February 19th, 2012
이 비디오는 망막 신경절 세포의 개수 (RGCs)를 quantifying하고 RGCs의 크기를 측정, 내부 핵 층의 두께를 측정 포함 망막의 morphometric 분석의 세 가지 유형을 보여줍니다. 기술 morphometric 분석을위한 간단하면서도 과학적인 플랫폼을 제공할 수 있습니다.
안녕하세요, 저는 홍콩 대학교 해부학과 신경 퇴행성 질환 실험실의 레지나입니다. 오늘은 망막 세션의 진행 분석을 수행하는 방법을 보여 드리겠습니다. 시작합시다 분석을 수행하기 전에 망막 샘플 후퇴와 4개의 MyFitness를 진행하고 h 및 e 염색을 진행합니다.
그 후, 망막 세션은 4개의 영역으로 나뉩니다. 그들은 상부 주변 영역, 중앙 상부 영역, 중앙 하부 영역 및 하부 주변 영역입니다. 영역을 정의한 후 각 영역의 이미지는 장식의 밝은 빔 현미경 아래에서 10 x 40 배율로 획득됩니다.
이제 망막 모프 정보를 분석할 준비가 되었습니다. 이 세션에서는 내부 핵층의 망막 두께를 측정하는 방법을 보여줍니다. 철저한 조사자라는 소프트웨어를 엽니다.
40 가지 유형을 선택한 다음 기본 두 개의 막대에서 열린 이미지를 선택하십시오. 탭 파일에서 분석하려는 원하는 망막 영역의 이미지를 선택합니다. 메인 두 막대의 드롭다운에서 윤곽선 유형을 선택합니다.
자동 이동이 켜져 있는지 확인합니다. 확대 버튼을 클릭하여 이미지를 확대할 수 있습니다. 축소 버튼을 사용하여 이미지 표시의 측면을 줄일 수 있습니다.
트레이싱과 시편은 모두 원인 이동 버튼을 크래킹하여 4개의 다른 방향을 따라 이동할 수 있습니다. 추적 창을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 단순 균열 추적을 선택합니다. 내부 레이어의 내부 테두리를 따라 연속선을 그립니다.
실수가 있는 경우 추적 창에서 실수를 끊고 실행 취소 버튼을 눌러 마지막 그리기 점을 지웁니다. 선의 마지막 점까지 추적을 계속합니다. 그리기가 완료되면 추적 창에서 드로잉을 중단하고 열린 윤곽선을 선택한 다음 확대를 클릭하여 이미지를 실행합니다.
단추 왼쪽: 추적 창을 클릭합니다. 이미지를 확대하려면 Marcus의 마커 2 막대에서 마커를 선택합니다. 접합 지점에서.
모든 마커를 추가한 후 마커 두 막대 위치와 커서에서 마커 아이콘을 선택합니다. 마커 중 하나의 중심에서 탭 2 아래의 빠른 측정 각도를 선택하고 추적 창에서 마우스 오른쪽 버튼을 클릭한 다음 연속 옵션을 선택합니다. 먼저 선택한 마커에 인접한 마커의 중심을 클릭하여 각도를 측정합니다.
선 세그먼트의 끝의 경우 가장 중요한 부분을 문제의 중앙으로 이동합니다. 마커 및 균열. 다시 말하지만, 각도를 90도까지 조정하면서 고무 밴드 선을 inia 레이어의 바깥쪽 테두리까지 확장합니다.
욕망에 왼쪽 균열에 도달하십시오. 각도 측정을 보여주는 대화 상자를 배치하면 클릭 직후에 팝업됩니다. 마우스를 왼쪽으로 누른 상태에서 Enter 키를 누릅니다.
추적 창을 클릭하여 선이 한쪽 끝에서 새 선택 끝까지 그려지도록 합니다. 추적 창에서 중단하고 열려 있는 컨트롤을 선택합니다. 우리는 각 영역에서 내부 핵층 손가락을 4 번 측정해야하며, 여기서 4 개의 선이 그려집니다.
통제 기지 밤에서 인도 핵층의 바깥 쪽 국경까지 수직으로 그리고 국경을 명확하게 볼 수 있도록 이미지를 발사합니다. 선의 끝이 내부 핵층의 바깥쪽에 있지 않으면 연결하거나 편집 모드에서 선을 줄일 수 있습니다. 편집 모드를 선택하고 선을 선택합니다.
추적 창을 클릭하고 전기 제어에서 검색 지점을 선택하고 점 편집이 동일한 선을 따라야하는 동안 외부 경계에 점을 추가합니다. 원래 점을 삭제합니다. 그런 다음 새 리프트와 정렬할 수 있습니다.
축소 버튼을 클릭하여 이미지의 측면을 줄입니다. de 편집 모드를 선택하고 마지막 선분을 그립니다. 순서선을 그린 후 편집 모드를 선택합니다.
추적 창을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하면 그에 따라 4개의 선 세그먼트가 배치됩니다. 이제 CONT 측정 버튼을 눌러 4개의 측정값을 얻을 수 있습니다. 이 네 가지 측정값을 선택하고 복사를 클릭하여 전문가에게 붙여넣습니다.
공을 클릭하려면, 탭 파일 아래에서 다른 이름으로 저장을 선택합니다. 추적 데이터는 데이터 파일로 저장할 수 있습니다. 이 부분에서는 열린 red tail gagan cell select 이미지의 수를 정량화합니다.
탭 파일에서 분석하려는 원하는 망막 영역의 이미지를 선택합니다. 우선, 어느 것이 생활 방식이고 어느 것이 죽음의 세포인지 식별해야 합니다. 미묘한 핵을 가진 대략적으로 뻗은 모양의 세포는 생명체의 망막 갱 세포로 간주되지 않은 것이 분명하게 관찰됩니다.
그것들은 작고 응축된 세포가 그 세포로 간주됩니다. 메인 두 막대의 드롭다운에서 윤곽선 유형을 선택합니다. 왼쪽 섬유 레이어의 경계를 따라 선을 그리고 옵션과 열린 윤곽으로 추적을 그립니다.
각 끝을 추가하고 라인 끝에 하나의 마커를 추가하고 팀 근처 위치에 다른 마커를 추가합니다. 마커 2 막대에서 마커 아이콘을 선택합니다. 마커의 중심에 커서를 놓습니다.
팁에서 탭 아래의 빠른 측정 각도를 선택합니다. 추적 창에서 2를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 연속 옵션을 선택하고 고무 밴드 선만 선택하고 19도의 각도를 측정합니다. 달러 상자를 따라잡은 직후 Enter 키를 누릅니다.
그러나 마우스가 여전히 동시에 남아 있음을 기억하십시오. 끝에서 새 줄을 특별히 확장할 수 있도록 추적 창을 끊습니다. 추적 창을 중단하고 열려 있는 컨트롤을 선택합니다.
다른 끝과 정확히 같은 방식으로 다른 새 선을 그립니다. 우리는 ratin gagan 세포의 수가 계산되는 두 개의 경계를 만들었습니다. 한 가지 유형의 마커를 선택하고 각 5개의 셀에 하나씩 부착합니다.
셀이 접촉하는 경계가 현재 경계가 아닌 제외 선으로 하나를 선택합니다. 죽은 세포에 대한 다른 유형의 마커를 선택합니다. 각 유형의 마커 공간 수는 마커 아이콘과 함께 표시됩니다. 그러므로.
마커 두 막대에서 편집 모드를 선택하고 윤곽선 기준선을 선택합니다. 추적 창에서 끊고 줄을 다시 끝냅니다. 윤곽 기준선의 이름은 윤곽 측정 버튼을 눌러 얻을 수 있습니다.
그런 다음 셀의 수를 이름의 밀리미터 단위로 표현할 수 있습니다. 이제 탭 파일 아래에 다른 이름으로 저장하겠습니다. 추적 및 마커 데이터를 데이터 파일로 저장할 수 있습니다.
이 부분에서는 열린 망막 갱킹 세포 선택 이미지의 세포 측면을 측정하는 방법을 보여줍니다. 탭 파일에서 분석하려는 원하는 망막 영역의 이미지를 선택합니다. 이전 부분에서 설명한 기준에 따라 라이브 호흡 갱 셀을 선택하십시오.
따라서 라이프 셀에서 메인 두 막대의 조트 다운 지점에서 윤곽선 유형을 선택합니다. 셀 둘레를 따라 윤곽선을 그리고, 끝에서 추적 창을 오른쪽 걷어차고, 윤곽선 끝 닫기를 선택합니다. 셀의 영역은 Control Measurement 대화 상자의 area 항목 아래에 표시됩니다.
이 비디오는 망막을 객관적으로 분석할 수 있는 세 가지 간단한 방법을 보여주었습니다. 바라건대 이 비디오입니다.
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이 비디오는 망막의 세 가지 유형의 형태 측정 분석을 시연하고 있으며, 여기에는 내부 핵층 두께 측정, 망막 신경세포(RGC)의 수량화, 그리고 RGC 크기 측정이 포함됩니다. 이 기술은 이러한 분석을 위한 과학적 플랫폼을 제공합니다.
Objective morphometric analysis of retinal sections enables precise quantification of neuronal loss and structural changes, supporting target validation in neurodegenerative disease models. By reducing measurement variability and increasing sensitivity to minimal changes, this approach enhances predictive confidence in evaluating therapeutic efficacy. It provides a translatable platform for assessing retinal pathologies across drug discovery stages.
This method integrates into the discovery continuum from early target validation through lead identification to preclinical evaluation, providing structural readouts that complement functional assessments in retinal disease models.