Name: Lipoaspirate에서 수확 지방 - 파생 Stromal 셀을 사용하여 임계 크기 Calvarial 결함 모델의 수리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-31T10:03:00.000+00:00
Duration: 11 min 31 s
Description: 배우세요 지방유래 기질세포 분리 및 4mm 임계크기 두개골 결손 모델에서 골재생을 평가하는 방법을. 이 기술은 재생의학 및 조직공학 연구에 활용됩니다.

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우리는 우리의 연구의 지원과 협력 박사 조지 커먼즈 박사 딘 Vistnes 감사드립니다. 세인트 조셉 머시 병원 GME에서 지원하는이 작품은 치과와 Craniofacial 연구 기금 1 R21 DE019274-01, R01EB009689 및 RC2 DE020771-02, MTL 박사 현에 소아 재생 의료에 대한 오크 재단과 Hagey 연구소의 국립 연구소에 의해 지원됩니다 .

1. 셀 절연 및 확장 <ol><li> 모든 환자의 동의 및 실험 프로토콜은 스탠포드 대학 (Stanford University) 기관 검토위원회 (프로토콜 # 2188과 # 9999)에 의해 검토 및 승인되었습니다. </li><li> 일반 / 국소 마취하에 선택 lipoaspiration 절차에서 인간의 피하 지방 조직을 가져옵니다. </li><li> lipoaspirate 두 레이어 (그림 1A)이 될 것입니다. 표면에 뜨는는 가공 세포 물질의 대부분이 포함되어 있습니다. 아래 층은 대부분 stromal 세포가 어느 계층에서 수확 할 수 지방 - 유래. 생리 주입하지만, 수율은 표면에 뜨는에서 훨씬 더 있습니다. </li><li> stromal 혈관 분율 (SVF)를 분리하려면, 1X의 동등한 볼륨 생리 (PBS)가 betadine없이 1X PBS (1 개)의 동등한 양에 이어 2.5 % betadine (X2)를 포함하는 인산염 버퍼와 깊이 lipoaspirate을 씻는다. 침전물을 세척 할 수 있습니다. </li><li> 멸균 테를 유지하기 위해주의가공 인체 조직과 오염 등의 과정에서 chnique가 발생할 수 있습니다. </li><li> 맨 아래 레이어를 기음과 각 세척 후에는 폐기합니다. </li><li> 나누어지는 50 ML BD 팔콘 원뿔 튜브에 지방 조직의 15 ML. </li><li> 37 번 행크의 균형 소금 솔루션의 필터링 0.075 % 유형 II collagenase의 동일한 볼륨 (15 ML) (HBSS) ° C 물 목욕에 60 분을위한 지속적인 교반 이하 (약 180 / 분을 흔드는)와 지방 조직을 소화 - 각 튜브마다 15 분 환기. </li><li> 15 ML PBS는 ° C는 고밀도 SVF 펠릿을 얻기 위해 4시 5 분에 1,000 rpm으로 10 % (태아 소 혈청) FBS, 그리고 원심 분리기를 포함하는과 효소 활동을 중화. 펠렛은 지방 - 파생 stromal 세포와 적혈구가 혼합 된 것입니다. </li><li> 펠렛을 방해하지 않고 표면에 뜨는 폐기하십시오. </li><li> 기존의 성장 미디어 10 ML (Dulbecco의 수정 된 이글 매체 [DMEM] / 10 % FBS / 1퍼센트 페니실린 - 스트렙토 마이신 솔루션)에 펠렛을 Resuspend. </li><li> 필터 suspen<html> 세포 파편을 제거하는 100 μm 나일론 셀 스트레이너를 통해 시온. </li><li> 한 번에 깊게 50 ML 원뿔에 3 관을 결합합니다. 4 ° C.에서 5 분 1,000 rpm으로 원심 분리기 </li><li> 펠렛을 방해하지 않고 표면에 뜨는 폐기하십시오. </li><li> 기존의 성장 미디어의 5 ML에있는 펠릿을 Resuspend </li><li> 한 10cm 판 또는 15cm 접시를위한 다섯 50 ML conicals 당 50 ML conicals 조화를 이루고 있습니다. </li><li> 37 ° C/21 % O 2, 5 % CO 2에서 밤새 차 문화를 설정합니다. </li><li> 박 부화 후, 잔여 비 점착성의 적혈구를 제거하는 PBS로 광범위하게 판을 씻는다. 그 결과 세포 인구는 지방 - 파생 stromal 세포입니다. </li><li> 37 ° C/21 % O 2, 5 % CO 성장 미디어의 2 자연 차별화를 방지하기 위해 하위 합류 수준에서 세포를 유지하고 있습니다. 세포는 일반적으로 50 % 합류에 도금 할 때 정기적 인 성장 미디어의 모든 3~4일 분할해야합니다. </li></ol>ve_title &quot;&gt; 2. 발판 준비 <ol><li> 치과의 학교 - 공사장 공중 발판는 캘리포니아 대학에서 박사 민 리, 로스 앤젤레스에 의해 만들어졌다. </li><li> PLGA의 공사장 공중 발판은 용매 캐스팅와 미립자 침출 과정에서 15분의 85 폴리 (락트산 - 공동 glycolic 산성) (고유 점도 = 0.61 DL / g, 버밍엄 (Birmingham)의 폴리머)에서 가공되었습니다. </li><li> PLGA / 클로로포름 솔루션은 92% 다공성 (볼륨 분율) 및 테플론 금형의 얇은 시트로 압축을 얻기 위해 200-300 μm 직경 자당과 혼합되었다. </li><li> 밤새 동결 건조 후, 공사장 공중 발판은 자당을 분해 두 번 증류 (DD) H 2 O의 세 변화에 익숙해했고, 부드럽게 미세 팁 주걱으로 테플론 판에서 삭제되었습니다. </li><li> 미립자 침출 후, 모든 공사장 공중 발판이 ddH 2 O. 세 린스 그 다음, 30 분 각 50 %, 60 % 및 70 % 에탄올에 빠져 소독 된 </li><li> 모든 공사장 공중 발판은 층류의 후드 아래에 건조되었다. </li><li> 후 비계 제조, Scaffolds는 인회석으로 코팅했다. <ol class="ualpha"><li> SBF (시뮬레이션 신체 유체) 솔루션은 그 인간 혈장의 5 배이었다 이온 농도로 준비했습니다. 모든 솔루션은 0.22 μm PES 멤브레인 (Nalgene)를 통해 필터링 무균했다. 바로 코팅 공정 전에 PLGA의 공사장 공중 발판이 으러 및 코팅 균일 성을 향상시키기 위해 글로우 방전, 아르곤 플라즈마 에칭 (Harrick 과학)를 받게되었다 건조. </li><li> 에칭 PLGA의 공사장 공중 발판이 후 37 SBF에 incubated되었습니다 ° MG이 다음 12 시간에 물 외피 보육 내부 C, +와 HCO 3-37에서 다른 12 시간을 무료로 SBF 2 ° C 부드럽게 저어 아래에. </li><li> 코팅 PLGA의 공사장 공중 발판은 층류 후드에 건조 및 70 % 에탄올로 소독을 초과 나트륨 염화물 솔루션을 씻어하기 위해 멸균 ddH 2 O로 부드럽게 헹구어했다. </li><li> 인회석 코팅의 무결성은 스캔 전자 현미경 (SEM)으로 분석되었다. 인회석 코팅 SCAffolds는 SEM 명세서 (테드 펠라)에 장착하여 전도성을 향상시키기 위해 탄소로 코팅되었습니다. 보조 전자 모드는 SEM (페이 / 필립스 XL-30) 관찰 기간 동안 적용되었습니다. 에너지 분산 X-선 스펙트럼은 인회석 구조의 원소 구성을 확인하기 위해 얻은 것입니다. </li></ol></li></ol> 3. 셀 심는 <ol><li> 하위 합류 수준에 도달시, PBS (X2)으로 세포를 씻고 trypsinize. </li><li> 퍼 뜨리고에 대한 수량화하기 위해 셀을 카운트 </li><li> 1.5 × 10 5 세포와 사전 컷 4.0 mm 직경의 공사장 공중 발판로 씨. <ol class="ualpha"><li> 96 - 웰 플레이트 잘에 장소 개별 발판 </li><li> 미디어의 20 μl 당 약 1.5 × 10 5 세포의 농도와 일반 성장 미디어에서 다시 일시 중지 세포 </li><li> 30 분을위한 세포 배양 배양기에 Pipet 20 바로 발판 위에 μl과 장소를. </li><li> 30 분 후, 미디어 200 μl를 추가하고 셀 품다 할 수수술에 대한 발판에서 하루 아침에 전 </li><li> 그것은 세포의 충분한 숫자를 퍼 뜨리고로 발판 위에 세포의 접착력은 대부분의 발판에 첨부 할 수 있도록합니다 보장 할 필요는 없습니다. 이것은 bioluminescence와 조직 학적 분석 생체에 우리가 실험실에서 검증되었습니다. </li></ol></li></ol> 4. Calvarial 결함 및 생체 주입에서의 창조 <ol><li> 마취 성인 (60 하루 미만) 마취 칵테일 CD-1 누드 마우스. (케타민 / xylazine / acepromazine) 50 % 농도 (0.9 % NaCl로 1시 1분 희석)에서 또는 기관 프로토콜 당 권장 마취 처방 당. hASCs가 면역 반응을 일으키지 않도록 이러한 마우스는 athymic 있습니다. <ol class="lalpha"><li> 용량 : 케타민 염산염 (80 MG / kg), Xylazine (2.5 밀리그램 / kg) Acepromazine (2.5 밀리그램 / kg) </li><li> 효과의 기간 : 약 30 분 </li></ol></li><li> 수술 동물을 내리면 t 수술을 소독betadine과 알코올 (X3)와 사이트 전에 오른쪽 정수리 뼈를 노출 동물의 두피에 중간 선 시상 절개에 연고를 마우스 눈을 다룹니다. 무딘 해주세요 (그림 1B)와 오른쪽 정수리 뼈에서 머리를 제거합니다. </li><li> 살균 다이아몬드 코팅 trephine 드릴 비트를 사용하여 오른쪽 비 봉합 관련 정수리 뼈의 일방적 인 4 mm 전체 두께 결함을 만듭니다. 익스트림주의는 마우스 calvarial 두께로 기본 경질의 팀 이잖아요 (그림 1B)를 방해하지 않도록해야합니다 &lt;0.3 mm입니다. </li><li> 주입하기 전에 중간 유래 성장 인자의 전달을 방지하기 위해 멸균 PBS로 공사장 공중 발판을 씻어. </li><li> 결함에 비계를 놓으십시오. </li><li> 마지막으로, 피부가 폐쇄 봉합 및 설립 수술 프로토콜을 당 동물을 모니터링 할 수 있습니다. </li><li> 포스트 operatively - 예를 들어 필요에 따라 동물 보호 프로토콜의 지시에 따라 설립 진통제를 사용합니다. buprenorphine 0.1 MG / Kg. </li></ol> 5. 뼈 같은 형성의 정량화 <ol><li> MicroCT는 마우스에서 수행 된 후, 3 차원 이미지는 이전에 다음 1에 설명 된대로 MicroView 소프트웨어를 사용하여 복원되었습니다. </li><li> 어도비 포토샵을 사용하여 이미지의 표준 높이로 크기있었습니다. </li><li> 마술 지팡이 기능을 사용하면, 픽셀이 calvarial 결함 측정 하였다. </li><li> 결함의 비율 치료는 이후 중부 표준시 스캔은 calvarial 결함 영역을 측정 및 픽셀 수를 결정하고 원래 결함의 픽셀 수로 나누어 계산 한 </li><li> MicroCT를 사용할 수없는 경우 따라서, 대안은 어도비 포토샵을 사용하고 조직학에 대한 결정 시간 지점에서 calvaria를 수확하고 있습니다. </li><li> 뼈 같은 형성을 나타냅니다 아닐린 블루와 Pentachrome 같은 조직 학적 얼룩을 사용하여 결함의 범위를 따라 여러 섹션 스테인드해야 </li><li> 어도비 포토샵이 아닌 모든 영역에서 자르기를 사용하여calvarial 결함에 </li><li> 마법의 지팡이 기능을 사용하여 결함의 영역에 드 노보 뼈 형성 픽셀 수를 결정하고 컨트롤 또는 기타 변수를 비교합니다. </li></ol> 6. 대표 결과 지방 조직은 임상 응용 프로그램에 대한 전구 세포의 생성에 중요한 역할을 제공 할 수있는 가능성이 있습니다. 지방 조직은 최소한의 병적 상태와 사망률과 관련된 비교적 간단한 절차에 수확 할 수있는 즉시 사용할 수 공급이 점에서 독특한 장점이 있습니다. 조직 수확 및 수집되면, 우리의 프로토콜은 그림 2에 설명되어 있습니다. 지방 - 파생 stromal 세포 세척 단계 시리즈 collagenase를 소화하고, 원심 분리를 통해 분리되어 있습니다. 세포 문화에 도금되면, 그것들은, 확장 체외에서 다양한 차별화 프로토콜에 배치하거나, ​​생체에 직접 배치 할 수 있습니다. C4mm 중요한 크기 calvarial 결함 reation은 우리의 지방 유래 stromal 세포의 osteogenic 차별화 능력을 테스트하는 생체 모델에서 쉽게 접근 할 수와 재현 제공합니다. MicroCT의 사용을 통해, 우리는 생체에서 골격 조직의 형성에 따라 우리의 개입의 진행 상황 (그림 3)을 추적 할 수 있습니다. 중요한 크기 calvarial 결함 동물의 수명 내에 치유되지 않으며, 우리는 결함의 약 90 %가 팔주 주위에 특허 유지를 참조하십시오. 비계 자체가 (토론 참조) osteogenic 유도 특성을 가지고 있으며 일부 뼈 재생을 유도 할 수있는 능력을 보여 주었다. 세포가없는 비계 배치의 전형적인 결과는 결함의 삼분의 일을 주위에 팔주에 드 노보 뼈 형성을해야합니다 것으로 나타났습니다. variab가 있지만 지방 - 파생 stromal 세포의 확대로 완전히 결함의 3 분의 2 이상은 8 주변 주에서 뼈의 재생을 보여줍니다각 동물과 수술 사이 ility. 골격 조직의 형성은 조직 학적 소견을 통해 정량, 전형적인 결과는 아닐린 블루와 Pentachrome의 착색 (그림 3C)를 통해 ASCs과 샘플의 증가 뼈 같은 형성을 표시 할 수 있습니다. 또한, 우리는 (그림 3D) 주입 된 인간의 세포가 calvarial 결함에 드 노보 뼈 형성 지역 근처에 이주에 생체에 착색을 보여 GFP-라벨 hASCs의 사용을 통해 기본 드 노보 뼈의 형성에 기여하는 것을 보여 . 또한, 우리는 결함의 영역 (그림 3E)에 인간의 세포 생존과 기여를 보여 인간의 특정 항체와 immunohistochemistry를 사용합니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig1.jpg" /> 그림 1 A -. lipoaspirate은 두 층이 있습니다. 상단 층은 adipocytes와 PR의 대부분을 포함아래 층은 lipoaspiration 과정에서 사용 된 염분을 포함하는 동안 세포 자료를 ocesses. B - 기본 경질 한 학교의 중단없이 오른쪽 정수리 뼈, 4mm 중요한 크기 calvarial 결함의 후속 작성을 분리 할 수​​있는 머리를 통해 중간 선 절개를 통해 calvarial 결함의 생성. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig2.jpg" /> 그림 2.의 확장, 차별화 및 체외 및 생체 내 사용에 지방 - 파생 stromal 세포의 분리에서 lipoaspirate의 수확 및 응용 프로그램의 개요. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig3.jpg" /> 그림 3. hyd을 통해 ASCs의 응용 프로그램과 함께 중요한 크기 calvarial 결함 생체 치료에 게재 A-MicroCTroxyapatitie 비계 (하단 행). ASC 그룹에서 크게 증가 치유를 표시하는 MicroCT에서 뼈의 치유의 정량화 - 컨트롤 세포 (중간 행) B없는 발판의 위치를​​ 가진 비계 및 결함 (상단 행) 및 결함을 포함하지 않습니다. C - 조직학은 아닐린 블루와 Pentachrome 염색을 통해 ASC 그룹 (하단 행)의 증가 뼈 같은 형성을 보여주고 있습니다. 아닐린 블루를 들어, 뼈 같은 얼룩 푸른 색과 어두운 Pentachrome, 뼈 같은 얼룩 노란색하십시오. D - GFP으로 표시 hASCS는 비계에 놓는와 배치 calvarial 결함으로와 이주에 희생되었다. 얼룩은 결함의 영역에서 재생에 기여 인간의 세포를 게재 할 수 GFP 표시 항체로 이루어졌다. E -. 이주의 결함의 영역에서 인간 세포의 유행을 보여주는 인간 핵 항원 immunohistochemistry은 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4221/4221fig3large.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> .

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</ol>

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의 고립 때문에 지방은 - 파생 lipoaspirate에서 stromal 세포 2를,이 세포는 세포 lineages 다양한으로 차별화되었습니다. 지방 조직은 mesodermal 기원에서이므로, multipotent 지방 파생 stromal 세포 가능성이 mesodermal 계보 (Lineage)에 대한 응용 프로그램 가장 효과적입니다. 골격 조직을 생성하는 기능을 기증 autograft에 대한 사이트 및 감염, 거부, 시간 3 이상 고장 등의 합성 재료의 고유 제한 부족 주어진 특히 중요합니다. 지방 파생 stromal 세포는 수술 수확 당 상대적으로 큰 항복 4 잠재적 인 자생 multipotent 세포 라인을 제공합니다. stromal 혈관 분수와 지방 세포 조직을 처리하는 동안, 그것은 뛰어난 살균 기술을 유지하는 것이 중요합니다. lipoa의 대량 자연 주어진 주요 문화의 오염의 큰 위험이 있습니다무균 세포 배...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 : </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 수확을 Lipoaspirate </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Gibco </td><td> 10010-023 </td><td></td></tr><tr><td> 행크의 균형 소금 솔루션 </td><td> Cellgro </td><td> 21-023 - CV </td><td></td></tr><tr><td> Collagenase </td><td> 시그마 </td><td> C6885-500MG </td><td></td></tr><tr><td> 셀 스트레이너 100 μm </td><td> BD 팔콘 </td><td> 352360 </td><td></td></tr><tr><td> Steri-500 ML 0.22 μm 필터 </td><td> Millipore </td><td> SCGPT05RE </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Calvarial 결함 </td></tr><tr><td> Z500 브러시리스 MicromotorsUM50C </td><td> NSK </td><td> NSKZ500 </td><td></td></tr><tr><td> 원형 나이프 4.0 mm </td><td> Xemax 외과 </td><td> CK40 </td><td></td></tr></tbody></table>

lipoaspirate에서 수확 지방 - 파생 stromal 셀을 사용하여 임계 크기 calvarial 결함 모델의 수리

Repair of a Critical-sized Calvarial Defect Model Using Adipose-derived Stromal Cells Harvested from Lipoaspirate

Craniofacial 골격 수리 및 재생은 줄기 세포를 이용한 세포 기반의 접근 방식을 통해 드 노보 조직 형성의 약속을 제공합니다. 지방 - 파생 stromal 세포는 (ASCs) osteogenic, chondrogenic adipogenic 및 myogenic 차별화를 진행 할 수 multipotent 줄기 세포의 풍부한 소스로 입증되었습니다. 많은 연구가 세포 전달을위한 다양한 비계의 biomaterials를 이용하여 생체에서 이러한 세포의 osteogenic 가능성을 살펴 보았다. 이 입증 된 그 osteoconductive, 히드 록시 아파타이트 코팅 폴리 (락트산 - 공동 glycolic 산성) (HA-PLGA) ASCs있는 발판 시드, 중요한 크기 calvarial 결함, 자연 받아야하기위한 무능력으로 정의됩니다 결함을 활용하여 , 동물의 수명 동안 치료하면 효율적으로 강력한 뼈의 재생을 표시 할 수 있습니다. 생체 모델에서이 뼈 조직을 다시 생성하기위한 병진 접근의 기초를 보여줍니다 - 세포구성 요소 및 생물학적 매트릭스. 이 방법은 특정 조직 결함의 수리에 대한 전구 세포의 궁극적 인 임상 응용 프로그램에 대한 모델 역할을합니다.

이 프로토콜은의 고립을 설명 지방 - 파생 lipoaspirate과 골격 재생을 평가하는 4mm 중요한 크기 calvarial 결함의 생성의 stromal 세포를.

Lipoaspirate에서 수확 지방 - 파생 Stromal 셀을 사용하여 임계 크기 Calvarial 결함 모델의 수리

두개안면 골격의 수복 및 재생은 줄기세포를 이용한 세포 기반 접근법을 통해 새로운 조직 형성의 가능성을 제시합니다. ...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 생쥐의 체내 두개골 결손 모델을 이용하여 골분화를 유도하기 위해 지방 조직으로부터 다능성 기질 세포를 수확하는 것입니다. 이를 위해 먼저 지방 흡입술을 통해 얻은 지방 조직의 기질 혈관층에서 전구 세포를 분리합니다. 다음 단계로 3차원 지지체를 제작한 후, 해당 지지체에 세포를 파종합니다.마지막 단계는 스캐폴드와 세포를 배치할 쥐 모델의 임계 크기 두개골 결손 부위를 생성하는 것입니다. 최종적으로, 지방 조직에서 분리된 다능성 기질 세포가 생체 내 골 재생 가능성을 가지고 있음을 보여줍니다. 이 기술은 골 재생에 사용할 수 있는 조직의 부족으로 인해 광범위한 임상 적용 가능성을 가지고 있습니다.자가골 이식술이 표준 치료법으로 간주되지만, 공여 부위의 부족과 공여 부위의 이환율로 인해 이 방법의 사용이 제한적입니다. 동종이식물이나 외래 재료를 사용할 수 있으나, 이는 비용 문제, 낮은 통합력 및 잠재적인 감염 위험이라는 한계가 있습니다.골격 조직 공학을 위한 전구 세포 분리용으로 지방 조직을 사용할 수 있다는 점은 매우 흥미로운 일입니다. 이 절차에 대한 시연은 저와 long anchor 실험실의 Michael Chung이 진행하겠습니다. 먼저, 선택적 지방 흡입술을 통해 인간의 피하 지방 조직을 확보합니다.흡입된 지방 조직에서 두 개의 층이 형성된 것을 확인하십시오. 상층액에는 대부분의 세포성 물질이 포함되어 있으며, 하층은 주로 주입된 생리식염수입니다.지방 유래 기질 세포는 두 층 모두에서 수확할 수 있으나, 상층액에서의 수율이 훨씬 더 높습니다. 기질 혈관 분획 또는 SVF를 분리하려면, 2.5% Betadine이 포함된 1x 인산완충식염수(PBS)를 동일한 부피로 사용하여 지방 흡입물을 충분히 세척한 후, Betadine이 없는 1x PBS를 동일한 부피로 사용하여 다시 흡입 세척하십시오. 세척 후 침전될 때까지 기다립니다.처리된 인체 조직으로 인한 오염을 방지하기 위해 전 과정 동안 멸균 기술을 철저히 유지하십시오. 다음으로, 각 세척 단계 후 하층액을 흡입하여 제거하십시오. 그 후 15 mL의 지방 조직을 50 mL Falcon 원심 분리 튜브에 넣습니다. 이어서 15 mL의 여과된 0.075% filtered 용액으로 지방 조직을 용해하십시오.37°C의 항온수조에서 지속적으로 교반하며 Hank's balance salt solution(HBSS)에 2형 콜라게나제(type two collagenase)를 처리하여 60분 동안 반응시키되, 15분마다 튜브를 환기시켜 줍니다. 그 후 10% fetal bovine serum(FBS)이 포함된 PBS 15 mL를 가해 효소 활성을 중화시키고 원심분리합니다. 고밀도의 SVF 펠렛을 얻으면, 이 펠렛은 지방 유래 줄기세포와 적혈구가 혼합된 상태가 됩니다.먼저 상층의 지방층을 제거한 다음, 펠렛이 흐트러지지 않게 주의하며 상층액을 제거하십시오. 펠렛을 10 milliliters의 일반 배지에 다시 현탁합니다. 그 후, 100 micron 필터를 통해 세 개의 튜브 내용을 하나의 깨끗한 50 milliliter 원심분리관(conical tube)에 합친 뒤 원심분리하십시오.펠렛이 손상되지 않도록 상층액을 제거한 다음, 펠렛을 재부유합니다. 일반 배양 배지 5 mL를 사용하여 10 cm 플레이트당 50 mL 원뿔형 튜브 2개, 또는 15 cm 플레이트당 5 mL 원뿔형 튜브 5개를 준비하여 혼합합니다. 37 °C, 21% 산소 및 5% 이산화탄소 조건에서 하룻밤 동안 1차 배양을 수행합니다.밤새 배양한 후, PBS로 플레이트를 세척하여 부착되지 않고 남아 있는 적혈구를 제거합니다. 이렇게 얻은 세포군은 지방 유래 중간엽 줄기세포입니다. 자발적인 분화를 방지하기 위해 세포를 sub-confluent 상태로 유지하십시오.37 °C, 21% 산소 및 5% 이산화탄소 조건에서 배양합니다. 성장 배지 내에서 세포는 일반적으로 3~4일마다 정기적인 성장 배지로 분할 배양해야 합니다. 50% 합류도(confluence)로 도말되었을 때, 동반된 원고에 설명된 대로 스캐폴드를 준비합니다.세포가 하합류(sub confluence) 수준에 도달하면, PBS로 세포를 두 번 세척하고 트립신 처리합니다. 세포 수를 세어 정량합니다. 파종을 위해, 직경 4mm로 미리 절단된 스캐폴드에 1.5 × 10⁵ 개의 세포를 파종할 준비를 합니다.개별 스캐폴드를 96-웰 플레이트의 한 웰에 넣은 다음, 배지 20 µL당 약 1.5 × 10⁵ cells 농도의 일반 성장 배지로 세포를 재현탁합니다. 20 µL의 현탁액을 스캐폴드에 직접 피펫팅하여 세포를 접종하고, 이를 세포 배양 인큐베이터에 30분 동안 둡니다.30분 후, 배지 200 µL를 추가하고 세포를 스캐폴드 위에서 하룻밤 동안 배양합니다. 수술 전, 세포 파종 시와 같이 세포가 스캐폴드에 부착되었는지 확인할 필요는 없습니다. 충분한 수의 세포를 사용하면 대부분의 세포가 스캐폴드에 부착될 것입니다.60일령의 성체 CD one 누드 마우스를 마취시킨 후, 수술 부위를 베타딘과 알코올로 3회 멸균하고 마우스의 눈에 윤활제를 도포합니다. 그 후 마우스 두피에 정중선 시상 절개를 가하여 오른쪽 두정골을 노출시킵니다. 무딘 도구로 긁어내어 오른쪽 두정골에서 골막을 제거합니다.다음으로, 오른쪽 비봉합 부위의 두정골에 4 mm 크기의 편측 전층 결손을 생성합니다. 마우스 두개골의 두께는 이식 전 0.3 mm 미만이므로, 다이아몬드 코팅 틴 드릴 비트를 사용할 때 하부의 경질막이 손상되지 않도록 각별히 주의하십시오. 배지 유래 성장 인자의 전이를 방지하기 위해 스캐폴드를 멸균 PBS로 헹굽니다.스캐폴드를 결손 부위에 배치합니다. 마지막으로, 피부를 봉합하고 정해진 수술 후 프로토콜에 따라 동물을 모니터링합니다. 마우스에 대해 micro CT를 수행하고 microview 소프트웨어를 사용하여 3D 재구성 이미지를 얻습니다.Adobe Photoshop을 사용하여 이미지 크기를 표준 높이로 조정합니다. 일반적으로 우리는 2주마다 두개골 재생 상태를 측정합니다. 장기 추적 관찰을 위한 스캔 과정 동안 마우스는 마취 상태를 유지하며, 최종적으로 안락사시킵니다.조직학적 분석을 위해, 마술봉(magic wand) 기능을 사용하여 두개골 결손 부위의 픽셀을 측정하십시오. 이후 CT 스캔을 통해 결손 부위의 치유 백분율을 결정하십시오. 두개골 결손 면적을 측정하여 픽셀 수를 결정하고 이를 원래 결손 부위의 픽셀 수로 나누십시오. 골 형성을 나타내기 위해 aniline blue 및 pen aro와 같은 조직학적 염색법을 사용하여 결손 범위 전체에 걸쳐 여러 단면을 염색하십시오.Adobe Photoshop을 사용하여 두개골 결손 부위가 아닌 모든 영역을 잘라내고, 마술봉 도구를 사용하여 결손 부위 내 신생 골 형성의 픽셀 수를 측정하며, 이를 대조군 또는 다른 변수와 비교하십시오. 다음은 지방 유래 기질 세포의 분리부터 확장, 분화, 그리고 in vitro 및 in vivo 활용까지의 지방 흡입물 채취 및 적용 과정에 대한 개요입니다. 하단 행에는 하이드록시아파타이트 스캐폴드를 통해 ASC를 적용하여 임계 크기 두개골 결손 부위가 in vivo에서 치유되는 모습을 보여주는 micro CT 영상이 있습니다.상단 행에 표시된 대조군은 스캐폴드와 결손이 없는 경우를 포함합니다. 중간 행은 세포가 없는 스캐폴드를 배치한 결손 상태를 보여줍니다. 여기에 제시된 LS는 micro CT를 통한 골 치유의 정량적 분석 결과이며, A SC 그룹에서 치유가 유의하게 증가했음을 보여줍니다.이것은 andal을 통해 A SC 그룹의 골 형성 증가를 보여주는 조직학적 이미지입니다. 파란색은 al에 대한 pen AROM 염색을 나타냅니다. 파란색으로 표시된 부분에서 osteoid는 pen arom에 의해 진한 파란색으로 염색됩니다.여기에 제시된 노란색으로 염색된 유골(osteoid)은 GFP로 표지하여 스캐폴드에 파종한 후 2주 후에 희생시킨 인간 ASCs입니다. 결손 부위의 재생에 기여하는 인간 세포를 보여주기 위해 GFP 표지 항체로 염색을 수행하였습니다. 여기에는 2주 차 결손 부위에서 인간 세포의 우세함을 보여주는 인간 핵 항원 면역조직화학 염색 결과가 제시되어 있습니다.숙달되면 지방 조직 처리는 4시간 이내에 완료할 수 있으며, 수술 절차는 마우스 한 마리당 약 10분이 소요됩니다. 두개골의 두정골은 둥근 반면 드릴은 평평하므로, 4 mm 결손 부위의 전체 둘레를 모두 뚫을 수 있도록 주의해야 한다는 점을 기억하십시오. 뇌의 경막을 손상시키지 않도록 천천히 진행하시기 바랍니다.이 영상을 시청한 후, 지방 조직에서 전구 세포를 분리하는 방법을 충분히 이해하게 될 것입니다. 이 세포들을 지지체에 파종한 후 마우스에 이식하십시오.

repair-critical-sized-calvarial-defect-model-using-adipose-derived

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

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뼈 재생을위한 인적 Perivascular 줄기 세포의 이용

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인간 Lipoaspirates에서 지방 유래 줄기 세포를 수동으로 분리

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분리 및 인간의 농축 향상된 골 연장술에 대한 기질 세포를 지방이 유래

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생성 및 당뇨병 치유 하는 부상을 모델에서 줄기 세포 지방이 많은 파생 (ASC) 시트의 이식

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BMPR-IB +의 신속한 격리 두개골 결함 치유 모델에서 사용을위한 기질 세포를 지방이는 유래

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