Name: 야생 유충에서 Hemocytes을 추출하기위한 간단한 프로토콜 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-15T11:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: 배우세요 야생 애벌레에서 혈구를 추출하고 시각화 및 정량화하는 방법을. 이 기술은 곤충 면역학 및 생리학 연구에 필수적인 도구로 활용됩니다.

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TMS는 본 연구 기간 동안 할란 신뢰 휄로 십 (GWU)에서 지원되었습니다. 필드 컬렉션에 대한 자금 및 L.를 양성 fasciola와 E. delphinii는 JTL에 NSF 부여 DEB 0,642,438에 의해 제공되었다.

1. 재료 준비 <ol><li> 붕규산 유리 모세관 튜브 및 micropipette의 풀러를 사용하여 바늘 (1-2 μm 팁과 3~4mm 테이퍼)를 준비합니다. 악기 설정 : 램프 : 561, 속도 : 20, 열 : 560, 지연 : 1, 풀다운 : 100, 압력 : 500. </li><li> 태아 소 혈청 (FBS)의 10 % 항응고제 버퍼의 20 % (98 MM NaOH, 186 MM NaCI, 1.7 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 41 MM 구연산, pH를 4.5로 보충 그레이스의 중간 (GM)의 60 %를 수집 솔루션을 준비 ). 위의 솔루션은 무균 조건 하에서 신선 준비 항상 얼음에 보관됩니다. </li><li> GM의 90 %가 FBS의 10 %를 보충 : 부화 버퍼 솔루션을 준비합니다. 이 솔루션은 또한 신선한 준비 항상 얼음에 보관됩니다. </li><li> 적어도 15 μl의 총 × 수집 및 부화 솔루션 모두에 대한 곤충의 수를 준비합니다. </li></ol> 2. 수집 솔루션과 유충의 주입 <ol><li> 어미에서 두 번째의 음절 기능을 마취hemocyte 추출하기 전에 20 분을 위해 얼음을 냉각하여 타르 애벌레. </li><li> 20 ML 유리 주사기 (그림 2)에 연결되어있는 튜브에 깨끗한 모세관 바늘 (16 게이지)의 뭉툭한 끝을 맞 춥니 다. 수집 솔루션은 실험실 벤치에 열고 천천히 버퍼로 모세관을 채울가 포함 된 튜브를 둡니다. 모세는 보통 무한 궤도의 크기에 따라 수집 솔루션의 약 10-15 μl로 가득 차 있습니다 (애벌레 총 신체 질량의 10 밀리그램 당 약 1 μl 솔루션 = 총 신체 질량의 0.01 %). 해부 현미경 옆에 배치됩니다 점토의 공에 바늘을 놓습니다. </li><li> 배양 접시에있는 애벌레를 놓습니다. 곤충은 spiracles는 (그림 3) 명확하게 볼 수 있습니다 있도록 자사의 측면에 위치해야합니다. </li><li> 해부 현미경으로 볼 수 있지만, 포셉 한 쌍의 곳에서 애벌레를 개최하고 spiracles 중 하나에 바늘 가까이있는 곳에서종파의 표피는 일반적으로 부드러운이다. 부드럽게 곤충의 몸에 대해 모세관 바늘을 누르십시오. 바늘이 표피를 관통되면, 무한 궤도 (그림 3)에 솔루션의 전체 볼륨을 주입. 이 애벌레에 공기 거품을 주입하지 않도록하는 것이 중요합니다. 애벌레의 몸은 주사에 따라 (예를 들어, 20 % 볼륨 증가) 팽창 할 것입니다하지만, 파열 또는 진흙 없습니다. </li><li> 상처 (그림 3)에서 누출에서 버퍼를 방지하기 위해 dorsally 곤충을 위치, 얼음에 애벌레를 반환합니다. </li><li> 반복 hemolymph 추출에 사용되는 각각의 애벌레에 대해 2.1-2.4 단계를 반복합니다. 이 단계에서, 모든 곤충은 계속하기 전에 30 분을 위해 얼음에 진정 할 수 있습니다. </li></ol> 3. Hemocytes의 추출 <ol><li> 해부 현미경으로 배양 접시에있는 애벌레를 놓습니다. </li><li> 멸균 scalpe를 사용하여 애벌레의 뒤쪽 지역의 얕은 (2-3mm 길이) 절개를합니다<html> 리터 (그림 3). 목표는주의 깊게 찔린 큐티클을하는 것입니다 및 개인 곤충의 hemocytes을 포함하는 버퍼 / hemolymph 믹스를 수집하고, 내장 또는 기타 내부 장기를 손상 않도록주의보십시오. </li><li> 10 μl 피펫 팁으로 hemolymph 믹스 (약 10-20 μl)를 수집하면서 다시 내부 조직 (그림 3)을 손상하지 돌보는, 유연한 플라스틱 집게를 사용하여 부드럽게 애벌레를 당겨 요. Hemolymph은 애벌레의 몸에서 짜낸 비말에서 수집됩니다. 애벌레의 유골을 폐기하십시오. </li><li> 별도의 표시 siliconized 0.5 ML의 microcentrifuge 튜브에 각각의 애벌레에서 hemolymph를 수집합니다. </li><li> 개인 애벌레에서 수집 한 각 hemolymph 샘플에 부화 솔루션의 동일한 볼륨 (약 10-20 μl)를 추가합니다. 항상 얼음에 hemolymph 샘플을 보관. </li><li> 반복 실험에 사용 된 각 애벌레에 대해 3.1-3.5 단계를 반복합니다. </li></ol>Hemocytes의 르 &quot;&gt; 4. 정량화 <ol><li> hemolymph 샘플을 혼합 사전에 계산 hemocytes에 바로 부화 솔루션입니다. 이 치료 hemocytes의 적절한 분리를 허용하고 거리며 걷게 방지 할 수 있습니다. </li><li> hemocytometer로 부화 솔루션과 혼합 hemolymph 샘플의 10 μl를 전송하는 깨끗한 피펫 팁을 사용합니다. </li><li> 복합 현미경 사용 세고 큰 사각형의 적어도 15 (사각형 하나의 영역 0.1 mm : 0.04 mm 2, 깊이)에 hemocytes의 수를 기록 hemocytometer의 중심 그리드 (그림 3). 15 사각형의 hemocytes의 수의 총 합계를 구하려면이 값을 추가합니다. </li><li> 철저하게 증류수와 탈 이온수로 세척 병을 사용하여 hemocytometer 및 커버 슬라이드를 씻어 각 샘플 사이의 Kimwipes (킴벌리 - 클락)와 건조 닦으십시오. </li><li> 반복은 각 hemolymph 샘플 4.1-4.4 단계를 반복합니다. </li><li> hemolymph volum의 ML 당 hemocytes의 평균 수를 계산각 모충을위한 e는로는 다음과 같습니다 </li></ol> hemocytometer 그리드의 각 광장의 총 부피 (0.04 mm 2 영역) × (0.1 mm 깊이) = 0.004 mm 3 × 15 사각형 = 0.06 mm 3 모든 15 계산 사각형의 = 총 볼륨입니다. (모든 15 계산 사각형의 / 전체 볼륨 계산 15 사각형의 hemocytes의 총 개수의 합) × 2 희석 계수 = hemocytes / mm 3의 수 x 1,000 = hemocytes / hemolymph의 ML의 수.

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<li>Beetz, S., Holthusen, T. K., Koolman, J., Trenczek, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+hemocyte+counts+with+different+developmental+parameters+during+the+last+larval+instar+of+the+tobacco+hornworm%2C+Manduca+sexta%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Insect+Biochem.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Correlation of hemocyte counts with different developmental parameters during the last larval instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta.</a> Arch. Insect Biochem. Physiol. 67 (2), 63(2008).</li>
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</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

의학적으로 중요한 곤충 lepidopteran 모델 곤충에서 hemocytes를 추출하기위한 방법은 이전 9, 14보고되었습니다. Hemocyte 추출 방법은 곤충 종에 따라 조정되며, 곤충 및 형태학의 기능의 발달 단계. 예를 들어, Manduca의 애벌레에서 hemolymph 절연은 쉽게 복부 15의 끝 부분 곡선 경적을 snipping 의해 수행 할 수 있습니다. 슬러그 유충 (Limacodidae)이 복부 구조를 부족하기 때문에, 우리는 소규모 현장 수집 유충에서 hemolymph 추출을위한 별개의 프로토콜을 개발했습니다. 이 방법은 더 실험에 저장하거나 처리 할 수​​ hemocyte 세포의 큰 숫자를 포함하는 충분한 hemolymph 볼륨을 분리에 대한 효율적인 증명한다. 또한, 성인 모기의 hemocyte 컬렉션은주의 다리의 제거, 날개와 복부 16 팁을 포함 시간이 많이 소요 단계를 포함 </suP&gt;. 비슷한 단계의 프로토콜에 필요하...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 </td></tr><tr><td> Micropipette 풀러 </td><td> 셔터 악기 </td><td> P-1000 </td><td></td></tr><tr><td> 붕규산 유리 관 </td><td> 셔터 악기 </td><td> B100-50-10 </td><td> OD : 1.0, ID : 0.50 mm </td></tr><tr><td> 그레이스의 중간 </td><td> 시그마 </td><td> G8142 </td><td></td></tr><tr><td> 태아 소 혈청 </td><td> 온도 피셔 과학 </td><td> SH3007102 </td><td> inactivated 열 </td></tr><tr><td> 뒤몽 # 5 포셉 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 11252-40 </td><td></td></tr><tr><td> Neubauer hemocytometer </td><td> Hausser 과학 </td><td> 3200 </td><td></td></tr><tr><td> 플라스틱 tubiNG </td><td> 트라이 테크 </td><td> TT-3-32OD </td><td> OD : 3 / 32 인치, ID : 1 / 32 &#39; </td></tr><tr><td> 유리 의료 주사기 </td><td> 포르투나 Optima </td><td> D-97877 </td><td> 50 ML 볼륨 </td></tr><tr><td> 무딘 끝 바늘 </td><td> 소형 부품 </td><td> NE-162PL-25 </td><td> 16 게이지 X 1 &quot;길이 </td></tr></tbody></table>

야생 유충에서 hemocytes을 추출하기위한 간단한 프로토콜

A Simple Protocol for Extracting Hemocytes from Wild Caterpillars

곤충 hemocytes은 (포유류의 백혈구에 해당) 곤충의 수명주기에 걸쳐 한 여러 생리적 과정에 중요한 역할을한다. Lepidoptera (나방과 나비)와 Diptera (진정한 파리)의 주문에 속하는 곤충의 애벌레의 단계에서 hemocytes은 림프의 선 (전문 조혈 장기) 또는 배아 세포로부터 형성되어 성인 무대에를 통해 수행 할 수 있습니다. 배아 hemocytes는 염증이 기간 동안 개발과 chemotaxis 규정 동안 세포 이주에 참여하고 있습니다. 또한 세포 apoptosis에 참여하고 embryogenesis 2 필수적입니다. Hemocytes는 세포 확산, 세포 집합, nodules의 형성, phagocytosis 및 외국 침략자 3의 캡슐화와 같은 여러 기능을 포함하는 곤충 본래 면역 반응의 세포 팔을 중재. 그들은 같은 PR로도 감염시 특정 곤충 체액 방어에서 일을 꾸미고 책임이 있습니다항균 펩티드 및 기타 이펙터 분자 4, 5 oduction. Hemocyte 형태 및 기능은 주로 과일 파리, Drosophila melanogaster 6, 7, 모기 Aedes aegypti 및 아노펠레스 gambiae 8, 9, 담배 hornworm, Manduca sexta 10, 11을 포함, 유전자 또는 생리 곤충 모델에서 공부하고 있습니다. 그러나, 작은 정보는 현재 다양성, 분류, 형태, 특히 비 모델 곤충 종, 야생 12 일부터 수집 된 사람들의 hemocytes의 기능에 대해 존재합니다. 여기 야생 유충에서 hemocytes를 추출하기위한 간단하고 효율적인 프로토콜을 설명합니다. 우리는 어미에서 두 번째의 음절 instar Lithacodes fasciola (노란색 어깨 슬러그 나방) (그림 1)과 Euclea delphinii (가시 오크 총알) 유충을 (Lepidoptera : Limacodidae)를 사용하여 보여주고 hemolymph의 충분한 볼륨 (곤충 혈액)격리 및 hemocyte 번호는 개인 애벌레에서 계산 할 수 있습니다. 이 방법은 효율적으로 이러한 종뿐만 아니라 현장에서 수확 기타 관련 lepidopteran의 유충에 hemocyte 유형을 공부하는 데 사용할 수 있습니다, 또는 그것은 쉽게 미생물 또는 기생 생물 13 감염에 따라 hemocyte 기능을 조사하기위한 면역 assays과 함께 사용할 수 있습니다.

여기에 설명 된 프로토콜은 각각의 유충에서 곤충 hemolymph의 10-20 μl의 최소 볼륨의 수집 할 수 있습니다. 이 방법을 사용하여 수집 Hemocytes은 셀 거리며 걷게, melanization 결함, 조직 파편이나 기타 오염 물질 무료입니다. 따라서 hemocytes은 쉽게 관찰하고 현미경으로 계산하고, 여러 곤충은 몇 hosur에서 관찰 할 수있다 할 수 있습니다. 우리는 우리의 샘플에서 hemocytes의 대부분이 plasmatocytes 3 ​​(hemocytes이 비대칭 확산) (그림 4)로 구성되어 있다고 관찰했다. 현재 세부 (Stoepler 외., 게시되지 않은 데이터)에서 이러한 유충에있는 다른 hemocyte 유형을 특성화하고 있습니다. 여기에 설명 된 방법은 현장 실험에서 수집 한 개인 유충에 대한 총 hemocyte 숫자를 계산을위한 신속하고 정확한 방법을 제공합니다. hemo...

곤충 hemocytes는 곤충 개발의 모든 단계에 걸쳐 면역 및 비 면역 모두 여러 중요한 기능을, 실시합니다. hemocyte 유형 및 기능의 현재 우리의 지식은 곤충 유전자 모델에 대한 연구에서 비롯됩니다. 여기, 우리는 추출 정량화과 야생 유충에서 hemocytes을 시각화하는 방법을 제시한다.

야생 유충에서 Hemocytes을 추출하기위한 간단한 프로토콜

곤충 혈구(포유류의 백혈구에 해당)는 곤충의 생애 주기 전반에 걸쳐 여러 생리적 과정에서 중요한 역할을 합니다...

이 실험 절차의 전반적인 목표는 야생 나비 애벌레로부터 혈구(hemocytes)를 추출하고 시각화하여 그 수를 세는 것입니다. 이를 위해 먼저 애벌레를 얼음 위에 올려 마취시킨 후, 항응고제가 포함된 완충 용액을 주입하고 다시 얼음 위에 두어 추출 전 혈구가 혈액 순환계로 다시 진입하도록 합니다. 두 번째 단계는 깨끗한 메스를 사용하여 애벌레의 후단부에 얕은 절개를 만드는 것입니다.다음으로, 부드러운 핀셋을 사용하여 애벌레를 조심스럽게 짭니다. 그런 다음 마이크로 피펫을 사용하여 버퍼 용액과 혈림프 혼합액을 흡입하여 마이크로 원심분리 튜브에 수집합니다. 마지막 단계로 혈림프 용액을 동일한 부피의 버퍼 용액과 부드럽게 섞은 후, 용액 10 µL를 혈구계(hemo cytometer)에 옮겨 혈구(he cytes)의 수를 시각화하고 측정합니다.궁극적으로, 이 혈구 추출법은 다양한 나비목 유충 종의 혈구 수를 측정하는 빠르고 효과적인 방법으로 활용될 수 있으며, 곤충의 세포성 면역 반응의 생리학적 측면을 조사하는 도구로 보존될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 전흉부(prothorax)가 매우 축소된 유충에서도 혈구(hemocytes)를 추출하는 데 사용할 수 있다는 점입니다. 다른 유충 모델의 경우, 전흉부 중 하나를 절단하여 출혈을 유도한 후 흘러나오는 액체에서 혈구를 추출합니다.또한, 이 기술은 다른 곤충 종으로부터 혈세포를 추출하는 데 사용할 수 있습니다. 이 방법은 식단 품질, 발달 단계 또는 다양한 병원체 노출에 따라 곤충의 세포성 면역 반응이 어떻게 변화하는지와 같이 생태 면역학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 활용될 수 있습니다. 이 절차를 시작하려면, 혈세포 추출 전 20분 동안 얼음 위에 올려 냉각시켜 끝에서 두 번째 령(penultimate instar)의 유충을 마취시키십시오.그 후, 깨끗한 16 gauge 모세관 바늘의 뭉툭한 끝부분을 20 milliliter 유리 주사기에 연결된 튜브에 끼웁니다. 수집 용액이 들어 있는 튜브는 실험대 위에 열어 둡니다. 모세관에 약 10 to 15 microliters의 완충액을 천천히 채웁니다.그런 다음 해부 현미경 옆에 놓인 찰흙 뭉치 위에 바늘을 올려둡니다. 애벌레를 페트리 접시에 넣습니다. 구형 구조물들이 명확하게 보일 수 있도록 곤충을 옆으로 눕혀 배치해야 합니다.해부 현미경으로 관찰하면서 핀셋으로 애벌레를 고정하고, 곤충의 큐티클이 일반적으로 더 부드러운 구형 마디 중 하나에 바늘을 가까이 댑니다. 그런 다음 모세관 바늘을 곤충의 몸체에 대고 부드럽게 누릅니다. 바늘이 큐티클을 관통하면 용액 전량을 애벌레에게 주입합니다.주입 후 애벌레의 몸이 부풀어 오르겠으나, 터지거나 액체가 새어 나오지 않아야 합니다. 애벌레를 얼음이 담긴 페트리 접시로 옮기십시오. 완충액이 상처 부위로 새어 나가는 것을 방지하기 위해 곤충의 등 쪽이 위로 향하게 배치하십시오.hemo limp 추출에 사용된 각 애벌레에 대해 주입 과정을 반복합니다. 그 다음 모든 곤충을 얼음 위에서 30분 동안 냉각시킵니다. 이제 애벌레를 해부 현미경 아래의 페트리 접시에 놓습니다.멸균된 메스를 사용하여 장이나 다른 내부 기관이 손상되지 않도록 주의하며 애벌레의 후방 부위에 약 2~3 mm 길이의 얕은 절개를 가합니다. 그다음, 유연한 플라스틱 핀셋으로 애벌레를 부드럽게 짜내면서 10 µL 피펫 팁을 사용하여 혈림프 혼합물을 약 10~20 µL 수집합니다. 이때 내부 조직이 손상되지 않도록 다시 한번 주의하십시오.그 후, 애벌레의 잔해를 폐기하십시오. 각 애벌레로부터 채취한 혈림프를 라벨이 부착된 개별 실리콘 처리된 0.5 milliliter 미세 원심분리 튜브에 수집하십시오. 그런 다음, 개별 애벌레에서 수집한 각 혈림프 샘플에 배양액 약 10 to 20 microliters를 첨가하십시오.이 단계에서는 혈림프 샘플을 항상 얼음 위에 보관하십시오. 혈구 수(hemocytes)를 측정하기 직전에 혈림프 샘플과 배양액을 혼합하십시오.이 처리는 혈구의 적절한 분리를 가능하게 하고 응집을 방지합니다. 깨끗한 피펫 팁을 사용하여 배양액과 혼합된 혈림프 샘플 10 µL를 혈구계수기에 옮깁니다. 그다음 복합 현미경을 사용하여 혈구계수기 중앙 격자의 큰 정사각형 최소 15개에 있는 혈구 수를 세어 기록합니다.이 값들을 더하여 15개 구역에 있는 혈구 세포 수의 총합을 구합니다. 다음으로, 증류수 및 탈이온수가 들어 있는 세척병을 사용하여 혈구계수기(hemocytometer)와 커버 슬라이드를 철저히 헹굽니다. 그런 다음 Kim wipes로 닦아 건조시킵니다.나머지 혈림프 샘플에 대해 동일한 절차를 반복하고, 각 애벌레의 혈림프 부피 1mL당 평균 혈구 수를 계산합니다. 명시야 현미경 이미지는 20배 배율에서 관찰한 nucle hin ai 애벌레로부터 추출된 혈구를 보여줍니다. 이 절차를 통해 수집된 혈구는 세포성 면역 반응을 연구하거나 식세포 작용, 캡슐화 및 pH 산화효소 활성과 같은 분석법을 설정하는 데 사용할 수 있습니다.또한, 곤충의 이러한 세포성 면역 반응을 연구하기 위해 사용하지 않은 RNA, DNA 및 단백질을 추가 분석용으로 수집할 수 있습니다. 이 영상을 시청하고 나면, 혈림프 추출을 목적으로 애벌레에 주사하는 방법과 살아있는 혈구 세포가 포함된 혈림프를 수집하는 방법을 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 동영상은 하와이 밥테일 오징어에서 hemocytes (혈액 세포)을 구하는 방법을 보여줍니다...

하와이 밥테일 오징어에서 Hemocytes 구하기 Euprymna scolopes와 공생이 아닌 공생 박테리아들의 준수를 관찰

A는 설명 모기 hemocytes를 수집하고 얼룩 아직 정확한 방법을 단순화. 우리의 방법은 Aedes 모기에 hemocytes의 깨끗한 준비를 분리 높은 사출 기술의 정확성과 재관류의 단순 결합. 이 방법은 연구가 필요한 hemocytes의 유형에 대한 지식과 풍부한을 용이하게합니다.

옐로 피버 모스키토에서 Hemocytes를 수집 및 스테 이닝을위한 프로토콜 Aedes aegypti</em

이 동영상은 파리 유충의 주요 조혈 부위인 초파리 림프샘에 대해 설명하고, 면역조직화학 및 형광 이미징을 위해 장기를 해부하고 장착하는 프로토콜의 예시를 보여줍니다.

유충 림프선 박리: 초파리 혈구 생산 기관 분리

초파리 혈림프는 혈액과 간질액의 역할을 하며 유충과 성충 단계에서 몸 전체를 순환합니다. 이 비디오는 순환 세포를 정량화하기 위해 유충 혈림프를 수집하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

큐티클 파괴: 초파리 유충에서 혈림프를 수집하는 방법

이 비디오는 초파리 유충의 조혈 주머니에서 혈구 재접착을 평가하는 혈구 교란 분석을 보여줍니다. 기계적 교란은 상주 혈구를 방출하여 순환 혈구 수를 증가시킵니다. 회복 후, 상주 혈구의 재부착이 확인되어 가역성을 보여줍니다.

조혈낭에 대한 적세포 재부착을 평가하기 위한 Hemocyte Disturbance Assay

초파리 혈액 세포 또는 혈구는 거주 부위와 순환 사이를 순환합니다.  유충에서 상주(고착성) 혈구는 유도성 미세환경인 Hematopoietic Pockets에 국한되는 반면, 순환하는 혈구는 혈림프에서 자유롭게 움직입니다. 이 프로토콜의 목표는 행동적으로 다르지만 상호 변화하는 이 두 가지 혈구 집단의 표준화된 분리 및 정량화입니다.

의 시금 혈액 세포 집단<em&gt; 초파리</em&gt; 유충

초파리와 포유류의 조혈 시스템은 조혈을 연구하기 위해 초파리에게 매력적인 유전 적 모델을 만들고, 많은 일반적인 기능을 공유 할 수 있습니다. 여기에서 우리는 면역 조직 화학의 주요 애벌레 조혈 기관의 해부 및 장착을 보여줍니다. 우리는 또한 순환 혈구 세포와 고착 결정 세포 등 다양한 애벌레 조혈 구획을 분석하는 방법을 설명합니다.

방법은 림프 글 랜드와 혈구 세포에서를 검사합니다<em&gt; 초파리</em&gt; 애벌레

이 메서드는 3 차원 (3D) 모델 곤충 세포로 병원 체 침입을 시각화 하는 방법을 보여 줍니다. 초파리 애벌레에서 hemocytes 바이러스 성 또는 세균성 병원 체, ex vivo 또는 vivo에서감염 되었습니다. 감염 된 hemocytes 다음 고정 되었고 confocal 현미경 및 후속 3D 셀룰러 재건 이미징 스테인드.

미생물 감염 및 분석에 대 한 초파리 melanogaster 애벌레에서 Hemocytes의 추출

진드기 혈 림프의 분석은 몇몇 병원 체가 질병을 일으키는 원인이 되는 방법에 대 한 정보의 중요 한 근원 및 어떻게 진드기 면역 학적으로이 감염에 반응 하는지 나타냅니다. 본 연구는 곰 팡이 propagules 접종 하 고 rhipicephalus 마이크로 플러스 튀 여성에서 혈 림프를 수집 하는 방법을 보여줍니다.

무척 추 병리학 연구를 향한 Rhipicephalus 마이크로 플러스 진드기에 Metarhizium 발 파 포자의 혈 림프 수집 및 접종을 공개

여기서, 우리는 1) 연방 멸종 위기에 처한 마이애미 블루 나비(Cyclargus thomasi bethunebakeri)의실험실 포로 전파에 대한 프로토콜을 제시하고, 2) 미숙한 발달 시간 및 애벌레 스타디아의 수와 같은 기본적인 생활 역사 정보를 평가. 두 방법 모두 다른 ex situ 보존 프로그램과 함께 사용하도록 조정할 수 있습니다.

생명역사 지식과 효과적인 Ex Situ 보존 기술을 향상시키기 위한 위험에 처한 나비 포로 전파 프로그램

우리는 후속 분석을 위해 작은 절지동물에서 정량화 가능한 혈림프를 효율적으로 수집하는 방법을 설명합니다.

작은 절지동물에서 체림프를 수집하기 위한 정확하고 정량화 가능한 방법

배우세요 야생 애벌레에서 혈구를 추출하고 시각화 및 정량화하는 방법을. 이 기술은 곤충 면역학 및 생리학 연구에 필수적인 도구로 활용됩니다.

야생 유충에서 Hemocytes을 추출하기위한 간단한 프로토콜

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