로써 엔도사이토시스를 통해 시냅스 소포막을 회수합니다. 뉴런을 글루타르알데히드로 고정하고 세척하여 과도한 글루타르알데히드를 제거합니다.

과산화수소와 HRP에 의해 산화되어 전자 밀도가 높은 침전물을 형성하는 발색 기판을 추가합니다. 반응하지 않은 기질을 제거하기 위해 세척하십시오.

막 대비를 강화하기 위해 사산화오스뮴으로 처리한 다음 여분의 시약을 씻어냅니다. 다음으로, 소기관 대비를 향상시키기 위해 우라닐 아세테이트를 첨가합니다.

에탄올 농도를 증가시켜 뉴런을 탈수하고 레진에 포매합니다.

세포 밀도가 높은 영역을 현미경으로 식별하고 제거합니다. 그런 다음 초박형 절편을 준비합니다.

단면을 구리 그리드에 옮기고 조영제로 역조염색합니다.

투과 전자 현미경을 사용하면 HRP를 포함하는 소포가 전자 밀도가 높은 구조로 나타납니다.

온에서 90초 동안 각 웰에 1.5밀리리터의 고칼륨 자극 용액을 첨가하여 해마 뉴런 배양을 자극합니다. 이 단계에서는 pH 7.4에서 0.1몰 카코딜레이트 나트륨 완충액을 준비합니다. 실온에서 최소 1시간 동안 0.1몰 카코딜레이트나트륨 완충액에 4% 글루타르알데히드로 세포를 고정합니다.

그런 다음 7분 동안 매번 0.1몰 카코딜레이트 나트륨 완충액으로 세포를 세 번 세척합니다. 그런 다음 DAB 용액을 준비하고 0.22마이크로미터 필터로 여과합니다. 다음으로, 1.5밀리리터의 DAB 용액을 섭씨 30도에서 37분 동안 세포에 도포합니다.

그런 다음 7분 동안 매번 0.1몰 카코딜레이트 나트륨 완충액으로 세포를 세 번 세척합니다. 고정 후 뉴런을 섭씨 4도에서 1시간 동안 0.1몰 나트륨 카코딜레이트 완충액에 1.5밀리리터의 1% 사산화오스뮴과 함께 배양합니다.

그 후, 뉴런을 1.5밀리리터의 0.1몰 카코딜레이트나트륨 완충액으로 매번 7분 동안 세 번 세척합니다. 그 후, 아세트산나트륨과 빙초산으로 0.1몰 아세트산나트륨 완충액을 준비합니다. 7분 동안 매번 1.5밀리리터의 0.1몰 아세테이트 완충액으로 세포를 세 번 세척합니다.

그 후, 세포를 섭씨 4도에서 1시간 동안 0.1몰 아세테이트 완충액에 1.5밀리리터의 1% 우라닐 아세테이트와 함께 배양합니다. 그런 다음 1.5밀리리터의 0.1몰 아세테이트 완충액으로 세포를 매번 7분 동안 세 번 세척합니다. 흄 후드에서 50%, 70% 및 90% 에탄올의 단일 1.5밀리리터 세척으로 신경 배양물을 각 세척 7분 동안 탈수한 다음 1.5밀리리터의 100% 에탄올로 매번 7분 동안 3회 세척합니다.

다음으로 에폭시 수지를 만들어 잘 섞은 후 진공 상태에서 보관하여 기포를 제거합니다. 에탄올을 에탄올에 50% 에폭시 수지로 교체하여 실온에서 30분 동안 셰이커에 넣은 다음 70% 에폭시 수지와 에탄올을 셰이커에서 30분 동안 교체하여 샘플에 침투시킵니다.

에폭시 수지 용액을 100% 에폭시 수지로 전환하고 섭씨 50도에서 10분 동안 배양합니다. 신선한 100% 에폭시 수지를 두 번 교환합니다. 각 교환은 섭씨 50도에서 1시간 동안 배양됩니다. 그런 다음 신선한 100% 에폭시 수지를 넣고 섭씨 50도에서 밤새 경화시킨 다음 섭씨 60도에서 36시간 이상 경화시킵니다.

그런 다음 보석상의 손톱으로 멀티웰 플레이트에서 각 샘플을 제거합니다. 도광현미경을 사용하여 세포가 조밀하게 집중되어 있는 관심 영역을 선택합니다. 그런 다음 절편화를 위해 4 x 5 x 8mm의 블록을 입방체로 자릅니다. 그 후, 1% 우라닐 아세테이트 수성으로 15분 동안 침지한 다음 3% 구연산납 수성으로 5분 동안 침수하여 절편을 대조염색하여 샘플의 대비를 향상시킵니다.

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마지막 업데이트: 1 8월 2026