0 조회수 • 4:11 분 • April 28th, 2025
순환 이미징 용액과 제어된 온도를 갖춘 공초점 현미경 욕조 챔버 설정으로 시작합니다.
희소돌기아교세포가 미토콘드리아 특이적 적색 형광 단백질과 세포질 특이적 녹색 형광 단백질을 발현하도록 형질도입된 기관형 마우스 뇌 절편을 포함하는 친수성 고분자 막을 취합니다.
이중 형광은 희소돌기아교세포의 세포질 내에서 미토콘드리아 역학을 명확하게 시각화할 수 있습니다.
슬라이스를 욕조 중앙에 담그고 하프 앵커로 고정합니다.
대물렌즈를 낮추고 스캔할 건강한 희소돌기아교세포를 선택합니다.
세포 독성 및 광표백을 최소화하기 위해 레이저 출력을 조정합니다.
현미경 매개변수를 설정한 다음 형광 표지된 미토콘드리아의 타임랩스 이미지를 기록합니다.
다양한 깊이에서 z-스택 이미지를 캡처하여 전체 셀의 고해상도 3차원 보기를 얻습니다.
이미지를 처리하여 희소돌기아교세포 내의 미토콘드리아 움직임을 시각화합니다.
집게를 사용하여 조각이 있는 색종이 조각을 페트리 접시에서 욕조 상단으로 옮깁니다. 그런 다음 색종이 조각의 양쪽에 집게의 두 끝을 놓아 조각에 닿지 않고 색종이에 닿도록 합니다. 그리고 용액을 통해 색종이를 욕조 바닥으로 밀어 넣습니다. 색종이 조각을 욕조 중앙
에 놓습니다.집게를 사용하여 조각을 건드리지 않고 색종이 조각 위에 고정 앵커 또는 하프를 놓습니다. 그런 다음 연동 펌프를 다시 켭니다. 대물렌즈를 샘플까지 내립니다. 그런 다음 접안렌즈와 형광등을 사용하여 형광 단백질 발현이 있는 건강해 보이는 희소돌기아교세포를 빠르게 찾습니다.
소프트웨어의 라이브 기능을 사용하여 화면의 셀을 식별합니다. 그리고 관심 영역을 선택하십시오. 여기에서 여러 1차 돌기와 하나의 수초를 포함하는 영역이 이미지화됩니다. 관심 분야를 확대합니다. 이것은 일반적으로 0.14에서 0.30 미크론의 픽셀 크기를 가진 이미지를 생성합니다.
[영역] 도구를 선택하고 영역 주위에 사각형을 그립니다. 선택한 영역만 스캔하는 옵션을 선택합니다. 선택한 영역만 스캔하여 스캔 시간과 레이저 노출이 줄어듭니다.
미토콘드리아를 잘 볼 수 있도록 레이저 출력과 게인을 조정합니다. 라이브 이미징 중 표백을 방지하기 위해 낮은 레이저 출력과 높은 게인을 사용하십시오. 필요한 경우 디지털 오프셋을 조정합니다.
빠른 스캔 속도를 선택하여 스캔 시간을 최소화합니다. 미토콘드리아 이미징 및 희소돌기아교세포에 대한 타임랩스 기록의 빈도와 기간을 설정합니다. 총 20분 동안 2초마다 이미지를 캡처합니다. 타임랩스 녹화를 시작합니다.
솔루션의 연속적인 흐름으로 인해 슬라이스가 이동할 수 있습니다. 욕조의 입구와 배출구를 조정하여 이러한 움직임을 최소화하는 데 시간을 할애할 가치가 있습니다. 펌프 속도를 줄일 수도 있습니다.
일반적으로 초점의 작은 변화가 여전히 발생하므로 타임랩스 이미징 중에 화면을 지속적으로 모니터링합니다. 필요에 따라 초점을 조정합니다. 타임랩스 이미징 후 전체 세포의 Z-스택을 캡처하여 향후 세포 및 이미징 프로세스를 식별합니다.
본 논문은 공초점 현미경을 사용하여 희소돌기아교세포 내 미토콘드리아 역학을 이미징하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 세포질 내 미토콘드리아의 이동을 시각화하기 위해 이중 형광을 사용하는 방법을 포함합니다.
이 방법은 희소돌기아교세포 내 미토콘드리아 역학의 직접적인 시각화를 가능하게 하여, 신경퇴행성 질환의 표적 검증 과정에서 메커니즘적 리스크 감소를 지원합니다. 질병 관련 시스템에서 소기관 거동에 대한 정량적이고 시간 분해능이 높은 데이터를 제공함으로써, 초기 발굴 워크플로우의 예측 신뢰도를 높여줍니다. 이 접근법은 미토콘드리아 기능을 전임상 모델에서 희소돌기아교세포 건강 상태를 나타내는 중개 가능 바이오마커로 설정합니다.
이 방법은 표적 검증부터 전임상 평가에 이르는 발견 연속체 내에 적합하며, 희소돌기아교세포 모델에서 미토콘드리아 조절제에 대한 반복적인 평가를 가능하게 합니다.
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마지막 업데이트: 22 8월 2026