0 조회수 • 3:40 분 • April 28th, 2025
실험실에 기관형 마우스 해마 절편을 고정합니다.
슬라이스에는 기증자 및 수용체 형광 단백질로 ATP 센서를 발현하는 형질도입된 뉴런과 성상세포가 포함되어 있습니다.
챔버를 형광 현미경 스테이지에 놓고 산소가 함유된 ACSF로 관류합니다.
슬라이스가 버퍼링된 조건에 적응하도록 허용합니다.
투과광을 사용하여 슬라이스에 초점을 맞추고 관심 영역을 식별합니다.
형광 모드로 전환하고 기증자 형광 단백질을 여기시켜 형광 방출을 시작합니다.
ATP 결합 시 센서는 형태 변화를 겪어 기증자에서 수용체로 형광 기반 에너지 전달을 가능하게 하여 더 긴 파장에서 형광을 방출합니다.
이색성 미러와 대역 통과 필터를 사용하여 공여자와 수용체 방출을 분리하고 분리합니다.
배경 빼기를 위해 형광이 없는 영역을 선택합니다. 그런 다음 표적 세포를 식별하고 시간 경과에 따른 형광을 기록합니다.
세포내 ATP 수치를 실시간으로 모니터링하기 위해 FRET 비율을 계산합니다.
실험용 ACSF를 준비하고 카보겐 공급에 연결된 삽입된 튜브를 통해 95% 산소와 5% 이산화탄소로 최소 30분 동안 버블링하여 pH 7.4를 얻습니다. 전체 실험 동안 식염수를 거품으로 유지하십시오. 그런 다음 단색기의 형광등을 켭니다.
기관형 절편 배양액을 실험실로 옮깁니다. 배양액에 닿지 않고 프레임을 아래로 향하게 하고 실을 위로 하여 막에 닿도록 기관형 슬라이스 배양액 위에 격자를 놓습니다. 챔버를 현미경 스테이지에 놓고 관류 시스템에 연결합니다.
분당 1.5-2.5밀리리터의 유속으로 연동 펌프를 켭니다. 관류 시스템이 누출되지 않았는지 확인하십시오. 투과광을 사용하여 배양된 슬라이스에 초점을 맞추고 실험을 수행할 영역을 식별합니다.
이미징 실험을 시작하기 전에 슬라이스가 식염수 조건에 적응할 때까지 최소 15분 동안 기다리십시오. 그런 다음 카메라와 이미징 소프트웨어를 켭니다. 435나노미터에서 기증자 형광 단백질을 여기시킵니다. 노출 시간을 40밀리초에서 90밀리초 사이로 설정합니다.
그런 다음 이색성 거울과 필터를 빔 스플리터 장치에 삽입합니다. 방출 이미지 스플리터를 사용하여 500나노미터에서 형광 방출을 분할하고 482 플러스 또는 마이너스 16 및 542 플러스 또는 마이너스 13.5나노미터에서 대역 통과 필터를 사용하여 공여체 및 수용체 형광을 추가로 분리합니다.
배경 빼기를 위해 세포 형광이 없는 것으로 보이는 관심 영역을 선택합니다. 화면의 이미지에서 라벨링된 조직의 단일 구조에 동그라미를 치어 ROI를 생성합니다. 전체 녹화 시간에서 이미지 획득 빈도를 설정합니다. 30분 이상의 실험의 경우 광독성을 방지하기 위해 0.2-0.5헤르츠의 획득 빈도를 권장합니다. 그런 다음 녹음을 시작합니다.
본 논문에서는 기관형 마우스 해마 절편에서 형광 공명 에너지 전달(FRET)을 이용하여 세포 내 ATP 수준을 실시간으로 모니터링하는 방법을 설명합니다. 이 접근 방식은 도너(donor) 및 억셉터(acceptor) 형광 단백질이 포함된 ATP 센서를 발현하도록 형질전환된 뉴런과 성상교세포를 사용하는 것을 포함합니다.
살아있는 뇌 조직 내의 세포 내 ATP 역학을 모니터링하면 세포 에너지 상태와 기능적 결과의 연관성을 통해 신경치료 표적의 기전적 위험을 제거할 수 있습니다. 이 FRET 기반 접근법은 생리적 조건에서 뉴런 및 글리아 세포 대사에 대한 정량적인 실시간 판독값을 제공함으로써 초기 발견 단계의 표적 검증을 지원합니다. 이 방법은 조직 구조를 보존하는 동시에 약물적 또는 유전적 섭동에 반응하는 ATP 변동의 종단적 평가를 가능하게 하여 전임상 모델의 예측 신뢰도를 높여줍니다.
이 방법은 초기 타겟 검증부터 전임상 프로파일링에 이르는 발견 연속체에 적합하며, 실시간 ATP 모니터링을 통해 작용 기전과 세포 독성 평가를 모두 수행할 수 있습니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026