Fluorescence Imaging of Synaptic Calcium Dynamics in an In Vitro Model of Amyotrophic Lateral Sclerosis(근위축성 측삭 경화증의 시험관 내 모델에서의 시냅스 칼슘 역학의 형광 이미징)

0 조회수3:18 • June 17th, 2025

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배지가 들어 있는 코팅된 유리 바닥 접시에서 배양된 일차 설치류 피질 뉴런을 취합니다.

이 세포는 유전적으로 암호화된 ALS 관련 단백질과 칼슘 바이오센서를 발현합니다.

배지를 저염화칼륨 완충액으로 교체하십시오.

휴식 중인 신경 활동과 기본 칼슘 수치를 유지하기 위해 배양합니다.

접시를 공초점 현미경 스테이지에 장착하고 관류 튜브를 배치합니다.

명시야 조명을 사용하여 뉴런에 초점을 맞춘 다음 형광 이미징으로 전환합니다.

현미경의 레이저를 사용하여 바이오센서를 여기시키고 형광 방출을 기록하여 기본 세포내 칼슘 수치를 결정합니다.

다음으로, 고염화칼륨 완충액으로 접시를 관류합니다.

높은 칼륨 농도는 뉴런을 탈분극시켜 시냅스 전 말단에서 전압 개폐 칼슘 채널을 엽니다. 이것은 신경 시냅스 활동을 시작하는 칼슘 유입을 허용합니다.

증가된 세포내 칼슘은 바이오센서에 결합하여 형광을 향상시키는 구조적 변화를 일으킵니다.

형광을 계속 기록하여 세포내 칼슘 수치의 실시간 변화를 측정하여 신경 시냅스 활동을 밝힙니다.

GCaMP6m으로 형질감염 후 48시간, 일차 설치류 피질 뉴런을 저염화칼륨 ACSF와 함께 15분 동안 배양합니다. 그런 다음 이미징 플랫폼에 접시를 장착하고 FITC 필터와 20배 또는 40배 대물렌즈를 사용하여 GCaMP6m 형광을 시각화합니다. 이미징 필드를 선택하고 완벽한 초점을 맞춘 후 명시야 FITC 및 형광 마커 채널로 단일 정지 이미지를 촬영하여 뉴런 경계를 표시합니다.

그런 다음 획득 소프트웨어에서 "지금 실행"을 시작하고 3-5분 동안 기본 녹음을 수행합니다. 그런 다음 앞서 설명한 대로 50밀리몰 염화칼륨을 함유한 ACSF를 뉴런에 관류하고 5분 동안 기록합니다. 이미지 획득이 중지되면 실험을 저장하고 공초점 소프트웨어를 사용하여 데이터 분석을 진행합니다.

이미지 분석을 위해 타임랩스 이미지와 공초점 소프트웨어를 열고 이미지, 처리, 현재 문서 정렬을 차례로 클릭하여 이미지를 정렬합니다. 그런 다음 첫 번째 프레임에 정렬을 선택합니다. ROI 선택 도구를 사용하여 신경돌기를 따라 관심 영역을 선택하고 배경 형광 강도를 나타내는 ROI도 표시합니다. 그런 다음 시간 측정 패널에서 측정 기능을 시작하여 선택한 ROI에 대한 시간 경과에 따른 원시 형광을 측정합니다. 측정 후 원시 형광 강도를 스프레드시트 소프트웨어로 내보냅니다.

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마지막 업데이트: 1 8월 2026